Western及IP细胞裂解液

Western及IP细胞裂解液
Western及IP细胞裂解液

Western 及IP 细胞裂解液

简介:

多种成分均可以从细胞中提取总蛋白,如Triton 、SDS 、NP-40等。Western 及IP 细胞裂解液是采用一种非变性裂解方法来裂解细胞,并获得总蛋白的裂解液。所获得的蛋白质可以用于PAGE 电泳,Western ,免疫沉淀(Immunol Precipitation,IP)和免疫共沉淀(co-IP)等,主要由Tris-HCl 、NaCl 、低浓度Triton X-100, 低浓度sodium pyrophosphate 等组成,并含有多种蛋白酶抑制剂成分,可以有效抑制蛋白的降解,并维持原有的蛋白间相互作用。

用Leagene Western 及IP 细胞裂解液得到的蛋白,可以用BCA 蛋白定量试剂盒测定蛋白浓度。由于含有较高浓度的Triton X-100等干扰物质,不宜用Bradford 法测定由Western 及IP 细胞裂解液获得样本的蛋白浓度。

组成:

操作步骤(仅供参考):

(一)贴壁培养细胞

1、 取Western 及IP 细胞裂解液置于室温溶解混匀,加入PMSF ,使PMSF 终浓度。

2、 去除贴壁细胞的培养液,用PBS 、NS 或无血清培养液清洗,低速离心,弃上清,留取沉淀。

3、 每孔加入含有PMSF 的裂解液的比例,加入Western 及IP 细胞裂解液。移液器轻轻吹打,使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液作用于细胞1~5s 内,细胞就会被裂解。

4、 离心 (如果用冷冻离心机4℃离心效果更佳),取上清。

5、 进行后续的SDS-PAGE 、Western 、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

(二)悬浮培养细胞

1、 取Western 及IP 细胞裂解液置于室温溶解混匀,加入PMSF ,使PMSF 终浓度为1mM 。

2、 低速离心悬浮细胞,弃上清,收集沉淀。

3、 用手指轻弹细胞,使其松散。按照6孔板每孔细胞加入含有PMSF 的裂解液的比例,加入Western 及IP 细胞裂解液。通常6孔板每孔细胞加入裂解液已经足够,但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到,再用手指轻弹以充分裂解细胞。充分裂解 编号 名称 PS0009 Storage Western 及IP 细胞裂解液 100ml -20℃ PMSF(100mM) 1.5ml -20℃ 使用说明书 1份

后应没有明显的细胞沉淀。

4、离心(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。

5、进行后续的PAGE、Western、免疫沉淀等操作。

(三)组织样本

1、取Western及IP细胞裂解液置于室温溶解混匀,加入PMSF,使PMSF终浓度为1mM。

2、把组织剪切成细小的碎片,越小越好。

3、取在液氮或超低温冰箱中冷冻以上的组织,迅速用液氮研磨,研磨过程尽量控制,以减

少蛋白的降解。

4、按照组织加入裂解液,加入含有PMSF的裂解液。裂解。

5、步骤3、4亦可以采用如下过程:按照每20mg组织加入裂解液的比例加入含有PMSF

的Western及IP细胞裂解液。用玻璃匀浆器或组织研磨器匀浆,直至充分裂解,过程尽量控制,以减少蛋白的降解。

6、按照每组织加入裂解液的比例,加入含有PMSF的裂解液。

7、离心(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。

8、进行后续的PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

注意事项:

1、去除贴壁细胞的培养液时,如果血清中的蛋白没有干扰,可以不用清洗。

2、如果裂解不充分可以适当增加裂解液的用量,如果需要高浓度的蛋白样品,可以适当减

少裂解液的用量。

3、如果细胞量较多,必需分装成50~100万细胞/离心管,然后再裂解。大团的细胞较难

裂解充分,而少量的细胞由于裂解液容易和细胞充分接触,相对比较容易裂解充分。

4、如果组织样品本身非常细小,可以适当剪切后直接加入裂解液裂解,通过强烈Vortex

使样品裂解充分。然后同样离心取上清,用于后续实验。直接裂解的优点是比较方便,不必使用匀浆器,缺点是不如使用匀浆器那样裂解得比较充分。

5、溶解Leagene Cell lysis buffer for Western and IP时,应尽量缩短溶解时间,避免

裂解液中的有效成分失效。

6、细胞裂解的操作步骤,应置于冰上或4℃进行。

有效期:12个月有效。

(完整版)裂解液主要特点与区分

用于普通的Western、IP或co-IP,我们推荐使用Western及IP细胞裂解液,该裂解液已被国内各大研究机构广泛使用,用户普遍反映很好。裂解细胞或组织后,没有非常粘滞的透明状DNA 团块形成,不必采用超声处理等就可以非常理想地用于后续操作。另外该裂解液裂解的产物也适合用于磷酸化蛋白的Western检测。 对于某些特殊蛋白的IP,如果发现Western及IP细胞裂解液效果不是非常理想,可以尝试用RIPA裂解液(强、中或弱)或NP-40裂解液。如果发现IP的时候背景很高,即非特异的蛋白也被IP下来,则需要选用裂解强度较高的裂解液,例如RIPA裂解液(强或中)。如果发现目的蛋白无法被IP下来,则说明裂解液的强度过强,可以使用较为温和的裂解液例如RIPA裂解液(弱)或

