微生物染色技术

微生物染色技术
微生物染色技术

简单染色法

革兰氏染色法

抗酸染色法

死菌鉴别染色法芽孢染色法

姬姆萨染色法

细菌染色法

活菌:美蓝或氧化三苯基四氮唑(TTC)

染料:

染料是一类苯环上带有发色基团和助色基团的有机化合物。前者赋予染料颜色特征,后者使染料能形成盐。染料通过离子键、共价键或疏水作用实现染色

常用的微生物细胞染料都是盐,分酸性染料和碱性染料两大类:

美蓝(即亚甲蓝)、结晶紫、碱性复红、番红(即沙黄)、孔雀绿等都属于碱性染料;

酸性复红、伊红及刚果红属于酸性染料。碱性染料带正电荷酸性染料带负电荷。

微生物染色原理:

在中性、碱性或弱酸性溶液中,细菌细胞通常带负电荷;碱性染料在电离时,其分子的染色部分带正电荷,易与细胞结合使其着色。

细胞处于酸性条件下(如细菌分解糖类产酸),所带正电荷增加,可采用酸性染料染色。

染色种类:

简单染色:利用单一染料对菌体进行染色。

常用碱性染料进行简单染色,这是因为:细菌的等电点较低,pH值大约在2—5之间,故在中性、碱性或弱酸性溶液中,菌体蛋白质电离后带阴电荷;而碱性染料电离时染料离子带阳电。因此,带阴电的细菌常和带阳电的碱性染料进行结合。所以,在细菌学上常用碱性染料进行染色。常用作简单染色的染料有:美蓝、结晶紫、碱性复红等。

操作步骤

1.涂片:用灼烧灭菌冷却后的接种环挑取少量菌体与水滴充分混匀,涂成极薄的菌膜。2.干燥:可自然晾干,或将涂片置于火焰高处微热烘干,但不能直接在火焰上烘烤。3.固定:手执玻片一端,有菌膜的一面朝上,通过迅速通过火焰2-3次(用手指触涂片反面,以不烫手为宜)。

4.染色:加适量(以盖满菌膜为度)结晶紫染色液(或石炭酸复红液),染l~2min。

5.水洗:用自来冲洗至流下的水中无染色液的颜色时为止。

6.干燥

7.镜检

鉴别染色:使用两种以上的染料进行染色,以区分不同类群的细菌,如革兰氏染色。

革兰氏染色:

原理:G-菌的细胞壁中含有较多易被乙醇溶解的类脂质,而且肽聚糖层较薄、交联度低,故用乙醇脱色时溶解了类脂质,增加了细胞壁的通透性,使初染的结晶紫和碘的复合物易于渗出,结果细菌就被脱色,再经番红复染后就成红色。

G+菌细胞壁中肽聚糖层厚且交联度高,类脂质含量少,经脱色剂处理后反而使肽聚糖层的孔径缩小,通透性降低,因此细菌仍保留初染时的颜色。

革兰氏染色需用四种不同的溶液:碱性染料(basic dye)初染液;媒染剂(mordant);脱色剂(decolorising agent)和复染液(counterstain) 。

用于革兰氏染色的初染液一般是结晶紫(crystal violet)。

媒染剂的作用是增加染料和细胞之间的亲和力或附着力,即以某种方式帮助染料固定在细胞上,使不易脱落。

不同类型的细胞脱色反应不同,有的能被脱色,有的则不能,脱色剂常用95%的酒精(ethanol)。

复染液也是一种碱性染料,其颜色不同于初染液,复染的目的是使被脱色的细胞染上不同于初染液的颜色,而未被脱色的细胞仍然保持初染的颜色,常用的复染液是番红。

操作步骤:

革兰氏染色法一般包括初染、媒染、脱色、复染等四个步骤

1.制片(涂片干燥固定)

2.初染:加适量(以盖满细菌涂面)的结晶紫染液染色1分钟;倾去染色液,用水小心地冲洗。

3.媒染:卢戈氏碘液,媒染1min;用水洗去碘液。

4.脱色:将玻片倾斜,连续滴加95%乙醇脱色10s-18s至流出液无色,立即水洗。

5.复染:滴加番红复染1min;10.水洗:用水洗去涂片上的番红染色液。

6.镜检:将染好的涂片用吸水纸吸干,镜检时先用低倍,再用高倍,最后用油镜观察,并判断菌体的革兰氏染色反应性。

革兰氏染色结果影响因素:

1.革兰氏染色成败的关键是酒精脱色。如脱色过度,革兰氏阳性菌也可被脱色而染成阴性菌;如脱色时间过短,革兰氏阴性菌也会被染成革兰氏阳性菌。

2.菌龄也有影响。若菌龄太老,由于菌体死亡或自溶常使革兰氏阳性菌转呈阴性反应。

3.不要涂片太厚,会造成假阴性或假阳性。

微生物常规鉴定技术(带图片)

微生物常规鉴定技术 一、形态结构和培养特性观察 1、微生物的形态结构观察主要是通过染色,在显微镜下对其形状、大小、排列方式、细胞结构(包括细胞壁、细胞膜、细胞核、鞭毛、芽孢等)及染色特性进行观察,直观地了解细菌在形态结构上特性,根据不同微生物在形态结构上的不同达到区别、鉴定微生物的目的。 2、细菌细胞在固体培养基表面形成的细胞群体叫菌落(colony)。不同微生物在某种培养基中生长繁殖,所形成的菌落特征有很大差异,而同一种的细菌在一定条件下,培养特征却有一定稳定性。,以此可以对不同微生物加以区别鉴定。因此,微生物培养特性的观察也是微生物检验鉴别中的一项重要容。 1)细菌的培养特征包括以下容:在固体培养基上,观察菌落大小、形态、颜色(色素是水溶性还是脂溶性)、光泽度、透明度、质地、隆起形状、边缘特征及迁移性等。在液体培养中的表面生长情况(菌膜、环)混浊度及沉淀等。半固体培养基穿刺接种观察运动、扩散情况。 2)霉菌酵母菌的培养特征:大多数酵母菌没有丝状体,在固体培养基上形成的菌落和细菌的很相似,只是比细菌菌落大且厚。液体培养也和细菌相似,有均匀生长、沉淀或在液面形成菌膜。霉菌有分支的丝状体,菌丝粗长,在条件适宜的培养基里,菌丝无限伸长沿培养基表面蔓延。霉菌的基菌丝、气生菌丝和孢子丝都常带有不同颜色,因而菌落边缘和中心,正面和背面颜色常常不同,如青霉菌:孢子青绿色,气生菌丝无色,基菌丝褐色。霉菌在固体培养表面形成絮状、绒毛状和蜘蛛网状菌落。

