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油脂过氧化值的测定实验报告

油脂过氧化值的测定实验报告

实验报告:
一、实验目的:
了解油脂过氧化值的测定方法,并掌握测定技能。

二、实验原理:
油脂在贮存和加工过程中,会因氧化反应而产生不稳定的过氧化物。

过氧化值是衡量油脂中过氧化物的含量的指标。

本实验采用Iodometric法来测定油脂中的过氧化值。

三、实验步骤:
1. 取1克样品,加入草酸乙酯(20mL)和紫外线吸收剂(2mL),振摇均匀。

2. 加入碘化钾溶液(10mL),并加入1mol/L硫酸溶液(10mL)进行滴定,直至出现紫色溶液变为黄色后停止滴定。

记录所耗的硫酸溶液的体积,记为V1。

3. 验证滴定终点:将草酸乙酯加入碘化钾溶液,出现的淡黄色溶液,在滴加硫酸溶液过程中,溶液的颜色逐渐加深,直到呈现深棕色,即可确认滴定终点正确。

4. 进行白试验:取同样的草酸乙酯和紫外线吸收剂,按照滴定步骤进行配制,确保所耗的硫酸溶液的体积为零。

5. 计算油脂样品的过氧化值:过氧化值=(V1-V0)×0.0056
(mg/kg),其中V1为样品滴定所用的硫酸溶液体积,V0为白试验所用的硫酸溶液体积,0.0056为硫酸亚铁溶液中1mL对应的过氧化值。

四、实验结果:
本次测定的油脂样品滴定所用的硫酸溶液体积为25.0mL,白试验所用的硫酸溶液体积为0mL。

则样品的过氧化值为(25.0-0)×0.0056=0.14mg/kg。

五、结论:
本次实验采用Iodometric法测定了油脂样品的过氧化值为0.14mg/kg。

此值低于过氧化值的卫生标准值,说明样品质量良好。

“铁死亡”研究要测哪些指标?看这篇就够了!

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什么是铁死亡?
铁死亡(ferroptosis)是2012年首次提出的一种铁依赖性脂质过氧化和活性氧(ROS)诱导的调节 性细胞死亡,其细胞形态特征和生化指标等方面与细胞凋亡、自噬和程序性坏死等死亡方式存 在较大差异[表1]。
类型 铁死亡
凋亡 坏死 自噬
形态特征
标信息。
相关代谢 过程
检测指标
检测试剂
细胞活性 细胞毒性
增强型细胞活力检测试剂盒(CCK-8)
铁代谢
铁离子 亚铁离子
铁比色法测试盒 亚铁离子比色法测试盒
MDA 脂质过氧化
丙二醛(MDA)比色法测试盒(TBA法) 丙二醛(MDA)比色法测试盒(细胞)
LPO
脂质过氧化物(LPO)比色法测试盒
ROS
活性氧(ROS)荧光法测试盒
活性氧
超氧阴离子自 抑制与产生超氧阴离子自由基比色法测试盒
由基
(WST-1法)
过氧化氢
过氧化氢(H2O2)荧光法测试盒
SOD
总超氧化物歧化酶(T-SOD)比色法测试盒 (WST-1法)
GSH
还原型谷胱甘肽(GSH)比色法测试盒
T-GSH
总谷胱甘肽(T-GSH)/氧化型谷胱甘肽(GSSG) 比色法测试盒
2、 判 断 铁 死 亡 -ROS
ROS是一种高活性氧化自由基,包括超氧阴离子(O2-)、过氧化氢(H2O2)和羟自由基 (OH-)等,铁可以通过 Fenton(芬顿反应)产生脂质ROS,引起脂质过氧化,促进细胞死 亡,因此,测定脂质过氧化产物(MDA,LPO,TBARS)有利于判断铁死亡。
3、 抑 制 铁 死 亡 -GSH
线粒体膜电位 降低

过氧化物酶含量的测定(比色法)

过氧化物酶含量的测定(比色法)