NP-40裂解液。 对于某些难溶解蛋白的Western,如果发现Western及IP细胞裂解液效果不是非常理想,可以尝试使用裂解强度更高的裂解液例如RIPA裂解液(强、中)或SDS裂解液。 RIPA裂解液(强) (RIPA Lysis Buffer) Code No. PG410501 产品简介:?本公司的RIPA裂解液(RIPA Lysis Buffer)是一种传统的细胞组织快速裂解液。 RIPA裂解液裂解得到的蛋白样品可以用于常规的Western、IP等。 ?RIPA的本意是Radio Immunoprecipitation Assay。RIPA裂解液的配方有很多种,根据其裂解液的强度大致可以分为强、中、弱三类。 ?RIPA裂解液(强)的主要成分为50mM Tris (pH 7.4),150mM NaCl,1% Triton X-100,1% sodium deoxycholate,0.1% SDS,以及sodium orthovanadate, sodium fluoride,EDTA,leupeptin等多种抑制剂。可以有效抑制蛋白降解。 ?用RIPA裂解液裂解得到的蛋白样品,可以用本公司的BCA蛋白浓度测定试剂盒(PG400301)测定蛋白浓度。由于含有较高浓度的去垢剂,不能用Bradford法 测定由本裂解液裂解得到样品的蛋白浓度。 包装清单:?RIPA裂解液(强) ?说明书100ml 1份 保存条件:?-20℃保存,一年有效。 注意事项:?为取得最佳的使用效果,尽量避免过多的反复冻融。可以适当分装后使用。 ?需自备PMSF。 ?裂解蛋白的所有步骤都需在冰上或4℃进行。 ?为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。 使用说明:?对于培养细胞样品: ?融解RIPA裂解液,混匀。取适当量的裂解液,在使用前数分钟内加入 PMSF,使PMSF的最终浓度为1mM。 ?对于贴壁细胞:去除培养液,用PBS、生理盐水或无血清培养液洗一遍 (如果血清中的蛋白没有干扰,可以不洗)。按照6孔板每孔加入 150-250微升裂解液的比例加入裂解液。用枪吹打数下,使裂解液和细 胞充分接触。通常裂解液接触细胞1-2秒后,细胞就会被裂解。 ?对于悬浮细胞:离心收集细胞,用手指把细胞用力弹散。按照6孔板每 孔细胞加入150-250微升裂解液的比例加入裂解液。再用手指轻弹以充 分裂解细胞。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。如果细胞量较多,必 需分装成50-100万细胞/管,然后再裂解。 ?充分裂解后,10000-14000g离心3-5分钟,取上清,即可进行后续的 PAGE、Western和免疫沉淀等操作。裂解液用量说明:通常6孔板每孔 细胞加入150微升裂解液已经足够,但如果细胞密度非常高可以适当加 大裂解液的用量到200微升或250微升。 ?对于组织样品: ?把组织剪切成细小的碎片。

细胞组织裂解(提蛋白)方法

第一种方法 蛋白匀浆缓冲液: 50 mM Tris-HCl (pH7.5) 150 mM NaCl 5 mM EDTA 1 % NP-40 1 mM PMSF 操作步骤 直接用这个进行组织匀浆 然后于10000 rpm 离心20分钟收集上清 作SDS-PAGE电泳从染色的情况来看所得到的总蛋白纯度都不错条带比较清晰。我是作的小鼠八种常规组织也包括肾脏在内。 将抽提好的蛋白分装后直接放在负八十保存。上样大概3~8ul每孔都可以的具体看个人需要。70v浓缩,150v分离 第二种方法 裂解液配方: 尿素:8M CHAPS:4% DTT:65mM(现加)PMSF:1mM(现加)MiliQ 水操作步骤: 取300mg样品在液氮环境下研磨, 加入1ml裂解液混匀, 室温静置1小时(实验证明改为匀浆更好,蛋白降解轻), 15000g离心1小时, 取上清测定蛋白质浓度。 在裂解液中加IPG buffer有两个作用:1,增强蛋白质的溶解性2,可以结合核酸,在沉淀的时候予以

除去。建议最好加,浓度从0.5-2%不等(这取决于您样品蛋白质的难溶程度)。IPG buffer 是载体两性电解质,IPG buffer另外一个作用是促进蛋白质溶解的,所以IEF前一定要加,裂解液中没有IPG buffer可以么? (可以的,最后上胶条的时候可以再加) 不过,我觉得液氮研磨以后,最好是粗离心一下,把一些结缔组织给离心掉(150g既可)然后再加裂解液。裂解液加1ML应该没什么问题,主要取决你以后蛋白的浓度。用这个方法最好经丙酮沉淀一次比较好) 第三种方法 建议最好加完裂解液后再用超声波破碎,我做肝脏蛋白提取时一般采取400W工作10秒,间歇10秒,次数15次,一次结束后大约30分钟再重复上述步骤一次(因为不同的样品用一根超声柱子,可能会导致污染,所以一定要用双蒸水冲洗干净,再用70%乙醇洗一下,再用水洗一次),另外样品超声时要置于冰浴中,以免产热 做过的是用10ml蛋白裂解液来匀浆3克的组织,最终用考马斯亮兰染色法测得的蛋白浓度大概为30~50 ug/ul 测595 OD值时,设定一个只用水的空白,把所有测得的值都减去这个空白。再用减后的值做标准曲线。查得未知蛋白浓度时,也要用减后的值在标准曲线上查得。 培养细胞 细胞培养于100 mL/L FCS+RPMI1640培养基中,待生长至对数生长期密度约为80%时用细胞括括下细胞离心收集.按细胞/裂解液体积比1:10加入细胞裂解液(7 mol/L尿素,2 mol/L硫

溶液各种配制

附录:常用试剂配制及应用 一、常用缓冲液、试剂的配制 碳酸盐缓冲液(Carbonate-Bicarbonate Buffer) 由于碳酸盐pH值偏碱,因此,常用于pH>9的缓冲液配制(附表1)。 附表1. 0.2 mol/L碳酸盐缓冲液(pH9.2~10.7) 磷酸缓冲液(Phosphate Buffers,PB) 磷酸盐是使用最广泛的一种缓冲剂,由于它们是二级解离,有二个pKa 值, PO4:pKa1=2.12,pKa2=7.21;所以用它们配制的缓冲液,pH 范围最宽。NaH 2 HPO4:pKa1=7.21,pKa2=12.32。 Na 2 另外,磷酸盐还有钾盐分子形式,一般来说,低温时钠盐难溶,钾盐易溶,因此,配制细胞培养用试剂时常常添加钾盐试剂,但若配制十二烷基硫酸钠(SDS)-聚丙烯酰胺凝胶电泳的缓冲液时,只能用钠盐而不能用钾盐,因为SDS会与磷酸钾生成难溶的十二烷基硫酸钾。 磷酸缓冲液的优点为:①可配制成不同离子强度的缓冲液;②适用pH缓冲范围较宽;③受温度影响缓冲液pH值变化较小;④离子强度对缓冲液pH影响较小,如0.1mol/L缓冲液稀释10倍其pH变化小于0.1。 磷酸缓冲液的缺点是:①磷酸盐易与钙离子(Ca2+)、镁离子(Mg2+)及重金属离子结合生成不溶的沉淀物;②可能干扰某些化学反应过程,如对某些酶的催