革兰氏染色: 革兰氏染色法是1884年由丹麦病理学家C.Gram所创立的。革兰氏染色法可将所有的细菌区分为革兰氏阳性菌(G+)和革兰氏阴性菌(G—)两大类,是细菌学上最常用的鉴别染色法。 该染色法所以能将细菌分为G+菌和G—菌,是由这两类菌的细胞壁结构和成分的不同所决定的。G—菌的细胞壁中含有较多易被乙醇溶解的类脂质,而且肽聚糖层较薄、交联度低,故用乙醇或丙酮脱色时溶解了类脂质,增加了细胞壁的通透性,使初染的结晶紫和碘的复合物易于渗出,结果细菌就被脱色,再经蕃红复染后就成红色。G+菌细胞壁中肽聚糖层厚且交联度高,类脂质含量少,经脱色剂处理后反而使肽聚糖层的孔径缩小,通透性降低,因此细菌仍保留初染时的颜色步骤: (1)涂片:涂片方法与简单染色涂片相同。 (2)晾干:与简单染色法相同。 (3)固定,与简单染色法相同 (4)结晶紫色染色:将玻片置于废液缸玻片搁架上,加适量(以盖满细菌涂面)的结晶紫染色液染色1分钟。 (5)水洗:倾去染色液,用水小心地冲洗。 (6)媒染:滴加卢哥氏碘液,媒染1min。 (7)水洗:用水洗去碘液。 (8)脱色:将玻片倾斜,连续滴加95%乙醇脱色20—25s至流出液无色,立即水洗。 (9)复染:滴加蕃红复染5min。 (10)水洗:用水洗去涂片上的蕃红染色液。 (11)晾干:将染好的涂片放空气中晾干或者用吸水纸吸干。 (12)镜检:镜检时先用低倍,再用高倍,最后用油镜观察,并判断菌体的革兰氏染色反应性。 (13)实验完毕后的处理: ①将浸过油的镜头按下述方法擦拭干净,a.先用擦镜纸将油镜头上的油擦 去。b.用擦镜纸沾少许二甲苯将镜头擦2—3次。c.再用干净的擦镜纸将 镜头擦2—3次。注意擦镜头时向一个方向擦拭。 ②看后的染色玻片用废纸将香柏油擦干

微生物染色(英文)

Role of Special Histochemical Stains in Staining Microorganisms Rashmil Saxena, BFA, HT(ASCP)CM Division of Transplantation Department of Surgery, Indiana University Indianapolis, IN, USA M icroorganisms encountered in routine pathology specimens include bacteria, fungi, protozoa and viruses1. Several histochemical stains help to visualize the first three groups of organisms; however, histochemical stains do not offer an advantage over H&E in the visualization of viruses and immunohistochemistry is the preferred method for this purpose. Histochemical stains also help to identify and classify bacteria, fungi and protozoa. The Giemsa and Gram’s stains help to visualize bacteria as well as classify them on their morphological characteristics. Thus bacteria can be classified into cocci or bacilli and cocci can be further classified into diplococci, staphylococci and streptococci based on their appearances on the Gram and Giemsa stains. The Gram stain also classifies bacteria into Gram-positive and Gram-negative organisms depending upon whether they take up the Gram stain or not; this classification is clinically useful and helps in therapeutic decisions. Some bacteria may not be adequately visualized with the Gram’s and Giemsa stains. Of these, the clinically most significant ones are mycobacteria and spirochetes. Mycobacteria stain with carbol fuschin and resist decolorization with acid-alcohol, leading to their designation as “acid-fast bacilli”. Spirochetes can be stained with a variety of silver stains such as the Warthin-Starry, Dieterle and Steiner stains. Finally, due to the large number of gastrointestinal biopsies in routine practice, a large number of stains are available for visualization of the Gram-negative bacillus, Helicobacter pylori. These include Giemsa, Alcian yellow - toludine blue, Diff-Quik, Genta, and Sayeed stains. A large number of laboratories prefer immunohistochemistry for identification of Helicobacter pylori. The Giemsa stain highlights several protozoa such as toxoplasma, leishmania, plasmodium, trichomonas, cryptosporidia and giardia. Ameba can be highlighted by the PAS stain due to their large glycogen content. Histochemical stains for fungi are discussed separately in this publication. Special Stains for Detection of Bacteria Gram Stain Utility of the Stain: The Gram stain is used to stain both bacillary and coccal forms of bacteria (Fig. 1). The most basic classification of bacteria consists of dividing them into Gram-positive and Gram negative bacteria based on whether they take up the Gram’s stain or not. Although the exact mechanism of staining is not known, bacteria that have large amounts of peptidoglycan in their walls retain the methyl violet stain, i.e., they are gram positive, whereas those that have more lipids and lipopolysaccharides in their cell walls are Gram-negative. The definite diagnosis of a bacterial species requires culture but the Gram stain provides a good initial indication of the nature of infection. 1 Some microbiologists also include viruses as microorganisms, but others consider these as non-living. Lwoff (1957). “The concept of virus”. J. Gen. Microbiol. 17 (2): 239–53. T echnical Articles

常见的微生物检测方法

常见的微生物检测 方法

摘要:微生物的检测,无论在理论研究还是在生产实践中都具有重要的意义,本文分生长量测定法,微生物计数法,生理指标法和商业化快速微生物检测简要介绍了利用微生物重量,体积,大小,生理代谢物等指标的二十余种常见的检测方法,简要介绍了这些方法的原理,应用范围和优缺点。 概述: 一个微生物细胞在合适的外界条件下,不断的吸收营养物质,并按自己的代谢方式进行新陈代谢。如果同化作用的速度超过了异化作用,则其原生质的总量(重量,体积,大小)就不断增加,于是出现了个体的生长现象。如果这是一种平衡生长,即各细胞组分是按恰当的比例增长时,则达到一定程度后就会发生繁殖,从而引起个体数目的增加,这时,原有的个体已经发展成一个群体。随着群体中各个个体的进一步生长,就引起了这一群体的生长,这可从其体积、重量、密度或浓度作指标来衡量。微生物的生长不同于其它生物的生长,微生物的个体生长在科研上有一定困难,一般情况下也没有实际意义。微生物是以量取胜的,因此,微生物的生长一般指群体的扩增。微生物的生长繁殖是其在内外各种环境因素相互作用下的综合反映。因此生长繁殖情况就可作为研究各种生理生化和遗传等问题的重要指标,同