过氧化物酶含量的测定(比色法)过氧化物酶含量测定是一种常用的生物学和化学学科中的实验方法。

该方法被广泛应用于生物体内氧化应激、氧化物解毒和氧化物代谢等方面的研究。

该方法利用底物的氧化还原反应,通过检测产生的表观色素的变化来测定过氧化物酶的酶活性。

实验原理:过氧化物酶是一种催化酯类和醇类底物的氧化还原反应酶,其底物是一种含有双键的多不饱和酯类及多酚类物质。

这些底物的氧化作用需要过氧化物酶及辅助成分,通过产生艳蓝色淀粉和牛肉素的氧化还原反应来表现出来。

常见的底物是喹啉及其衍生物类化合物。

这些化合物在钠盐和钾盐的存在下,可以和以均等量的0.02%-0.05%的过氧化氢溶液配合使用,产生表观色素(θ=100nm),其中颜色的强度与底物氧化的程度成正比。

过氧化物酶的酶活性是测定过程中的关键要素,一定的酶浓度可以帮助底物迅速氧化。

实验步骤:1.提取组织过氧化物酶,制备1%避光标准物质。

2.在底部添加适量的底物,并加入0.02%-0.05%的过氧化氢溶液(90min内完成剩余测定)。

第一个反应必须使反应均匀发生,并加入适量的怡宝那和氢氧化钾调节酸度和盐度,然后按照程序进行反应。

最大吸收波长:613nm;试管增量:每5秒;试管量:1ml。

3.利用磁性制动器将试管定在这个位置并将它们降到盘子中心,当酶浓度很低时可以通过上下弯曲试管使溶液更加均匀。

4.测量反应后溶液的吸光度,并确定吸收峰的位置。

根据标准曲线计算出样品中过氧化物酶的浓度,如图所示。

实验注意事项:1.所有的耗材都必须干燥,并且必须在实验过程中保持干燥状态。

2.测定前,必须使用透明质酸纯化介质和亚硫酸钠而不是硫酸钠进行预防性清洁。

3.在进行试管反应时,必须将试管置于盘子的中心位置。

如果实验中涉及液体转移,请务必谨慎操作。

4.严格按照各步骤操作,以保证实验结果的准确性。

总结:通过比色法测定过氧化物酶的酶活性是一种可靠、快速、简便的方法。

该方法的步骤简单,有助于对生物体内的氧化应激、氧化物解毒和氧化物代谢等方面的研究。

过氧化脂质测定

过氧化脂质测定

过氧化脂质测定过氧化脂质测定发布时间:2008-12-5 查看151次过氧化脂质(lipoperoxides,LPO)是自由基使脂质发生过氧化作用而形成的。

它使生物体内细胞膜发生过氧化作用而受到损伤,使体内重要脏器及血管都受害导致疾病和老化。

脂质过氧化反应可形成丙二醛、乙烷、共轭二烯、荧光产物和一些能发光的产物,测定这些产物的变化,就能表明过氧化反应的变化。

因此,该类方法,对开发有效的抑制体内自由基的药物十分重要。

1、血清中过氧化脂质测定(1)TBA荧光测定法 LPO随蛋白沉淀后,沉淀物在酸性环境下膜脂质过氧化而产生丙二醛(malondialdehyde,MDA)与TBA缩合后形成复合物,这种复合物具有高灵敏荧光特性。

从而可用荧光分光光度计来进行测定。

材料与试剂:①TEP标准溶液。

准确吸取四乙氧基丙烷100ml,加甲醇至50ml,含量为8mmol/L,4℃保存期为一个月。

用时以双蒸水稀释成8μmol/L TEP标准应用液。

②20mmol/L TBA溶液。

称取576.6mg TBA溶于80ml水中,60℃以下加热助溶,稀释至100ml,再与冰醋酸等量混合。

③甲醇。

④荧光分光光度计及记录仪。

方法:①取3支10ml带塞玻璃试管,分别为测定管、标准管和空白管,测定管加血清20μl,标准管加TEP标准应用液20μl,空白管加水20μl。

②各管依次加水2ml,TBA溶液1ml混匀,100℃加热60min。

③用流动水冷却,各加甲醇1ml,充分混匀后,用3000r/min,离心10min。

④上清以Ex515mn,Em550nm测定各管荧光强度(F),按下式计算出LPO含量。

血清LOP含量(μmol/L)=(F测定-F空白)/(F标准-F空白)×8本法具有灵敏度高,特异性好、方法快速等优点;对实验用水的纯度和玻璃仪器的清洁度要求较高,实验用水需为双蒸水,玻璃仪器需经50%的硝酸除荧光,否则,空白值较高,干扰测定。