化活性具有一定程度的抑制作用。 NaH 2PO 4 的pH值偏酸性,可用作pH<4的缓冲液。 Na 2HPO 4 的pH值偏碱性,可用作pH>10的缓冲液。 而pH=6~8的中性缓冲液是更常用的缓冲液,需要NaH 2PO 4 与Na 2 HPO 4 两种磷 酸盐混合配制(附表2)。 附表2. 0.2 mol/L磷酸盐缓冲液(pH5.7~8.2) 磷酸盐缓冲溶液(Phosphate-buffered saline, PBS) 磷酸盐缓冲液是在磷酸缓冲液基础上添加NaCl以维持溶液的渗透压,因此,PBS适用于做细胞缓冲液,常用PBS配制如下。 NaCl 8g KCl 0.2g Na 2HPO 4 1.44g KH 2PO 4 0.24g

高效RIPA组织、细胞裂解液使用说明

高效RIPA组织/细胞裂解液使用说明 货号:R0010 规格:20ml/100ml 本产品配有一支PMSF(0.3ml/1.5ml) 保存:RIPA裂解液4℃保存,PMSF-20℃保存。 使用说明: 如发现RIPA有沉淀,请放室温半小时或者常温水浴使沉淀溶解。 根据使用量,取每1ml RIPA加入10ul PMSF,使PMSF的最终浓度为1mM。混匀备用(PMSF现用现加)。 1、样品前处理: a)对于贴壁细胞:去除培养液,用PBS、生理盐水或无血清培养液洗一遍。按照6孔板每孔细胞量加入150-250ul裂解液的比例加入裂解液。用枪吹打数下,使裂解液和细胞充分接触。 b)对于悬浮细胞:离心收集细胞,用手指把细胞用力弹散。按照6孔板每孔细胞量加入150-250ul裂解液的比例加入裂解液,再用手指轻弹以充分裂解细胞。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。如果细胞量较多,必需分装成50-100万细胞/管,然后再裂解。 c)对于组织样品:把组织剪切成细小的碎片。按照每20mg组织加入150-250ul裂解液的比例加入裂解液。(如果裂解不充分可以适当添加更多的裂解液,如果需要高浓度的蛋白样品,可以适当减少裂解液的用量)。

用玻璃匀浆器匀浆,直至充分裂解。 2、后处理: 将裂解后的样品10000-14000g离心3-5分钟,取上清,即可进行后续的蛋白浓度测定、SDS-PAGE、Western blotting和免疫沉淀等操作。 注意事项: 本试剂为强烈型裂解液,可以提取核蛋白,但在提取核蛋白的同时,也会将基因组一并释放出来,若细胞量多会造成细胞裂解液粘稠:此时可以直接加入蛋白上样缓冲液,煮沸再离心,离心后直接上样电泳;若想测定浓度,可入加少量SDS(1%),煮沸后离心测浓度。本系列蛋白提取试剂所提取的蛋白由于含有去污剂,所以不适合使用Bradford蛋白浓度测定试剂盒,请选择BCA法或者Lowry法检测蛋白浓度。 如果需要检测和基因组结合特别紧密的蛋白,则可以通过超声处理打碎打散粘稠状物,随后离心取上清用于后续实验。 相关试剂: P10201×PBS,PH7.2-7.4,0.01M R0020RIPA组织细胞裂解液 R0030非变性组织细胞裂解液 P10154×蛋白上悪缓冲液(含DTT) PC002BCA法蛋白浓度测定试剂盒 PC0030Lowry法蛋白浓度测定试剂盒

裂解液配制方法

1、红细胞裂解液(去除红细胞) 配制试剂所需材料: 1. Ammonium Chloride x10 Lysing Concentrate Solution a) NH4Cl (1.5 M) 80 g b) KHCO3 (100 nM) 10 g c) Na4EDTA (10 nM) 3.7 g d) Distilled H2O 1000 mL 2. 1N HCl or 1N NaOH(调节pH值用) 配制步骤: 1. 将以上a、b、c试剂溶于900ml 去离子水中; 2.调节溶液pH值到7.2-7.4,加去离子水定容到1000ml; 3.在制备工作液时,将此储存液稀释10倍后使用。 保存: 1.10x 储存液储存于2-8°C不能超过半年(六个月); 2.在使用前,工作液每天都应该新鲜配制放置于室温,当日用不完的弃掉。 2、ripa裂解液 NP-40 or Triton-100 1% TrisHCl (pH 8.0) 50mmol/L NaCl 150mmol/L PMSF(苯甲基磺酰氟)0.1mmol/L(100μg/ml) Pepstatin(胃蛋白酶抑制剂) 1 μmol/L(0.7μg/ml) Leupeptin(亮抑制肽)0.5mg/ml Aprotinin(抑蛋白酶肽)0.3μmol/L(1μg/ml) (注:PMSF 贮存液:100mmol/L即17.4mg/ml于异丙醇中; Aprotinin 贮存液:10mg/ml溶于0.01mol/LHEPES(pH8.0); Leupeptin 贮存液:10mg/ml溶于水中; Pepstatin 贮存液10mg/ml于甲醇液中.均于-20℃保存) 3、细胞裂解液(Tris-HCL) 1.1M Tris 溶液的配置 取Tris242.2g,加ddH2O至1600ml,加热溶解。 2.1M Tris-HCL Ph=8.0溶液的配置 取1M Tris 溶液160ml用分析纯盐酸调至Ph=8.0(需浓盐酸约8.5ml),加ddH2O 定容至200ml,高压灭菌备用。 3. 0.5M EDTA溶液的配置 称EDTA-Na2 37.2g 先用140ml ddH2O溶解,加入14ml NaOH(10M)使EDTA -Na2溶解,再用NaOH(10M)溶液调至Ph=8.0,加ddH2O定容至200ml,高压灭菌备用。 4. 细胞裂解液的配制 称15gCTAB(Hexadecyltrimethylammonium bromide)(先用约600ml ddH2O加热溶解)放入烧杯中,加入75ml 1M Tris-HCL(Ph=8.0),58.5g NaCL(先用少量ddH2O溶解),30ml 0.5M EDTA,定容至1000ml,混合均匀备用。