时,微生物在生产实践上的各种应用或是对致病,霉腐微生物的防治都和她们的生长抑制紧密相关。因此有必要介绍一下微生物生长情况的检测方法。既然生长意味着原生质含量的增加,因此测定的方法也都直接或间接的以次为根据,而测定繁殖则都要建立在计数这一基础上。微生物生长的衡量,能够从其重量,体积,密度,浓度,做指标来进行衡量。 生长量测定法 体积测量法:又称测菌丝浓度法。 经过测定一定体积培养液中所含菌丝的量来反映微生物的生长状况。方法是,取一定量的待测培养液(如10毫升)放在有刻度的离心管中,设定一定的离心时间(如5分钟)和转速(如5000 rpm),离心后,倒出上清夜,测出上清夜体积为v,则菌丝浓度为(10-v)/10。菌丝浓度测定法是大规模工业发酵生产上微生物生长的一个重要监测指标。这种方法比较粗放,简便,快速,但需要设定一致的处理条件,否则偏差很大,由于离心沉淀物中夹杂有一些固体营养物,结果会有一定偏差。 称干重法:

微生物的革兰氏染色实验报告

微生物的革兰氏染色 一、实验目的: 1、学习并初步掌握革兰氏染色法; 2、了解革兰氏染色的原理; 3、巩固显微镜的使用。 二、实验原理: 革兰氏染色是细菌学中最重要的鉴别染色法。染色步骤分为四个部分: 1、初染:加入碱性染料结晶紫固定细菌图片; 2、媒染:加入碘液,碘与结晶紫形成一种不溶于水的复合物; 3、脱色:利用有机溶剂乙醇或丙酮进行脱色; 4、复染:复红配成碳酸复红作为复染剂。 成分占细胞壁干重的% 革兰氏阳性细菌革兰氏阴性细菌肽聚糖含量很高(50~90)含量很低(~10) 磷壁酸含量较高(<50)无 类脂质一般无(<2)含量较高(~20) 蛋白质无含量较高G-和G+细胞壁的比较: 1、阳性(G+)菌细胞壁特点:细胞壁厚,只有一层,主要由肽聚糖构成,肽聚糖含量高,结构紧密,脂类含量低。当乙醇脱色时,细胞壁肽聚糖层孔径变小,通透性降低,结晶紫和碘的复合物被保留在细胞壁内,复染后仍显紫色(如芽孢杆菌)。 2、阴性(G-)菌细胞壁特点:细胞壁薄,由两层构成,内壁层和外壁层,细胞壁中脂类中脂类物质含量较高,肽聚糖含量较低,网状结构交联程度低,乙醇脱色时溶解了脂类物质,通透性增强,结晶紫与碘的复合物易被乙醇抽提出来,因此,革兰氏阴性菌细胞被脱色,当复染时,脱掉紫色的细胞的细胞壁又着上红色(例如大肠杆菌)。 三、实验步骤: 1、取一个载玻片,将其洗净并沿一个方向擦拭干净,直至液体不再其上收缩为止;将接种环整平,用灼烧过的接种环在混匀的菌种中取菌,按常规方法图片,应涂大,不宜过厚。 2、将涂片用火焰固定,不宜烤得太狠,否则菌种呈假阳性。 3、滴加1滴结晶紫染液,染色1min,水洗。 4、滴加革兰氏碘液,作用1min,水洗 5、滴加脱色乙醇,脱色30~40s,不宜脱色太狠,否则菌种呈假阴性。 6、水洗,滴加番红复染液,复染1min,水洗,晾干 7、镜检并拍照。 四、注意事项: 1、选用活跃生长期菌种染色,老龄的革兰氏阳性细菌会被染成红色而造成假阴性。 2、涂片不宜过厚,以免脱色不完全造成假阳性。 3、脱色是革兰氏染色是否成功的关键,脱色不够造成假阳性,脱色过度造成假阴性。实验结果与讨论: 1、结果: 高倍镜下观察的菌体图像:

实验一 微生物的简单染色、革兰氏染色和芽胞染色

实验一微生物的简单染色、革兰氏染色和芽胞染色 赵奕玲 121180169 一.实验目的 1.掌握细菌涂片标本的制备方法和普通染色的步骤; 2.掌握革兰氏染色法的步骤和关键点; 3.掌握芽胞染色的步骤要点; 4.识别细菌的革兰氏染色和芽胞染色的结果; 5.学习无菌操作技术。 二.实验原理 一般认为革兰阳性细菌的肽聚糖层较厚,经乙醇处理后使之发生脱水作用而使孔径缩小,结晶紫与碘的复合物保留在细胞内而不被脱色;而革兰阴性细菌的肽聚糖层很薄,脂肪含量高,经乙醇处理后部份细胞壁可能被溶解并改变其组织状态,细胞壁孔径大,不能阻止溶剂透入,因而将结晶紫与碘的复合物洗去而被脱色。 虽然如此,革兰染色的差异并不能完全认为是化学的差别,也有物理结构不同的结果,因为酵母菌细胞壁的成份完全和细菌不同,但具有革兰染色阳性反应。 芽孢是芽孢杆菌属和梭菌属生长到一定阶段形成的一种抗逆性很强的休眠体结构,通常为圆形或椭圆形。 芽孢壁厚、透性低,着色、脱色均较 困难。因此,用着色力强的染色剂(如孔 雀石绿)在加热条件下进行染色时,染料 不仅可以进入菌体,而且也可以进入芽孢, 进入菌体的染料可经水洗脱色,而进入芽 孢的染色的染料则难以透出,若再用复染 液(如沙黄水溶液)染色后,芽孢仍然保 留初染剂的颜色,而菌体被染成复染剂的 颜色,即菌体和芽孢分别染成红色和绿色 易于区分。 三.实验器材 载玻片,盖玻片,接种环,酒精灯,显微镜、擦镜纸、镜油、擦镜液; 结晶紫、革氏碘染液、95%酒精、番红染液; 枯草芽孢杆菌、金黄色葡萄球菌、大肠杆菌和未知菌的18小时的液体培养液,酵母菌 平板,大肠杆菌平板,牙垢。 四.实验步骤 (一)革兰氏染色 1.涂片 左手持菌液EP管,右手持接种环,在火上对接种环灭菌后,从EP管中取一环培养液,于载玻片中央涂成薄层(事先在背面做好标记圆圈),将接种环在火焰上烧灼灭菌。若是从平板上取材,则事先在载玻片上滴一小滴水,在火焰附近把平板打开一小口,用接种环调取菌落边缘的物质涂于水滴上。 室温下自然干燥。

染色法、培养基和(微生物检验)试剂配制作业指导书

修改记录单

染色法、培养基和(微生物检验)试剂配制作业指导书 1 目的 对染色法、培养基和试剂配制方法作出明确规定,为检测结果的准确性提供最基本的保证。 2 范围 适用于微生物检验。 3 职责 3.1微检人员负责培养基、试剂配制。 3.2微检人员掌握微生物的染色方法。 4 培养基和试剂配制名称、用途

5 具体内容 5.1革兰氏染色法 5.1.1革兰氏染色液 5.1.1.1结晶紫染色液 成份:结晶紫 1.0g 95%乙醇20.0ml 1%草酸铵水溶液80.0ml 5.1.1.2革兰氏碘液 成份:碘 1.0g 碘化钾 2.0g 蒸馏水300.0ml