人过氧化脂质(LPO)说明书

人过氧化脂质(LPO)说明书

人过氧化脂质(LPO)酶联免疫分析试剂盒使用说明书本试剂仅供研究使用目的:本试剂盒用于测定人血清,血浆及相关液体样本中过氧化脂质(LPO)的含量。

实验原理:本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中人过氧化脂质(LPO)水平。

用纯化的人过氧化脂质(LPO)抗体包被微孔板,制成固相抗体,往包被单抗的微孔中依次加入过氧化脂质(LPO),再与HRP标记的过氧化脂质(LPO)抗体结合,形成抗体-抗原-酶标抗体复合物,经过彻底洗涤后加底物TMB显色。

TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最终的黄色。

颜色的深浅和样品中的过氧化脂质(LPO)呈正相关。

用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),通过标准曲线计算样品中人过氧化脂质(LPO)浓度。

试剂盒组成:试剂盒组成48孔配置96孔配置保存说明书1份1份封板膜2片(48)2片(96)密封袋1个1个酶标包被板1×481×962-8℃保存标准品:900nmol/L0.5ml×1瓶0.5ml×1瓶2-8℃保存标准品稀释液 1.5ml×1瓶 1.5ml×1瓶2-8℃保存酶标试剂3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存样品稀释液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存显色剂A液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存显色剂B液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存终止液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存浓缩洗涤液(20ml×20倍)×1瓶(20ml×30倍)×1瓶2-8℃保存样本处理及要求:1.血清:室温血液自然凝固10-20分钟,离心20分钟左右(2000-3000转/分)。

仔细收集上清,保存过程中如出现沉淀,应再次离心。

2.血浆:应根据标本的要求选择EDTA或柠檬酸钠作为抗凝剂,混合10-20分钟后,离心20分钟左右(2000-3000转/分)。

索莱宝脂质过氧化物(LPO)含量检测试剂盒说明书

索莱宝脂质过氧化物(LPO)含量检测试剂盒说明书

脂质过氧化物(LPO )含量检测试剂盒说明书微量法注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。

货号:BC5245规格:100T/96S产品内容:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

试剂名称规格保存条件提取液液体110mL×1瓶2-8℃保存试剂一液体11mL×1瓶2-8℃保存试剂二粉剂×2瓶2-8℃保存试剂三液体4mL×1瓶2-8℃保存标准品液体1mL×1支2-8℃保存稀释液液体20mL×1瓶2-8℃保存溶液的配制:1.试剂二:临用前取1瓶试剂二加入7mL 蒸馏水,此试剂较难溶,可以在70℃加热并剧烈振荡以促进溶解,或者通过超声处理以促进溶解。

每次用前需检查是否有粉剂析出。

用不完的试剂可在2-8℃中保存一个月。

2.标准品:为1000nmol/mL 的标准溶液产品说明:脂质过氧化物(lipid hydroperoxide LPO )是不饱和脂肪酸链经自由基或活性氧作用后产生的过氧化物。

病理情况下,脂质过氧化反应增强可导致原本低含量的LPO 升高。

LPO 含量升高会对细胞的结构和功能造成损伤,LPO 含量与机体免疫系统和衰老密切相关。

LPO在酸性条件下加热产生丙二醛(MDA),MDA 与硫代巴比妥酸(Thiobarbituric acid ,TBA)缩合,生成棕红色物质三甲川(3,5,5-三甲基恶唑-2,4-二酮),其最大吸收波长在 532nm ,进行比色后可估测样本中LPO 的含量。

注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。

如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、研钵/匀浆器/细胞超声波破碎仪、微量玻璃比色皿/96孔板、冰和蒸馏水。

操作步骤:一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)1、组织:按照样本质量(g ):提取液体积(mL )为1:5~10 的比例(建议称取约0.1g 组织,加入1mL 提取MDA+ TBA3,5,5-Trimethyloxazolidine-2,4-dione (532 nm)LPO+液)加入提取液,冰浴匀浆;8000g 4℃离心10min,取上清置冰上待测。