Western及IP细胞裂解液(无抑制剂)使用说明

Western及IP细胞裂解液(无抑制剂)使用说明 货号:LS00160 规格:100mL 保存:-20℃保存,12个月。 产品说明: 多种成分均可以从细胞中提取总蛋白,如Triton、SDS、NP-40等,Western及IP细胞裂解液是采用一种非变性裂解方法来裂解细胞,并获得总蛋白的裂解液。所获得的蛋白质可以用于PAGE电泳,Western,免疫沉淀(Immunol Precipitation,IP)和免疫共沉淀(co-IP)等,主要由Tris-HCl、NaCl、低浓度Triton X-100,低浓度sodium pyrophosphate等组成,不含蛋白酶、磷酸酶抑制剂,并维持原有的蛋白间相互作用。用Western及IP细胞裂解液(无抑制剂)(Cell lysis buffer for Western and IP without inhibitors)得到的蛋白,可以用BCA蛋白定量试剂盒测定蛋白浓度。由于含有较高浓度的Triton X-100等干扰物质,不宜用Bradford法测定由Western及IP细胞裂解液获得样本的蛋白浓度。 操作步骤(仅供参考): (一)贴壁培养细胞 1、取Western及IP细胞裂解液室温溶解混匀,根据需要选择添加或不添加蛋白酶抑制 剂。 2、去除贴壁细胞的培养液,用PBS、NS或无血清培养液清洗1次,低速离心,弃上清, 留取沉淀。 3、按照6孔板每孔加入100~200μL裂解液的比例,加入Western及IP细胞裂解液。移液 器轻轻吹打,使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液作用于细胞1~5s内,细胞就会被裂解。

4、10000~12000g,离心3~5min(如果用冷冻离心机4℃离心效果更佳),取上清。 5、进行后续的SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。 (二)悬浮培养细胞 1、取Western及IP细胞裂解液室温溶解混匀,根据需要选择添加或不添加蛋白酶抑制 剂。 2、低速离心悬浮细胞,弃上清,收集沉淀。 3、用手指轻弹细胞,使其松散。按照6孔板每孔细胞加入100~200μL裂解液的比例, 加入Western及IP细胞裂解液。通常6孔板每孔细胞加入100μL裂解液已经足够,但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到150~200μL,再用手指轻弹以充分裂解细胞。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。 4、10000~12000g,4℃离心3~5min(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。 5、进行后续的PAGE、Western、免疫沉淀等操作。 (三)组织样本 1、取Western及IP细胞裂解液置于室温溶解混匀,根据实验需要选择添加或不添加蛋 白酶抑制剂。 2、把组织剪切成细小的碎片,越小越好。 3、取在液氮或超低温冰箱中冷冻30min以上的组织,迅速用液氮研磨,研磨过程尽量 控制在1~2min之内,以减少蛋白的降解。 4、按照每20mg组织加入100~200μl裂解液的比例,加入含有PMSF的裂解液。冰上或 4℃裂解30~60min。 5、步骤3、4亦可以采用如下过程:按照每20mg组织加入100~200μL裂解液的比例加入 Western及IP细胞裂解液。用玻璃匀浆器或组织研磨器匀浆,直至充分裂解,过程尽量

Western及IP细胞裂解液

Western及IP细胞裂解液 产品简介: 多种成分均可以从细胞中提取总蛋白,譬如Triton、SDS、NP-40等。Western及IP 细胞裂解液(Cell lysis buffer for Western and IP),是采用一种非变性裂解方法来裂解细胞,并获得总蛋白的裂解液。所获得的蛋白质可以用于SDS-PAGE,Western,免疫沉淀(Immunol Precipitation,IP)和免疫共沉淀(co-IP)等,主要由Tris、Triton X-100组成,并含有多种蛋白酶抑制剂成分,可以有效抑制蛋白的降解,并维持原有的蛋白间相互作用。 用Western及IP细胞裂解液裂解得到的蛋白样品,可以用leagene BCA蛋白浓度测定试剂盒(PT0001测定蛋白浓度。由于含有较高浓度的Triton X-100等干扰物质,不宜用Bradford法测定由Western及IP细胞裂解液获得的样本的蛋白浓度。 产品组成: 主要成分:主要由 Tris-HCl、NaCl、Triton X-100,以及sodium pyrophosphate、β-glycerophosphate、EDTA等多种蛋白酶抑制剂组成。 自备材料: 1、高速离心机 2、微量移液器 3、PMSF,亦可采购Leagene的苯甲基磺酰氟溶液(PMSF,100mmol/L)(PI0011) 操作步骤(仅供参考): (一)贴壁培养细胞 1、取Western及IP细胞裂解液置于室温溶解混匀后,使用前取适当量的裂解液加入 PMSF,使其最终浓度为1mM。 2、去除贴壁细胞的培养液,用PBS、NS或无血清培养液清洗1次,低速离心,弃上清, 留取沉淀。 3、按照6孔板每1孔加入100~200μl含有PMSF的裂解液的比例,加入Western及IP 细胞裂解液。移液器轻轻吹打,使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液作用于细胞1~5s内,细胞就会被裂解。 4、10000~12000g,离心3~5min(如果用冷冻离心机4℃离心效果更佳),取上清。