5.1.1.3 95%乙醇 5.1.1.4沙黄复染液 成份:沙黄0.25g 95%乙醇10.0ml 蒸馏水90.0ml 5.1.2染色法 5.1.2.1将涂片在火焰上固定。 5.1.2.2初染:滴加结晶紫染色液,染1min,水洗。 5.1.2.3媒染:滴加革兰氏碘液,作用1 min,水洗。 5.1.2.4脱色:滴加95%乙醇脱色,水洗;或将乙醇滴满整个涂片,立即倾去,再用乙醇滴满整个涂片,脱色10s,水洗。 5.1.2.5复染:滴加沙黄复染液,染1min,水洗,待干,镜检。 5.1.2.6结果判定:革兰氏阳性菌呈紫色;革兰氏阴性菌呈红色。 5.2一般培养基和专用培养基 5.2.1营养琼脂 5.2.1.1用途:用于一般细菌培养及细菌总数测定。 5.2.2.2成份(g/L): 蛋白胨10.0 牛肉粉 3.0 氯化钠 5.0 琼脂15.0 PH7.3±0.1 5.2.2.3制法: 称取各成份溶于纯水中,加热煮沸至完全溶解,分装,121℃15 min

微生物实验报告:普通染色和格兰染色

实验二细菌的普通染色和革兰氏染色 一、实验目的 1.掌握细菌涂片标本的制备方法和普通染色的步骤; 2.掌握革兰氏染色法的步骤和关键点; 3.识别细菌的革兰氏染色结果; 4.学习无菌操作技术。 二、实验原理 一般认为革兰阳性细菌的肽聚糖层较厚,经乙醇处理后使之发生脱水作用而使孔径缩小,结晶紫与碘的复合物保留在细胞内而不被脱色;而革兰阴性细菌的肽聚糖层很薄,脂肪含量高,经乙醇处理后部份细胞壁可能被溶解并改变其组织状态,细胞壁孔径大,不能阻止溶剂透入,因而将结晶紫与碘的复合物洗去而被脱色。 虽然如此,革兰染色的差异并不能完全认为是化学的差别,也有物理结构不同的结果,因为酵母菌细胞壁的成份完全和细菌不同,但具有革兰染色阳性反应。 三、实验器材 载玻片,盖玻片,接种环,酒精灯,显微镜、擦镜纸、镜油、擦镜液; 结晶紫、革氏碘染液、95%酒精、番红染液; 枯草芽孢杆菌、金黄色葡萄球菌、大肠杆菌和未知菌的18小时的液体培养液,酵母菌平板,大肠杆菌平板,牙垢。 四、实验步骤 1、涂片 左手持菌液EP管,右手持接种环,在火上对接种环灭菌后,从EP管中取一环培养液,于载玻片中央涂成薄层(事先在背面做好标记圆圈),将接种环在火焰上烧灼灭菌。若是从平板上取材,则事先在载玻片上滴一小滴水,在火焰附近把平板打开一小口,用接种环调取菌落边缘的物质涂于水滴上。 室温下自然干燥。 2、固定 手持或镊子夹载玻片一端,标本面朝上,在灯的火焰外侧快速来回移动3~4次,共约3~4秒。要求玻片温度不超过60℃,以玻片背面触及手背皮肤不觉过烫为宜,放置待冷后染色。 3、初染 滴加1滴草酸铵结晶紫染液,染色1分钟,水洗,吸干。 4、媒染 用碘液冲去残留水,再加1滴碘液覆盖涂片1分钟,水洗,吸干。 5、脱色 用吸水纸吸去玻片上的残留水,滴加95%的乙醇脱色,轻轻摇动玻片,倒掉脱色液,直至流出的乙醇无紫色时,立即水洗,吸干。脱色时间20~30秒。 6、复染 滴加1滴蕃红染液复染1-3分钟以上,水洗。

微生物染色设备的制作流程

图片简介: 本技术介绍了一种微生物染色装置,涉及医疗卫生临床检验设备领域,包括箱体,箱体内设有放置台和安装台,安装台上设有试管,试管底部设有控制试管启闭的开关机构;箱体内位于放置台的下方设有水池,还包括用于驱动水池升降的驱动机构,水池连通有控制水流进和流出的执行机构;箱体底部设有用于产生热风的送风装置,箱体顶壁开设有通孔;开关机构、驱动机构和执行机构信号连接有控制器;箱体内壁固接有位于水池上方的环形导流带,环形导流带远离箱体内壁的一侧向箱体内壁弯曲;水池底部设有环形导轨,环形导轨内滑动连接有滑动杆,滑动杆的顶端固接有高于水池的帆状物,帆状物能够将风能转换为动能,帆状物靠近水池内壁的一侧能够与水池内壁接触。 技术要求

1.一种微生物染色装置,包括箱体,箱体内设有用于放置载玻片的放置台,放置台的上方设有安装台,安装台上设有用于盛装染色液的试管,试管底部设有控制试管启闭的开关机构;箱体内位于放置台的下方设有水池,还包括用于驱动水池升降的驱动机构,水池连通有控制水流进和流出的执行机构;箱体底部设有用于产生热风的送风装置,箱体顶壁开设有通孔;开关机构、驱动机构和执行机构信号连接有控制器;其特征在于: 所述箱体内壁固接有位于水池上方的环形导流带,所述环形导流带远离箱体内壁的一侧向箱体内壁弯曲;所述水池底部设有环形导轨,环形导轨内滑动连接有滑动杆,滑动杆的顶端固接有高于水池的帆状物,所述帆状物能够将风能转换为动能,帆状物靠近水池内壁的一侧能够与水池内壁接触。 2.根据权利要求1所述的微生物染色装置,其特征在于:所述帆状物为与滑动杆的顶端固接的帆叶,所述帆叶倾斜设置,滑动杆靠近水池内壁的一侧设有刮板,刮板与水池内壁接触的一侧设有刷毛。 3.根据权利要求1所述的微生物染色装置,其特征在于:所述环形导流带包括固定部和弹性形变部,所述环形导流带通过固定部与箱体内壁固接,所述环形导流带的弹性形变部位于放置台的上方,所述箱体顶壁设有多个电动推杆,电动推杆输出端的端部与环形导流带的弹性形变部固接,电动推杆与控制器信号连接。 4.根据权利要求3所述的微生物染色装置,其特征在于:箱体内顶壁固接有步进电机,步进电机输出轴端部与所述安装台同轴固接;安装台沿其周向开设有多个圆孔,所述试管放置在圆孔上;放置台上开设有与试管中心位置对应的用于放置载玻片的凹槽,试管底部还设有与控制器信号连接的反射式光电传感器,步进电机与所述控制器信号连接,控制器信号连接有计时器,计时器设有第一时间阈值、第二时间阈值、第三时间阈值和第四时间阈值,当反射式光电传感器检测到载玻片反射信号时,控制器同时控制步进电机停止、开关机构打开、计时器开始计时和执行机构放水,当计时器计时第一时间阈值结束后,控制器控制微型电磁阀关闭;当计时器计时第二时间阈值结束后,控制器启动驱动机构将水池上升至将载玻片浸没;当计时器计时第三时间阈值结束后,控制器控制驱动机构复位,同时控制电动推杆的输出端收回;当计时器计时第四时间阈值结束后,控制器同时控制步进电机启动、计时器清零和电动推杆复位。