油脂过氧化值的测定实验报告

油脂过氧化值的测定实验报告

油脂过氧化值的测定实验报告一、实验目的。

本实验旨在通过测定油脂过氧化值的方法,掌握油脂的氧化稳定性测定技术,了解油脂的氧化过程及影响因素,为食品加工及质量控制提供参考。

二、实验仪器与试剂。

1. 仪器,恒温水浴器、分光光度计。

2. 试剂,过氧化值试剂盒、乙醇、乙酸、氯仿、硝酸银、硫酸钾、硫酸、硫代硫酸钠、淀粉指示剂。

三、实验原理。

油脂氧化是指油脂中的不饱和脂肪酸受到氧气的作用而发生的化学反应。

过氧化值是油脂氧化程度的指标,是以油脂中的不饱和脂肪酸为基质,在氧气的作用下发生过氧化反应所需的过氧化氢的量。

实验中,通过将样品中的过氧化物与硫代硫酸钠反应,生成硫酸钠,再用硝酸银滴定,根据反应消耗的硝酸银的体积来计算油脂的过氧化值。

四、实验步骤。

1. 取适量的样品,称量至精确质量。

2. 将样品溶解于氯仿-乙醇混合溶液中,加入硫酸钾催化,放置于恒温水浴器中反应。

3. 反应结束后,加入硫代硫酸钠停止反应,用淀粉指示剂进行终点检测。

4. 用硝酸银标准溶液滴定至蓝色终点,记录滴定消耗的硝酸银体积。

5. 重复实验,取平均值计算过氧化值。

五、实验数据记录与处理。

样品质量,0.5g。

滴定消耗硝酸银体积,11.5ml、11.3ml、11.4ml。

平均滴定消耗硝酸银体积,11.4ml。

过氧化值=(11.4ml-空白对照消耗硝酸银体积)×(硝酸银标准溶液浓度)×(样品溶液体积)/(样品质量)。

六、实验结果与分析。

经过计算得出样品的过氧化值为3.42meq/kg。

过氧化值越高,说明油脂中的不饱和脂肪酸含量越高,油脂的氧化程度也越高。

过氧化值的测定结果可以为油脂的储存、使用以及加工过程中的控制提供重要参考依据。

七、实验结论。

通过本次实验,我们成功测定了样品的过氧化值,掌握了油脂氧化稳定性的测定技术。

过氧化值的测定结果为3.42meq/kg,为了确保油脂的质量和稳定性,我们需要加强对油脂氧化过程的监测和控制,以保证食品加工的质量和安全。

lpo 脂质过氧化氧化物

lpo 脂质过氧化氧化物

lpo 脂质过氧化氧化物
脂质过氧化(LPO)是指脂质分子中发生的一种氧化反应,通常由自由基引发。

脂质过氧化物(LPO)则是指在脂质过氧化反应中产生的过氧化物。

这些过氧化物包括脂质过氧化物和脂质过氧化物分解产物,它们可以对细胞膜和细胞器造成损伤,导致细胞功能障碍甚至细胞死亡。

脂质过氧化在生物体内是一个常见的氧化反应,会受到许多因素的影响,例如环境中的氧气浓度、细胞内铁离子水平、抗氧化物质的含量等。

在生理条件下,细胞内通常会存在一定量的抗氧化酶和小分子抗氧化物质来抵御脂质过氧化的损害。

然而,当这些防御系统失效或者受到过多氧化应激的影响时,脂质过氧化就会大量产生,对细胞造成严重损害。

脂质过氧化在许多疾病的发生发展中起着重要作用,例如动脉粥样硬化、癌症、神经退行性疾病等。

因此,研究脂质过氧化的机制以及寻找抑制脂质过氧化的方法具有重要意义。

抗氧化剂的应用就是其中一种方法,可以中和自由基,减少脂质过氧化的产生,从而保护细胞免受氧化损伤。

总的来说,脂质过氧化是一种重要的生物化学反应,对细胞和生物体的健康有着重要的影响,因此对其进行深入研究具有重要意义。

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20 mL×1 瓶
20 mL×1 瓶
2-8℃避光保存 6 个月
试剂三 (Reagent 3)
试剂四 (Reagent 4)
酸溶液 (Acid Reagent)
100 μmol/L 标准品 (100 μmol/L Standard
Solution)
10 mL×1 瓶 6 mL×1 瓶
20 mL×1 瓶 2-8℃保存 6 个月 6 mL×1 瓶 2-8℃保存 6 个月
结果计算
标准品拟合曲线:y = a x + b 血清 ( 浆 ) 中 LPO 浓度计算公式: LPO(μmol/L)= (ΔA586 - b) ÷ a × f 组织中 LPO 浓度计算公式: LPO(μmol/gprot)= (ΔA586 - b) ÷ a × f ÷ Cpr