组织裂解液和细胞裂解液的配制

组织裂解液和细胞裂解液如何配制? 一、细胞裂解液配制 方法一 一、试剂准备 1、新鲜配制冷的 RIPA 裂解缓冲液: 150 mM NaCL 1% NP-40 (去垢剂) 0.1% SDS (去垢剂) 2ug/ml Aprotinin (蛋白酶抑制剂) (使用前加入) 2ug/ml Leupeptin (蛋白酶抑制剂) (使用前加入) 1 mM PMSF (蛋白酶抑制剂) 1.5 mM EDTA (蛋白酶抑制剂) 1mM NaVanadate (磷酸脂酶抑制剂)(任选) 以上所有试剂均按比例溶于150 mM NaCL溶液中。 2、冷的PBS 中加入 1 mM PMSF 1.5 mM EDTA 1mM NaVanadate (钒酸钠)(任选) 3、对数期生长状态佳的细胞,75cm至少3-4瓶(90%以上生长面积)。 二、实验步骤 1、将长满细胞的培养瓶放置在冰上,用吸液管吸出培养液。加入足够的冷的PBS在培养瓶中充分洗涤细胞表面,以洗去瓶中残留的培养基,倒掉PBS ,重复以上操作2-3遍。在最后一次洗涤中尽可能吸干残留的PBS,尽量在冰上操作。 2、向培养瓶中加入冷的RIPA 裂解缓冲液 (每75cm2 培养瓶加1ml). 然后用细胞刮子沿着瓶壁开始刮细胞,如果所需要刮的同种细胞有多瓶,则将第一瓶刮下的细胞液吸出转入下一瓶中继续刮(由于处理后的细胞裂解液较粘稠,所以宜用直径大点的吸液管吸取)。 3、吸出刮好的细胞裂解液置于14ml 离心管中(置于冰上),然后重复步骤2以刮取剩下的细胞。 4、尽可能将多的细胞裂解液收集到14ml的离心管中,样品插入冰盒进行超声,超声强度以不产生泡沫为准,超声每次2-3秒,重复3-4次。如仍有细胞碎片或沉淀,应离心10000rpm,10分钟,留取上清。 5、取出小量细胞裂解液测其蛋白浓度(用Biorad Bradford 试剂盒或紫外分光光度计,在A280测定),分装保存在 -70℃。

DNA提取液配方及步骤

裂解液配方:100mmol Tris-Hcl(PH8.0); 25mmol EDTA(PH 8.0); 500mmol NaCl; 1%SDS 母液配制: 1.500mmol Tris-Hcl(PH8.0) 称取15.1425g Tris,加入150ml 蒸馏水,加入Hcl调PH至8.0,定容至250ml。 2.100mmol EDTA或EDTA-Na2 称取7.3062g EDTA或8.455g EDTA-Na2,加入200ml 蒸馏水,调PH至8.0,定容至250ml。 3.5mol NaCl 称取29.22g NaCl,加入90ml 蒸馏水,定容至100ml。 4.10% SDS 称取10gSDS,加入100ml蒸馏水。 蛋白酶K配置:10mg/ml蛋白酶K溶液。 称取10mg蛋白酶K粉末,加入1ml蒸馏水溶解。-20度保存。 配制1000ml裂解液:加入溶液1体积为200ml,加入溶液2体积为250ml,加入溶液3体积为100ml,加入溶液4为100ml。配制500ml裂解液则相应减半。 步骤: 1.在1.5ml离心管中加入0.2ml(200ul)裂解液,用配套的研磨棒杵成浆状,加入2ul浓度为10mg/ml的蛋白酶K至终浓度100ug/ml,45度水浴2-4h。 2.加入RNaseA至终浓度20ug/ml,水浴30min。 3.加入0.7ml苯酚:氯仿:异戊醇(25:24:1),轻微颠倒混匀,14000rpm离心5min。 4.中号枪头切去头部,抽取上清,重复抽提一次。 5.取上清,加入等体积氯仿:异戊醇(24:1),14000rpm离心5min。 6.取上清,加入2-2.5倍体积的无水乙醇,颠倒混匀,材料用量较多的昆虫可看到DNA沉淀,材料用量较少或酒精长时间浸泡着的标本可在-70度放置30min,14000rpm离心5min。 7.75%乙醇漂洗沉淀两次,无水乙醇漂洗,室温干燥。 8.根据沉淀量,加入30-50ulddH2O。 方法二: 1.在1.5ml离心管中加入0.1ml(100ul)裂解液,用配套的研磨棒杵成浆状,用400ul裂解液冲洗研磨棒,加入5ul浓度为10mg/ml的蛋白酶K至终浓度100ug/ml,45度水浴1-2h。 2.加入RNaseA至终浓度20ug/ml,水浴15min。 3.加入等体积苯酚:氯仿:异戊醇(25:24:1),轻微颠倒混匀,14000rpm离心5min。 4.取上清,加入等体积氯仿:异戊醇(24:1),14000rpm离心5min。 5.取上清,加入2-2.5倍体积的无水乙醇,14000rpm离心10min。 6.75%乙醇漂洗沉淀两次,无水乙醇漂洗,室温干燥。 7根据沉淀量,加入30-50ulddH2O。

细胞裂解

我以前做蛋白大量表达超声破碎时,总体积为200ml,功率300瓦,超3秒,停3秒,60次为一个循环,每个循环之间停5min,共作了3个循环,效果很好。 不知你的“原来的80倍”是多少,如果和我的差不多,是要延长总时间,但要注意样品要放在冰上,中间停一会,防止产生的热量太多,使蛋白变性。 我的方案是: 1 细胞先用无菌PBS洗二次; 2 吹下细胞后,4度12000rpm/min离心10min,再用无菌PBS悬浮,重复离心一次; 3 常规超声波处理。 注意事项: 1 全部处理过程一定要在冰上进行; 2 超声波时,一定不要有泡沫产生; 3 在冰上超声波处理。 由于上次求助无人回应,一气之下遍找资料,汇总出菌体/细胞裂解的常用方法和配方,希望能对其它求助兄弟有所帮助。 菌体/细胞裂解法汇总 一、反复冻融法: 1、将细胞在-20度以下冰冻,室温融解,反复几次,由于细胞内冰粒形成和剩余细胞液的盐浓度增高引起溶胀,使细胞结构破碎。 https://www.360docs.net/doc/b815179788.html,/c?word=%B4%F3%B3%A6%3B%B8%CB%BE%FA%2C%C1%D1%BD%E2&url=http%3A//www%2E bioon%2Ecom/experiment/mb/mb1/200410/80878%2Ehtml&b=0&a=3&user=baidu 2、至少3次以上冻溶。 https://www.360docs.net/doc/b815179788.html,/bbs/actions/archive/post/3895899_0.html 3、IFCC推荐法: 收集细胞悬液,4℃低温离心(3000rpm,5min),弃上清,加入一定量PBS(200ul),轻轻吹打混匀,-200C 冷冻30 min,370C 解冻,如此反复3次,可形成细胞裂解液。 https://www.360docs.net/doc/b815179788.html,/bbs/actions/archive/post/252157_0.html 4、用液氮冻融三四次就可以了,细胞冻住后,取出放37度水浴,溶解后震荡,再冻 https://www.360docs.net/doc/b815179788.html,/dispbbs.asp?BoardID=89&ID=142945&replyID=597858&skin=1 二、超声波处理法 1、要设定好超声时间和间隙时间,一般超声时间不超过5秒,间隙时间最好大于超声时间,这些都有利于保护酶的活性。我的实验超声时间5秒、间隙时间10秒、工作次数20次。 https://www.360docs.net/doc/b815179788.html,/bbs/actions/archive/post/3895563_0.html 2、每个样本超声时间5秒,每个间隔5秒,粉碎5次。 https://www.360docs.net/doc/b815179788.html,/bbs/actions/archive/post/3895899_0.html 3、100ml菌液离心,用8ml缓冲液悬浮,加8mg溶菌酶,冰浴30min,然后超声处理。750W 40%功率。5