微生物实验问题与答案

微生物实验问题与答案 一、光学显微镜的操作及细菌、放线菌个体形态的观察 1、为什么油镜的放大倍数比普通物镜大? 答:油镜能减少光的折射,进而提高视野的亮度;通过提高显微镜的数值口径增加显微镜的分辨力。 2、数值口径的表达公式? 答案:N.A=n ×sin α,n为介质折射率;α为光线最大入射角的半数。 3、显微镜数值口径与分辨力的关系? 答案:分辨力是指显微镜能辨别两点之间最小距离的能力,它与光的波长成反比,与数值口径成正比。 4、油镜的使用与普通物镜有何不同? 答案:油镜必须借助于光折射率等于或接近于玻璃的试剂,如香柏油等才能使用,而普通物镜则不需要;油镜是由100×物镜与香柏油构成,而普通物镜则限于10×物镜、40×物镜等。 5、使用油镜时应特别注意什么? 答案:上下调节镜头时应使用微螺旋,否则容易损坏镜头;应使油镜始终浸泡在香柏油中,否则就不是油镜;使用完毕后,必须用搽镜纸沾取二甲苯等有机溶剂搽去残留的油迹,否则会玷污油镜。 6、什么是物镜的同焦现象?它在显微镜观察中有什么意义? 答:在一般情况下,当物像在一种物镜中已清晰聚焦后,转动物镜转换器将其他物镜转到工作位置进行观察时,物像将保持基本准焦的状态,这种现象称为物镜的同焦。利用这种同焦现象,可以保证在使用高倍镜或油镜等放大倍数高、工作距离短的物镜时仅用细调节器即可

对物像清晰聚焦,从而避免由于使用粗调节器时可能的误操作而损坏镜头或载玻片。 7、根据你的实验体会,谈谈应如何根据所观察微生物的大小,选择不同的物镜进行有效地观察 答:细菌用油镜,真菌用高倍镜。都是先用低倍镜找到目标后,再用高倍镜调到合适的视野和合适的清晰度。 答:放线菌、酵母菌、多细胞真菌相对较大,用放大40倍的物镜就可以看了,细菌小,要用放大1000倍的物镜看,感觉还很小。病毒那就要用电子显微镜看了。 二、微生物染色 1、单染色的原理是什么? 答案:主要基于微生物细胞能与各种染料进行不同程度地结合。 2、单染色过程中,为什么干燥固定? 答案:因为通过干燥可以使菌体蛋白变性,细胞质凝固,进而可以使菌体紧密地附着于载玻片表面。 3、单染色过程中,为什么水洗时水流要缓慢地从载玻片上端流下? 答案:因为如果水流直接冲洗有菌部位,容易使菌体被冲洗掉。 4、为什么载玻片要完全干燥后,才能使用油镜? 答案:因为香柏油与水不相溶,容易造成光线发生折射或散射,一方面无法构成油镜,另一方面也会降低视野的亮度。 5、革兰氏染色的原理是什么? 答案:对于G+细菌来说,当用乙醇脱色时,由于肽聚糖含量高,网孔小,再加上脂量低,所以乙醇脱色后,进一步地缩小了网孔,结晶紫-碘复合物无法脱出,第二次用番红染色时

常用微生物染色法

1革兰染色法: 2.1.1染色剂的配制 1.1.1结晶紫液 称取结晶紫2.0g,加95%乙醇20ml,使溶解为甲液,另取草酸铵0.8g,加水80ml,使溶解为乙液。甲、乙液相混,静置48小时后使用。贮存在密闭的棕色瓶中。有效期为3个月。 1.1.2碘液 称取碘化钾2.0g,加水3~5ml,使溶解,再投入碘1.0g,用力振摇,使之全部溶解,加水稀释至300ml,即得,贮存在棕色瓶中。密闭保存,有效期为1个月。 1.1.3脱色液:95%乙醇。 1.1.4复染液: a.沙黄(番红)复染液:称取沙黄0.25g,加95%乙醇10ml溶解,然后再加纯化水至 100ml即得。 b.稀石碳酸复红染液:称取碱性复红2.5g,研细,加95%乙醇25ml。放置过夜,用滤 纸过滤,加5%石碳酸水溶液20ml混合,为石碳酸复红液,再取此液10ml,加水 90ml,即成稀石碳酸复红液。 1.2染色操作方法: 1.2.1涂片、干燥 在载玻片上,滴一滴无菌水或生理盐水,用接种环挑少许菌苔在水涂成一薄层;或将长菌的培养液取少许轻轻涂在载玻片上,自然干燥,也可以在微火焰上通过几次,使菌体固定。 1.2.2染色步骤 a滴加结晶紫液,覆盖约1分钟,水洗,(勿使水直接冲洗涂片处)。 b滴加碘液,覆盖约1分钟,水洗、吸干。 C用95%的乙醇褪色至脱色乙醇不呈紫色为止,约20~30秒,水洗吸干。 D滴加沙黄染液或稀石碳酸复红染1分钟,水洗吸干。 1.2.3染色结果 革兰氏阳性菌染成紫色,革兰氏阴性菌染成红色。 1.3注意事项 1.3.1涂片必须洁净无油,以免影响涂片质量。 1.3.2涂片的菌量不可太浓厚,否则看不清单个菌落形态。易出现假阳性。 1.3.3用火焰固定时,不可过热,以载玻璃片不烫手为宜。 1.3.4一般以检查培养18—24小时的菌为宜,革兰氏阴性菌染色反应较稳定,不受菌龄的影响。革兰氏阳性菌易受菌龄影响,较老的细胞如培养24—48小时以上,则有部分或全部细胞转成阴性反应,所以培养18—24小时染色镜检为宜。 2芽孢染色 2.1染色液的配制 2.1.1石碳酸复红液 称取碱性复红1.0g,研细,加95%乙醇25ml。再取此溶液10ml与5%石碳酸溶液90ml。混匀,即得。 2.1.2碱性美兰液:美兰1.0g,溶于95%乙醇50ml中,再取此液30ml与0.01%氢氧化钾溶液100ml混匀即成。 2.2染色方法 2.2.1取待检菌芽孢较多的培养物,涂片,干燥及加热固定后,滴满石碳酸复红液于涂片上,