注: y:标准 OD 值 - 空白 OD 值 x:标准品的浓度 a:标曲的斜率 b:标曲的截距 ΔA586:测定 OD 值 - 空白 OD 值 f:样本加入检测体系前的稀释倍数 Cpr:样本的蛋白浓度(gprot/L)
1
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基本信息 用途
本试剂盒适用于检测血清(浆)、尿液、组织样本中脂质过氧化物的含量。 检测范围及灵敏度
检测范围:0.70-80 μmol/L 灵敏度:0.70 μmol/L
2. Hraper H H, Hadley M. Malondialdehyde Determination as Index of Lipid Peroxidation[J]. Methods in Enzymology, 1990: 421-431.
3. Reed T T. Lipid peroxidation and neurodegenerative disease[J]. Free Radical Biology & Medicine, 2011, 51(7): 1302-1319.
20
700
30
600
40
500
50
200
80
标准品浓度(μmol/L):加入到反应体系之前的标准品浓度。
操作步骤
① 标准管:取 200 μL 8 个不同浓度的标准品,加入到 1.5 mL EP 管中; 测定管:取 200 μL 待测样本,加入到 1.5 mL EP 管中。
② 向步骤①中各管加入 650 μL 显色剂工作液,盖上盖,充分混匀。 ③ 向步骤②中各管加入 150 μL 试剂三。 ④ 盖上盖,充分混匀,45℃水浴 60 min 后流水冷却至室温。 ⑤ 将各管 1100×g,离心 10 min。 ⑥ 取上清 200 μL 于 96 孔板中,酶标仪 586 nm 处,测定各孔 OD 值。 注:试剂加入酶标孔时,应触酶标板底加入;加样要慢,避免产生气 泡。(气泡影响测定结果)
检测原理 在酸性且 45℃条件下,脂质过氧化物与显色剂结合,产生稳定的显色 基团,在 586 nm 处有最大吸收峰,在一定范围内吸光度值与浓度成正比。 本试剂盒检测组织和细胞样本时,需测定总蛋白浓度,推荐使用 BCA 法(货号:E-BC-K318-M)。
1
提供试剂和物品
试剂: 双蒸水、生理盐水(0.9% NaCl)或 PBS(0.01 M,pH 7.4)。 安全提示 配制试剂之前,请穿戴好防护装备。试剂盒中部分试剂含有危险性物 质。禁止食入,吸入,直接接触眼睛、皮肤和衣物。使用完后的试剂 瓶经彻底清洗后再处理。
3
实验准备
实验关键点 ① EP 管的密封性要好,避免泄露。 ② 加入到孔板中的上清液一定要澄清,否则再次离心。 ③ 在通风良好的地方操作。
LPO 浓度(μmol/L) <80
80-800
样本与双蒸水的体积比 不稀释 1:9
稀释倍数 1 10
4
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操作过程
检测环境室内温度 25-30℃,最佳检测波长 586 nm。 微量移液器的注意事项 ① 移液器取试剂前,请用该试剂平衡枪头(缓慢吸液,反复吹打三次)。 ② 不能将枪头外壁上的液体加入到反应体系。
背景介绍 脂质过氧化是指含有许多碳 - 碳双键的脂质被氧化的过程,是细胞和 组织氧化应激的一种指标 [1]。脂质过氧化是自由基与多不饱和脂肪酸 相互作用,产生脂质过氧化物。脂质过氧化物很不稳定,进一步分解 为丙二醛、4- 羟基 -2- 壬烯醛、丙烯醛、异前列腺素 [4,5],其中丙二醛 和 4- 羟基 -2- 壬烯醛为主要脂质过氧化产物 [2,3]。
批内差
用一个试剂盒,检测在检测范围内的高浓度样本、中浓度样本和低浓 度样本,各个浓度的样本重复检测 6 次 (n=6),计算出平均批内差 3.1%
CV=
s x
× 100%
s---Standard deviation
10
Focus on your research Service for life science 灵敏度 在加样量为 200 μL 的条件下,按照试剂盒操作规程测定 20 个空白和标 曲的 OD 值。绘制标准曲线,算出空白 OD 值的标准差。根据 IUPAC 公 认的公式 3 倍的标准差除以标曲斜率计算出灵敏度 0.70 μmol/L 回收率 向样本中添加高、中、低三个浓度的标准品,每个浓度样本重复检测 3 次(n=3),做回收率实验,得出平均回收率 99%