蛋白裂解液

蛋白质的定位与蛋白质裂解液的选择: 全细胞:NP-40或RIPA 细胞质(可溶):Tris-HCl 细胞质(细胞骨架):Tris-Triton 细胞膜:NP-40或RIPA 细胞核:RIPA 线粒体:RIPA RIPA裂解液配方 Aprotinin 10μg/μl ;用10mM HEPES-KOH(PH8.0)溶解,备用。 ●Nonidet P-40简称NP-40,乙基苯基聚乙二醇,常用非离子性去垢剂。 ●Na-deoxycholale,脱氧胆酸钠,离子型去垢剂。离子型去垢剂主要作用有:裂解细胞;溶解蛋白,尤其是可以溶解一些难溶于水的蛋白,如膜蛋白等;很适合做WB,但在Co-IP中使用,需要谨慎。 ●亮抑霉肽(Leupeptin):抑制丝氨酸蛋白酶包括胰蛋白酶、纤溶酶、猪胰激肽原酶)和半胱氨酸蛋白酶(包括木瓜蛋白酶和组织蛋白酶B) ●抑肽素A(Pepstatin A)抑制各种天门冬氨酸蛋白酶,例如组织蛋白酶D、肾素、胃蛋白酶、细菌天门冬氨酸蛋白酶和HIV蛋白酶; ●胰凝乳蛋白酶抑制剂(Chymostatin)抑制具有糜蛋白酶类特异性丝氨酸蛋白酶(包括糜蛋白酶、胃促胰酶、组织蛋白酶G)和大多数丝氨酸蛋白酶(包括组织蛋白酶B,H,L) ●抗木瓜蛋白酶(Antipain)抑制木瓜蛋白酶、胰蛋白酶和纤溶酶。 ●氟化钠抑制酸性磷酸酶 ●正钒酸钠:抑制碱性磷酸酶和酪氨酸磷酸酶(tyrosine phosphatase) ●焦磷酸钠(sodium pyrophosphate):抑制丝氨酸-苏氨酸磷酸酶(serine-threonine phosphatase)。 在与蛋白相关的检测中,首先最关键的一步便是蛋白质的提取。蛋白质的提取过程中,我们要经常加和蛋白酶抑制剂以防止蛋白质的降解。另外在磷酸化蛋白的研究过程中,磷酸酶抑制剂也是必不可少的,本文总结了常用的蛋白酶抑制剂PMSF,Leupeptin 亮肽素,Aprotinin 抑肽酶,Pepstatin胃蛋白酶抑制剂,EDTA-Na2等以及磷酸酶抑制剂NaF氟化钠,Na3VO4 原矾酸钠,BETA-glycerophosphate 甘油磷酸钠,Na2P2O4 焦磷酸钠等。对这些蛋白酶抑制剂的溶解配制,贮存液与工作液浓度,保存都做了详细的说明。

SDS裂解液

SDS 裂解液 简介: 多种成分均可以从细胞中提取总蛋白,例如Triton 、SDS 、NP-40等。SDS 裂解液 (SDS Lysis Buffer)是一种极其强烈的细胞组织快速裂解液并获得总蛋白质。其裂解液强度大于NP-40裂解液、RIPA 裂解液(弱)、RIPA 裂解液(中)、通用细胞裂解液、Western 及IP 细胞裂解液,所获得的蛋白质可以用于Western 、染色质免疫共沉淀(ChIP)等。SDS Lysis Buffer 主要由Tris-HCl 、NaCl 、SDS 等组成,并含有多种蛋白酶抑制剂成分,可以有效抑制蛋白的降解,并维持原有的蛋白间相互作用。 组成: 操作步骤(仅供参考): (一)贴壁培养细胞 1、 取SDS Lysis Buffe 室温溶解混匀,使用前取适量裂解液加入PMSF ,使终浓度为1mM 。 2、 去除贴壁细胞的培养液,低速离心,弃上清,留取沉淀。 3、 按照6孔板每孔加入150~250μl 含有PMSF 的裂解液的比例加入SDS Lysis Buffer 。 移液器轻轻吹打,使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液作用于细胞内,细胞就会被裂解。如果是所提蛋白样品用于CHIP, 应置于冰上或4℃裂解。 4、 离心(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。 5、 进行后续的Western 、染色质免疫共沉淀(ChIP)等操作。 (二)悬浮培养细胞 1、 取SDS Lysis Buffer 置于室温溶解混匀后,使用前取适量裂解液加入PMSF ,使其最终 浓度为1mM 。 2、 低速离心悬浮细胞,弃上清,收集沉淀。 3、 用手指轻弹细胞,使其松散。按照6孔板每孔细胞加入150~250μl 含有PMSF 的裂 解液的比例,加入SDS Lysis Buffer 。 4、 4℃离心(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。 5、 进行后续的Western 、染色质免疫共沉淀(ChIP)等操作。 (三)组织样本 编号 名称 PS0015 Storage SDS Lysis Buffer 100ml -20℃ PMSF(100mM) 1.5ml -20℃ 使用说明书 1份