微生物染色

实验3微生物的染色 3.1实验目的 (1)了解微生物的染色原理。 (2)学习微生物涂片染色操作技术。 (3)掌握微生物单染色及革兰氏染色方法。 3.2染色原理 一般微生物,特别是细菌无色透明,在光学显微镜下,菌体与背景的反差很小,难以分辨其形态与结构,染色后可增加其反差,以利于观察。 (1)单染(普通染色) 单染是只用一种染料使菌体着色,便于观察菌体的形态。 菌体内含有大量的蛋白质,使微生物细胞具有两性电解质性质,在某一pH值时,菌体所带的正负电荷相等,该pH 值即为细胞的等电点(pI)。通常细菌的等电点约为2~5。 当环境的pH值比菌体的等电点低时,菌体带正电荷,易与带负电荷的酸性染料结合。在细菌所要求的pH值(中性或略大于中性)条件下,细菌带有负电荷,故多以碱性染料染色。常用的碱性染料有结晶紫、龙胆紫、美蓝、碱性品红、孔雀绿、番红花红及中性红等。 (2)革兰氏染色(复染色法或鉴别染色法) 革兰氏染色法是细菌学中重要的鉴定方法。该方法是l884年由丹麦学者Christain Gram 创立的,此后人们在实践中又作了一些改进。通过这种方法可将细菌分为革兰氏染色阳性细菌(G+)和革兰氏染色阴性细菌(G-)两大类。其基本原理如下。 革兰氏染色结果是由细菌的细胞壁决定的。革兰氏阳性细菌的细胞壁肽聚糖含量高且呈网状结构,细胞壁较厚,类脂质含量低;革兰氏阴性细菌的细胞壁肽聚糖含量低,细胞壁薄,类脂质含量高。前者用酒精脱色时,细胞壁因脱水肽聚糖层网孔变小,其通透性降低,使结晶紫-碘的复合物不易被抽取而继续留在细胞内,经脱色和复染后仍保留着初染剂结晶紫的颜色(紫色);后者用酒精脱色时,类脂质被酒精溶解,细胞壁通透性增大,使结晶紫-碘的复合物易被抽取出来,紫色褪去,用复染剂复染后,细胞的颜色即呈复染剂的颜色(红色)。革兰氏染色最关键的步骤是酒精脱色。事实上,用结晶紫进行初染时所有的细菌都被染成紫色。碘是一种媒染剂,能与结晶紫结合成结晶紫-碘的复合物,以增强染料与细菌的结合力。只有经过酒精处理,再经复染,不同的细菌才会显现出不同的染色结果。 3.3实验仪器、材料 (1)显微镜、载玻片、接种环、酒精灯、香柏油、二甲苯、擦镜纸、吸水纸等。 (2)美蓝染液、结晶紫染液、碘液、95%乙醇、番红花红染液。 (3)大肠杆菌、枯草杆菌、金黄色葡萄球菌、活性污泥等。 3.4操作步骤 (1)单染 ①涂片(图12)在干净的载玻片中央滴一滴无菌蒸馏水,将接种环在火焰上烧灼,冷却后,以无菌操作(图12)挑取少量菌种于载玻片水滴中,或用吸管直接滴一滴活性污泥悬液于载玻片上,混匀并涂成薄膜,注意涂布面积不要太大。 ②干燥自然干燥。 ③固定将已干燥的涂片正面朝上,于火焰顶上迅速通过2~3次,使其蛋白质凝固,以固定细菌外形,并使其不易脱落。但切忌直接在火上烧玻片,以防菌体变形。 ④染色在涂片薄膜上滴加染液(美蓝或结晶紫)1~2min。 ⑤水洗倾斜载玻片,打开水龙头,用细水流冲洗(最好沿载玻片对角线冲洗),直至冲洗水无色为止。

微生物检验习题

一、选择 1.引起酸性果汁饮料变质的微生物主要是()。 A 细菌 B 放线菌 C 病毒 D 酵母菌 2.根据食品微生物污染的途径主要为加工期间的污染,下面各措施中关键的是( )。 A原材料采购运输应符合卫生要求 B设备的清洗、消毒和改造 C合理设计和布局食品生产厂 D卫生和质量检验 3.根据食品微生物污染途径之一为人体和动植物体表,下面各措施中针对性最强的是()。 A 合理设计和布局食品生产厂 B 设备的清洗,消毒和改造 C 搞好个人卫生和定期检查健康 D 产品卫生和质量检验 4.根据食品微生物污染途径主要为加工期间的污染,下面各措施中关系相比较不密切的是 A 原材料采购应符合其卫生质量标准 B 设备的及时清洗、消毒 C 设备更换、改造代替手工操作工艺 D 工厂、车间布局合理 5.下列关于温度对微生物影响的描述,错误的是() A 高温引起菌体酶失活和蛋白质变性是加热杀菌方法的理论基础 B 微生物在超过最高温度生长温度以上的环境中会死亡,且温度越高死亡越快 C 幼龄菌、中龄菌和老龄菌对低温的敏感性是一致的 D 在低温时,一部分微生物死亡,但大部分只是代活动减弱和降低 6.下列有关渗透压对微生物影响的描述中,错误的是 A 突然改变和逐步改变渗透压对微生物的影响是相同的 B 腌渍菜、加糖炼乳都是利用微生物不耐高渗透压的特性而采用的措施 C 平皿计数法所用的稀释液应为等渗溶液,如质量分数为8.5%的盐溶液 D 高渗和低渗溶液对微生物细胞作用方式不同,但都能导致菌体死亡 二、简述一下乳中菌群交替现象的规律。 一、填空 1.常用的不染色细菌标本检查法有()和()。 2.在使用悬滴法进行细菌标本检查时,需要将菌液滴在(),压滴法需将菌液滴在()。 3.细菌染色的原理有()和()两个方面。 4.木素不能直接染色,须暴露在通气的地方,氧化成熟后才能使用,且染色时需要()。 5.芽孢染色染后菌体被染上(),芽孢被染上()。 6.鞭毛染色菌体呈现(),鞭毛呈现()。 7.革兰氏染色后,金黄色葡萄球菌呈()色,大肠杆菌呈()色。 8. 荚膜染色后,背景为()色,菌体呈()色,菌体周围清晰的透明圈为()。 9.荚膜染色涂片时()(能不能)采用加热固定。 二、选择 1.显微镜在对不染色细菌标本进行检查时,主要是观察细菌的()。 A 细胞核 B 细胞质 C动力 D 细胞壁 2.染色的物理现象不包括() A 毛细现象 B 渗透 C 吸附作用 D 电离 3.下面细菌染色常用的天然染料是() A 洋红 B 刚果红 C 伊红 D 番红 4.下面哪种染料不是碱性染料() A 刚果红 B 结晶紫 C 番红 D 美蓝