6
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操作表
标准管
不同浓度的标准品(μL)
200
待测样本(μL)
--
显色剂工作液(μL)
650
盖上盖,充分混匀
试剂三(μL)
150
测定管 -200 650
150
盖上盖,充分混匀,45℃水浴 60 min 后流水冷却至室温,1100×g, 离心 10 min。取上清 200 μL 于 96 孔板中,酶标仪 586 nm 处,测定 各孔 OD 值
7
实例分析 例如检测人血清: 取 0.2 mL 人血清,按操作操作,结果如下: 标准曲线:y = 0.0162x -0.0065,空白管平均 OD 值为 0.073,测定管平均 OD 值为 0.219,计算结果为:
LPO(μmol/L)=(0.219 - 0.073 + 0.0065)÷ 0.0162×1 = 9.41(μmol/L)
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参考文献
1. Devasagayam T P, Boloor K K, Ramasarma T. Methods for estimating lipid peroxidation: an analysis of merits and demerits[J]. Indian J Biochem Biophys, 2003, 40(5): 300-308.
4. Wood L G, Gibson P G, Garg M L. Biomarkers of lipid peroxidation, airway inflammation and asthma[J]. European Respiratory Journal, 2003, 21(1): 177-186.
试剂准备 ① 检测前,试剂盒中的试剂平衡至室温。 ② 显色剂工作液:
将试剂一:试剂二按 3:1 的体积比混匀,现用现配。
样本准备
① 样本处理 具体操作请参见附录 2。
② 样本的稀释 在正式检测前,需选择 2-3 例预期差异大的样本稀释成不同浓度 进行预实验,根据预实验的结果,结合本试剂盒的线性范围(0.7080 μmol/L),请参考下表稀释:
标准曲线(数据仅供参考)
11
附录 2 样本制备
样本要求 在测试之前选择 2-3 个预期差异大的样本进行预实验。以下样本处理 方法仅供参考
血清样本 取新鲜血液,在 25℃条件下静置 30 min 使血液凝结。4℃,2000×g 离 心 15 min,取上层淡黄色澄清液体即为血清。血清置于冰上待测,若 不能当天检测,于 -80℃保存,可储存一个月。
96 孔酶标板
1板
96 孔覆膜
2张
样本位置标记表
1张
注:试剂严格按上表中的保存条件保存,不同批次试剂盒中的试剂不能混用。
2
ห้องสมุดไป่ตู้
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所需自备物品 仪器: 酶标仪(580-590 nm)、水浴锅、离心机、涡旋混匀仪、微量移液器(1000 μL,200 μL,100 μL)。 耗材: 枪头(1000 µL,200 µL,100 μL)、EP 管(1.5 mL)。
0.70-80 μmol/L 0.70 μmol/L 99%
平均批间差
3.5%
平均批内差
3.1%
批间差
用三个不同生产批号的试剂盒,检测在检测范围内的高浓度样本、中 浓度样本和低浓度样本,每个批号每个浓度的样本重复检测 3 次(n=3), 分别计算每个批号各浓度样本的均值,并按公式计算出各浓度样本的 相对偏差,最后得出平均批间差 3.5%
编号
试剂一 (Reagent 1)
名称
储备液 (Substrate Stock
Solution)
规格 1
规格 2
(Size 1() 48T) (Size 2)(96T)
保存方式 (Storage)
30 mL×1 瓶
60 mL×1 瓶
2-8℃避光保存 6 个月
试剂二 (Reagent 2)
稀释液 (Diluent)
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