通用细胞裂解液

通用细胞裂解液 产品简介: 多种成分均可以从细胞中提取总蛋白,例如去Triton、SDS、NP-40等。通用细胞裂解液(Common Lysis Buffer ),是采用一种非变性裂解方法来裂解细胞,并获得总蛋白的裂解液。所获得的蛋白质可以用于PAGE电泳,Western,免疫沉淀(Immunol Precipitation,IP)和免疫共沉淀(co-IP)等,主要由Tris、Triton X-100等组成,并含有多种蛋白酶抑制剂成分,可以有效抑制蛋白的降解,并维持原有的蛋白间相互作用。 用Common Lysis Buffer得到的蛋白,可以用leagene BCA蛋白浓度测定试剂盒(PT0001)测定蛋白浓度。由于含有较高浓度的Triton X-100等干扰物质,不宜用Bradford 法测定由通用细胞裂解液获得样本的蛋白浓度。 主要成分:主要由Tris-HCl、NaCl、低浓度Triton X-100,低浓度sodium pyrophosphate,β-glycerophosphate,EDTA等多种蛋白酶抑制剂组成。 自备材料: 1、高速离心机 2、微量移液器 3、PMSF,亦可采购Leagene的苯甲基磺酰氟溶液(PMSF,100mmol/L)(PI0011) 操作步骤(仅供参考): (一)贴壁培养细胞 1、取Leagene Common Lysis Buffer 置于室温溶解混匀后,使用前取适当量的裂解液 加入PMSF,使其最终浓度为1mM。 2、去除贴壁细胞的培养液,用PBS、NS或无血清培养液清洗1次,低速离心,弃上清, 留取沉淀。 3、按照6孔板每1孔加入100~200μl含有PMSF的裂解液的比例,加入Common Lysis Buffer。移液器轻轻吹打,使裂解液和细胞充分接触。冰上或4℃裂解30~60min。 4、10000~12000g,4℃离心10~15min(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。

细胞裂解方法

裂解方法包括化学裂解、酶裂解和机械裂解。化学裂解和酶裂解通常是比较温和的方法,通常会很少使DNA断裂。这两种方法(包括SDS和溶菌酶处理等)提取纯化DNA中常用的方法。机械裂解可以更均一的裂解细胞,同化学裂解相比,机械处理具有更高的裂解效率和更低的选择性。机械处理可以更剧烈和全面的裂解细胞,但也会造成DNA的断裂。 一、机械裂解法主要有以下两中: 1.热休克(Thermal shock),既反复冻溶法,是一种常用的机械裂解方式比,通常由冷冻和解冻两部分组成(freezing and thawing),。原理:由于细胞内冰粒形成和剩余细胞液的盐浓度增高引起溶胀,使细胞结构破碎。冷冻通常在液氮或-20°C冰上进行,解冻可以在37、50、65或100℃水浴中进热休克比化学裂解温和,但是很有效,有资料表明用热休克和溶菌酶与SDS的方法获得了90%的细胞裂解率。 2.超声波处理(Ultrasonication)既利用超声加热的方法,把细胞破碎。但这种处理会导致DNA的断裂,所以加热不宜过剧烈,要设定好超声时间和间隙时间,一般超声时间不超过5秒,间隙时间最好大于超声时间,这些都有利于保护酶的活性。bead-beating也是常用的机械处理方式,有报道指出bead-beating比热休克和化学裂解的细胞裂解效果更好虽然DNA产量较高,但通常得到的DNA片段较小。 二、化学裂解和酶裂解法(在提核酸时联合使用) 主要是裂解液处理法,细胞裂解液的主要目的有以下几种:(1)利用去污剂破坏脂质双分子层,破裂细胞;(2)溶解蛋白;(3)蛋白变性使其稳定;(4)抑制蛋白酶活性。 主要根据不同的目的,裂解液的组成有所不同,主要有提取核酸和蛋白两中。在提取RNA 或DNA时,我们主要是要充分裂解细胞,得到更多的核酸;如果我们的目的是蛋白,那要根据蛋白的位置、特性等因素考虑裂解液,在提取蛋白后,再根据实验需要复性蛋白等。以下是细胞裂解中常用试剂和其作用: 50mM Tris-HCl pH7.4(缓冲体系),150mM NaCl(等渗体系),1mM PMSF(强大的蛋白酶抑制剂),1mM EDTA(变性剂和稳定剂),5μg/ml Aprotinin(蛋白酶抑制剂),5μg/ml Leupeptin(蛋白酶抑制剂),1%Triton x-100(破坏细胞),1%Sodium deoxycholate(中度变性剂和蛋白溶解剂),0.1%SDS(强变性剂和蛋白溶解剂)。7M尿素,2M硫脲(可以提高膜蛋白的融解),蛋白酶K等。

组织裂解液和细胞裂解液配制

组织裂解液和细胞裂解液如何配制 一、细胞裂解液配制 方法一 一、试剂准备 1、新鲜配制冷的 RIPA 裂解缓冲液: 150 mM NaCL 1% NP-40 (去垢剂) 0.1% SDS (去垢剂) 2ug/ml Aprotinin (蛋白酶抑制剂) (使用前加入) 2ug/ml Leupeptin (蛋白酶抑制剂) (使用前加入) 1 mM PMSF (蛋白酶抑制剂) 1.5 mM EDTA (蛋白酶抑制剂) 1mM NaVanadate (磷酸脂酶抑制剂)(任选) 以上所有试剂均按比例溶于150 mM NaCL溶液中。 2、冷的PBS 中加入 1 mM PMSF 1.5 mM EDTA 1mM NaVanadate (钒酸钠)(任选) 3、对数期生长状态佳的细胞,75cm至少3-4瓶(90%以上生长面积)。 二、实验步骤 1、将长满细胞的培养瓶放置在冰上,用吸液管吸出培养液。加入足够的冷的 PBS在培养瓶中充分洗涤细胞表面,以洗去瓶中残留的培养基,倒掉PBS ,重复以上操作2-3遍。在最后一次洗涤中尽可能吸干残留的PBS,尽量在冰上操作。 2、向培养瓶中加入冷的RIPA 裂解缓冲液 (每75cm2 培养瓶加1ml). 然后用细胞刮子沿着瓶壁开始刮细胞,如果所需要刮的同种细胞有多瓶,则将第一瓶刮下的细胞液吸出转入下一瓶中继续刮 (由于处理后的细胞裂解液较粘稠,所以宜用直径大点的吸液管吸取)。 3、吸出刮好的细胞裂解液置于14ml 离心管中(置于冰上),然后重复步骤2以刮取剩下的细胞。 4、尽可能将多的细胞裂解液收集到14ml的离心管中,样品插入冰盒进行超声,超声强度以不产生泡沫为准,超声每次2-3秒,重复3-4次。如仍有细胞碎片或沉淀,应离心10000rpm,10分钟,留取上清。 5、取出小量细胞裂解液测其蛋白浓度(用Biorad Bradford 试剂盒或紫外分光光度计,在A280测定),分装保存在 -70℃。 方法二 NP-40 or Triton x-100 1% TrisHCl (pH 8.0) 50mmol/L NaCl 150mmol/L PMSF(苯甲基磺酰氟)0.1mmol/L(100μg/ml) Pepstatin(胃蛋白酶抑制剂) 1 μmol/L(0.7μg/ml) Leupeptin(亮抑制肽) 0.5mg/ml