细菌单染色法及口腔微生物的观察

细菌单染色法及口腔微生物的观察 录入时间:2008-10-21 11:14:57 来源:google 一、实验目的和内容 目的:巩固无菌操作技术,掌握细菌的涂片和单染色技术,了解口腔中的微生物及其观察方法。 内容:1.学习细菌单染色操作技术。 2. 用单染色法或负染色法观察口腔中的微生物。 二、实验材料和用具 大肠杆菌(E.coli)、金黄色葡萄球菌(Staphylocosccus aureus)的斜面菌种。 吕氏美蓝染色液、石炭酸复红染色液、黑色素液或碳素墨水、香柏油、二甲苯、无菌水; 显微镜、擦镜纸、接种环、酒精灯、载玻片、吸水纸、无菌牙签。 三、操作步骤 (一)单染色法 1.涂片在洁净无脂的载玻片中央滴一小滴无菌水,用无菌操作方法从菌种斜面挑取少量菌体与水滴充分混匀,涂成薄膜,涂布面积约1~1.5cm2(图7—1A、B)。 2.干燥将涂片于室温中自然干燥。 3.固定手扶载片一端,使涂菌的一面向上,将载片通过微火2~3次。在火上固定时,用手摸涂片反面,以不烫手为宜。不能将载片在火上烤,否则细菌形态毁坏(图7—1C)。 4.染色将涂片置于水平位置,滴加染色液覆盖于涂菌处,染色约2min(图7—1D) 5.水洗倾去染色液,斜置载片,用自来水的细水流由载片上端流下,不得直接冲在涂菌处,直洗至从载片上流下的水中无染色液的颜色为止(图7—1E)。 6.干燥自然晾干或用吸水纸轻轻地吸干,注意不要擦掉菌体(图7—1F)。 7.待标本完全干燥后,先用低倍镜和高倍镜观察,将典型部位移至视野中央,再用油镜观察。 (二)口腔微生物的观察 1.单染色法 (1)在洁净无油腻的载片中央滴一小滴无菌水,用牙签取牙垢少许与水滴充分混匀,涂成薄膜。 (2)将涂片于室温中自然干燥后,按上面单染色法的步骤,进行固定、染色、水洗,干燥后镜检。 2.负染色法 (1)在洁净无油腻的载片的一端滴一小滴无菌水,用牙签取牙垢少许与水滴充分混匀,然后加少许黑色素溶液,充分混匀。 (2)另取一载片将其边缘放在含菌载片的一端,然后推向另一端,则含菌载片上的混合液被推成薄膜。 (3)于室温中自然干燥。 (4)镜检:将光线调亮,先用低倍镜观察,再用高倍镜观察。 四、注意事项 载玻片要洁净无脂,否则菌液涂不开。涂片时,滴水不要过多,挑菌量宜少,菌膜宜薄。五、实验报告 (一)绘图 1.单染色后观察到的大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的形态图。 2.你所观察到的口腔微生物的形态图,并注明使用的染色方法,菌体和背景的颜色。(二)单染色法和负染色法操作要点。

微生物染色液配制及染色法

微生物染色液配制及染色法 2.1 美蓝染色法2.1.1 吕氏碱性美蓝染色液美蓝0.3g95%乙醇30mL0.01%氢氧化钾溶液100mL 将美蓝溶解于乙醇中,然后与氢氧化钾溶液混合。2.1.2 染色法将涂片在火焰上固定,待冷。滴加染液,染1~3min,水洗,待干,镜检。2.1.3 结果菌体呈蓝色。 2.2 革兰氏染色法2.2.1 结晶紫染色液结晶紫1g95%乙醇20mL1%草酸铵水溶液80mL将结晶紫溶解于乙醇中,然后与草酸铵溶液混合。2.2.2 革兰氏碘液碘1g碘化钾2g蒸馏水300mL将碘与碘化钾先进行混合,加入蒸馏水少许,充分振摇,待完全溶解后,再加蒸馏水至300mL。2.2.3 沙黄复染液沙黄0.25g95%乙醇10mL蒸馏水90mL将沙黄溶解于乙醇中,然后用蒸馏水稀释。2.2.4 染色法2.2.4.1 将涂片在火焰上固定,滴加结晶紫染色液,染1min,水洗。2.2.4.2 滴加革兰氏碘液,作用1min,水洗。2.2.4.3 滴加95%乙醇脱色,约30s;或将乙醇滴满整个涂片,立即倾去,再用乙醇滴满整个涂片,脱色10s。2.2.4.4 水洗,滴加复染液,复染1min。水洗,待干,镜检。2.2.5 结果革兰氏阳性菌呈紫色。革兰氏阴性菌呈红色。注:亦可用1:10稀释石炭酸复红染色液作复染液,复染时间仅需10s。 2.3 耐酸性染色法(萎-倪二氏法)2. 3.1 石炭酸品红染色液碱性品红0.3g95%乙醇10mL5%酚水溶液90mL将品红溶解于乙醇中,然后与酚溶液混合。2.3.2 3%盐酸-乙醇浓盐酸3mL95%乙醇97mL2.3.3 复染液吕氏碱性美蓝染色液。2.3.4 染色法2.3. 4.1 将涂片在火焰上加热固定,滴加石炭酸品红染色液,徐徐加热至有蒸气出现,但切不可使沸腾。染液如因蒸发减少时,应随时添加。染5min,倾去染液,水洗。 2.3.4.2 滴加盐酸-乙醇脱色,直至无红色脱落为止(所需时间视涂片厚薄而定,一般为1~3min),水洗。 2.3.4.3 滴加吕氏碱性美蓝染色液,复染30s~1min,水洗,待干,镜检。2.3.5 结果:耐酸性细菌呈红色, 其他细菌、细胞等物质呈蓝色。 2.4 柯氏染色法2.4.1 染色液2.4.1.1 0.5%沙黄液。2.4.1.2 0.5%孔雀绿液。2.4.2 染色法2.4.2.1 将涂片在火焰上固定,滴加0.5%沙黄液,并加热至出现气泡,约2~3min,水洗。2.4.2.2 滴加0.5%孔雀绿液,复染40~50s。水洗,待干,镜检。2.4.3 结果布氏杆菌呈红色,其他细菌及细胞呈绿色。 2.5 奥尔特氏荚膜染色法2.5.1 染色液沙黄3g蒸馏水100mL用乳钵研磨溶解。2.5.2 染色法将涂片在火焰上固定,滴加染色液,并加热至产生蒸气后,继续染3min。水洗,待干,镜检。2.5.3 结果炭疽 芽胞杆菌菌体呈赤褐色,荚膜呈黄色。 2.6 瑞氏染色法2.6.1 染色液瑞氏色素0.1g甲醇60mL用乳钵研磨溶解。2.6.2 染色法2.6.2.1 涂片待自然干燥后,滴加染色液,固定1min。2.6.2.2 加入等量蒸馏水(pH6.5),染色3~5min。2.6.2.3 用 蒸馏水冲洗,待干,镜检。 2.7 鞭毛染色法2.7.1 染色液的配制2.7.1.1 甲液:称丹宁酸5g、氯化高铁(FeCl3)1.5g,溶于100mL 蒸馏水中,待溶解后加入1%的氢氧化钠溶液1mL和15%的甲醛溶液2mL。2.7.1.2 乙液:称2g硝酸银溶于100mL蒸馏水中。在90mL乙液中滴加浓氢氧化铵溶液,到出现沉淀后,再滴加使其变为澄清,然后用其余10mL乙液小心滴加至澄清液中,至出现轻微雾状为止(此为关键性操作,应特别小心)。滴加氢氧化铵和用剩余乙液回滴时,要边滴边充分摇荡,染液当天配,当天使用,2~3d基本无效。2.7.2 染色法在风干的载玻片上滴加甲液,4~6min后,用蒸馏水轻轻冲净。再加乙液,缓缓加热至冒汽,维持约半分钟(加热时注意勿使出现干燥面)。在菌体多的部位可呈深褐色到黑色,停止加热,用水冲净,干后镜检,菌体及鞭毛为深褐色到黑色。2.8 碱性复红染色法将0.5g碱性复红染料溶解于20mL95%乙醇中,然后用蒸馏水稀释至100mL。如有不溶物时,可用滤纸过滤,或静置后取上清液备用。注:本染色液系用于苏云金芽胞内蛋白质毒素结晶的染色,藉以与蜡样芽胞杆菌相区别 实验用染色液及试剂的配制 1.黑色素液水溶性黑素10g,蒸馏水100mL, 甲醛(福尔马林)0.5mL。可用作荚膜的背景染色。