裂解液配制方法

裂解液配制方法 The manuscript was revised on the evening of 2021

1、红细胞裂解液(去除红细胞) 配制试剂所需材料: 1. Ammonium Chloride x10 Lysing Concentrate Solution a) NH4Cl (1.5 M) 80 g b) KHCO3 (100 nM) 10 g c) Na4EDTA (10 nM) 3.7 g d) Distilled H2O 1000 mL 2. 1N HCl or 1N NaOH(调节pH值用) 配制步骤: 1. 将以上a、b、c试剂溶于900ml 去离子水中; 2.调节溶液pH值到,加去离子水定容到1000ml; 3.在制备工作液时,将此储存液稀释10倍后使用。 保存: 储存液储存于2-8°C不能超过半年(六个月); 2.在使用前,工作液每天都应该新鲜配制放置于室温,当日用不完的弃掉。 2、ripa裂解液 NP-40 or Triton-100 1% TrisHCl (pH 50mmol/L NaCl 150mmol/L PMSF(苯甲基磺酰氟) L(100μg/ml) Pepstatin(胃蛋白酶抑制剂) 1 μmol/Lμg/ml) Leupeptin(亮抑制肽) ml Aprotinin(抑蛋白酶肽)μmol/L(1μg/ml) (注:PMSF 贮存液:100mmol/L即ml于异丙醇中; Aprotinin 贮存液:10mg/ml溶于LHEPES; Leupeptin 贮存液:10mg/ml溶于水中;

Pepstatin 贮存液 10mg/ml于甲醇液中.均于-20℃保存) 3、细胞裂解液(Tris-HCL) 1.1M Tris 溶液的配置 取Tris242.2g,加ddH2O至1600ml,加热溶解。 2.1M Tris-HCL Ph=溶液的配置 取 1M Tris 溶液160ml用分析纯盐酸调至Ph=(需浓盐酸约),加ddH2O定容至200ml,高压灭菌备用。 3. 0.5M EDTA溶液的配置 称EDTA-Na2 37.2g 先用140ml ddH2O溶解,加入14ml NaOH(10M)使EDTA-Na2溶解,再用NaOH(10M)溶液调至Ph=,加ddH2O定容至 200ml,高压灭菌备用。 4. 细胞裂解液的配制 称15gCTAB(Hexadecyltrimethylammonium bromide)(先用约600ml ddH2O 加热溶解)放入烧杯中,加入75ml 1M Tris-HCL(Ph=),58.5g NaCL(先用少量ddH2O溶解),30ml 0.5M EDTA,定容至1000ml,混合均匀备用。 4、组织裂解液配方:` 7M Urea(60. 06) 4.2042 g 2M thiourea g 100mM DTT? g 4% CHAPS g 0.5mM EDTA? 0.00146 g 40Mm Tris? g 2%(v/v) NP-40 ml

流式常用试剂配制

一、流式细胞术常用试剂 1、10%NaN3:将10gNaN3溶解于100ml蒸馏水中,室温保存;活体实验或在辣根过氧化酶反应中可不使用NaN3。 2、3%BSA/PBS:100ml PBS中加入3g BSA,使之溶解,再加入0.2ml 10%的NaN3。 3、500mmol/L EDTA:将186g EDTA?Na2?2H2O溶解于400ml蒸馏水中,用NaOH将PH调至8.0,补充蒸馏水至500ml,分装,高压灭菌,室温保存。 4、4%多聚甲醛:在磁力搅拌下,将4g多聚甲醛溶于100ml PBS,加入数滴NaOH,在通风柜中于60度加热,使其溶解,调整PH至7.4,使用前新鲜配制。 5、消化液:0.25%胰蛋白酶(用培养液或PBS配制)或0.25%胰蛋白酶与0.02%EDTA的混合液。 6、红细胞裂解液:NH4Cl 4.16g,KHCO3 0.5g,EDTA?2Na 0.02g,溶于100ml水中,调PH 至7.2,补充蒸馏水至500ml,4度储存,使用时需恢复至室温。 7、流式细胞抗体稀释剂:0.1mmol/L PBS液(PH 7.4)+1%BSA+0.1%Na2N3。 8、常用细胞破膜剂:PBS液(PH 7.4)+1%FBS(或BSA)+0.1%NaN3+0.1%saponin(Sigma 的效果不错)。 9、流式细胞染色洗涤液:含2%的BSA、0.1%NaN3的PBS(PH 7.4)。 10、PI染液(保存液,10×,用于细胞周期和凋亡检测):10mg PI溶于10ml PBS,加入2mg 无DNA酶的RNA酶,4度保存备用。应用时,10倍稀释,每管加0.3ml~0.5ml PI染液。 11、Hanks液的配制(BSS,主要用于培养液、稀释剂和细胞清洗液,不能单独作为细胞、组织培养液) 原液A NaCl 160g MgSO4?7H2O 2g KCl 8g MgCl?6H2O 2g CaCl2 2.8g 溶于1000ml双蒸水 原液B 1)Na2HPO4?12H2O 3.04g KH2PO4 1.2g 葡萄糖20.0g 溶于800ml双蒸水 2)0.4%酚红溶液:取酚红0.4g置玻璃研钵中,逐滴加入0.1N NaOH并研磨,直至完全溶

相关文档
最新文档