环境微生物学-实验二 微生物的染色

实验二微生物染色 一、实验目的 1、进一步熟悉和掌握显微镜的操作方法; 2、学习用压滴法制作标本片; 3、学习微生物染色的原理; 4、学习微生物涂片、染色的基本技术。 二、实验仪器和材料 显微镜、香柏油(或液体石蜡)、二甲苯、擦镜纸、吸水纸、接种环、载玻片、酒精灯; 美蓝染液,草酸铵结晶紫染液、革氏碘液、95%乙醇、蕃红染液; 酵母菌、大肠杆菌、枯草杆菌。 三、染色原理 微生物(尤其是细菌)的机体小且是无色透明的,在活体细菌内又含有大量的水分。因此,对光线的吸收和反射与水溶液相差不大。当把细菌悬浮在水滴内,放在显微镜下观察时,由于与周围背景没有明显的明暗差,难以看清它们的形状,更谈不上识别其细微结构。通常用染料将菌体染上颜色以增加反差,在显微镜下观察。 微生物细胞是由蛋白质、核酸等两性电解质及其它化合物组成的,所以微生物细胞表现出两性电解质的性质。两性电解质兼有碱性基和酸性基,在酸性溶液中离解出碱性基呈碱性,带正电;在碱性溶液中离解出酸性基呈酸性,带负电。经测定,细菌的等电点pI在pH=2~5之间,故细菌在中性(pH=7)、碱性(pH > 7)或偏酸性(pH=6~7)溶液中,细菌等电点均低于上述溶液的pH值,所以细菌带负电荷,容易与带正电荷的碱性染料结合,故用碱性染料染色的居多。碱性染料并不是碱而是一种盐,电解时染料离子带正电,易与带负电荷的细菌结合,而使细菌着色。 碱性染料有美蓝、甲基紫、结晶紫、龙胆紫、碱性品红、中性红、孔雀绿和蕃红(沙黄)等。 微生物体内各结构与染料结合力不同,故可用各种染料分别染微生物的各结构以便观察。 四、染色方法 1、简单染色法

简单染色法是利用单一染料对细菌进行染色的一种方法。此法操作简便,适用于菌体一般形态的观察。常用的简单染色染料有美蓝、结晶紫、碱性复红、番红(沙黄)等。 2、革兰氏染色法 革兰氏染色反应是细菌分类和鉴定的重要性状。它是1884年由丹麦医师Gram创立的。革兰氏染色法不仅能观察到细菌的形态而且还可将所有细菌区分为两大类:革兰氏阴性细菌(G-)和革兰氏阳性细菌(G+)。细菌对于革兰氏染色的不同反应,是由于它们细胞壁的成分和结构不同而造成的。革兰氏阳性细菌的细胞壁主要是由肽聚糖形成的网状结构组成,在染色过程中,当用乙醇处理时,由于脱水而引起的网状结构中的孔径变小,通透性降低,使结晶紫和碘的复合物被保留在细胞内而不易脱色,因此呈紫色;革兰氏阴性菌的细胞壁中肽聚糖含量低,而脂类物质含量高,当用乙醇处理时,脂类物质溶解,细胞壁的通透性增加,使结晶紫和碘的复合物易被乙醇抽出而脱色,经复染后呈现红色。 3、芽孢染色法 芽孢染色法是利用细菌的芽孢和菌体对染料的亲和力不同的原理,用不同染料进行着色,使芽孢和菌体呈不同的颜色而便于区别。芽孢壁厚、透性差,着色、脱色均较困难,因此,当先用一弱碱性染料如孔雀绿在加热条件下进行染色时,此染料不仅可以进入菌体,而且也可以进入芽孢,进入菌体的染料可以经水洗脱色,而进入芽孢的染料则难以透出,若再用复染液或衬托溶液(如黑色素溶液)处理,则芽孢和菌体易于区分。 加热时要补加染色剂,切勿让图片干涸。 4、荚膜染色法 荚膜是包裹在细菌细胞外面的一层粘液性物质,其主要成分是多糖类,不易被染色,故常用背景染色法(衬托染色法),即将菌体与背景着色,而将不着色且透明的荚膜衬托出来。荚膜很薄,易变形,因此,制片时一般不用热固定。 5、鞭毛染色法 鞭毛是细菌的运动器官,一般细菌的鞭毛都非常纤细,其直径为0.01~0.02μm,在普通光学显微镜的分辨力限度以外,故需要用特殊的鞭毛染色法才能看到。鞭毛染色是借媒染剂和染色剂的沉淀作用,使染料堆积在鞭毛上,以加粗鞭毛的直径,同时使鞭毛着色,在普通光学显微镜下能够看到。 在显微镜下观察细菌的运动性,也可以初步判断细菌是否有鞭毛。通常使用压滴法或悬滴法观察细菌的运动性。观察时,要适当减弱光线,增加反差,如果光线很强,细菌和周围的液体就难以判别。

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