荧光定量实验报告(作业)

荧光定量实验报告(作业)
荧光定量实验报告(作业)

RT-qPCR比较不同样本中miR-21的相对表达差异

一、实验目的

1、掌握实时荧光定量PCR的实验原理。

2、掌握实时荧光定量PCR相对定量的分析方法。

二、实验原理

实时荧光定量PCR (Quantitative Real-time PCR)是一种在DNA扩增反应中,以荧光化学物质测每次聚合酶链式反应(PCR)循环后产物总量的方法。通过内参或者外参法对待测样品中的特定DNA序列进行定量分析的方法。荧光定量PCR 最常用的方法是DNA 结合染料SYBR Green Ⅰ的非特异性方法和Taqman 水解探针的特异性方法。本实验中采用非特异性SYBR Green I 染料法,SYBR Green I 是一种结合于所有ds DNA 双螺旋小沟区域的具有绿色激发波长的染料,在游离状态下会发出微弱的荧光,但一旦与双链DNA 结合后,荧光大大增强。因此,SYBR Green I 的荧光信号强度与双链DNA 的数量相关,可以根据荧光信号检测出PCR 体系存在的双链DNA 数量。

三、实验仪器、材料和试剂

实验仪器:PCR仪、荧光定量PCR仪

实验材料:MCF7细胞

实验试剂:逆转录试剂盒、SYBR GREEN试剂盒

四、实验步骤

4.1 MCF7细胞RNA提取(RNAiso Plus)

1)将生长至80%的MCF细胞消化为单细胞悬液,准备提取RNA;

2)9000g,2min离心,弃掉培养基,加1 ml RNAiso Plus用移液枪反复吹吸直至裂

解液中无明显沉淀,室温(15-30℃)静置5分钟;

3)加入氯仿(RNAiso Plus的1/5体积量),盖紧离心管盖,混合至溶液乳化呈

乳白色,室温静置5min;

4)12,000 g 4℃离心15分钟。从离心机中小心取出离心管,此时匀浆液分为三

层,即:无色的上清液(含RNA)、中间的白色蛋白层(大部分为DNA)及带有颜色的下层有机相。

5)吸取上清液转移至另一新的离心管中(切勿吸出白色中间层)。

6)向上清中加入0.5-1倍RNAiso Plus体积的异丙醇,上下颠倒离心管充分混匀

后,室温下静置10分钟。

7)12,000g 4℃离心10分钟。一般在离心后,试管底部会出现RNA沉淀。

8)弃上清,加入1ml DEPC水配制的75%乙醇,充分洗涤管盖和管壁,并轻弹

管底,让沉淀浮起来,并静置3-5 min;

9)打开离心管盖,室温干燥沉淀几分钟。沉淀干燥后,加入适量(可以根据沉淀

的多少确定)的RNase-free 水溶解沉淀。测浓度,记录A260/280。

4.2 1%琼脂糖凝胶电泳(取少部分进行跑电泳,留足够的量做反转录)

4.3 反转录

试剂体积(10μl)

RNA500 ng

Gene specific primers(2μM)RT primer1μl

5×ReverseTranscriptase M-MLV

2μl

Buffer

dNTP (10mM)0.5μl

Reverse Transcriptase M-MLV0.5μl Inhi bitor (40 U/μl)0.5μl RNase-Free Water Up to 10μl 反应条件:

温度:42℃,45min;70℃,15min.

4.4 qPCR

试剂体积(20μl)2×SYBR Green10μl

FP (10μl)0.5μl

RP(10μl)0.5μl cDNA Template1μl

RNase-free Water8μl

反应程序:

1)stage 1:预变性,95℃,3min;

2)Stage 2:循环反应:40个循环

95℃,10s;

60℃,30s

3)溶解曲线:95 ℃,15 s;60℃,1 min;95 ℃,15 s.

五.实验结果及分析

5.1 RNA的质量检测结果

5.2 扩增曲线:

5.3 溶解曲线:

如图,为单一的峰,说明无非特异性产物,定量准确。

5.4 实验结果及数据处理

PCR 反应结束后,得到如下数据:

Sample Name Target Name Reporter Cт Cт Mean MCF7miR21SYBR16.97953606

MCF7miR21SYBR16.97027779

16.97576142 MCF7miR21SYBR16.9774704

MCF7miR-130b SYBR22.80200005

MCF7miR-130b SYBR22.7244873

22.75579071 MCF7miR-130b SYBR22.74088478

MCF7GAPDH SYBR13.8417778

MCF7GAPDH SYBR13.54553699

13.65600618 MCF7GAPDH SYBR13.58070374

注:平行样的Ct 值之间的差<0.5 时表示重复性较好

计算如下:

ΔCT(miR21)= 3.319755236

ΔCT(miR130b)= 9.099784533

ΔΔCT= ΔCT(miR21)- ΔCT(miR130b)

=-3.319755236-9.099784533

=-5.780029297

2–ΔΔCT=2-(-5.780029297)= 0.0181985927

miR21的表达量是miR130b的0.0181985927倍

六.问题与思考

1.设计本次实验miR-21和miR-130b的RT-qPCR引物?

miR21: TAGCTTATCAGACTGATGTTGA

茎环引物:GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACTCAACA F Primer: AGCGTAGCTTATCAGACTGATGTTG

R Primer: CGCAGGGTCCGAGGTATTC(通用引物)

引物Blast 结果:

miR130b:CAGTGCAATGATGAAAGGGCAT

茎环引物:GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACATGCCC F Primer: CAGTGCAATGATGAAAGGGCA

R Primer: CGCAGGGTCCGAGGTATTC(通用引物)

引物Blast 结果:

2.荧光定量PCR与普通PCR有什么异同点?

原理不同:荧光定量PCR实时监测与DNA结合的荧光染料激发的荧光;普通PCR通过检测插入DNA中核酸染料的量来测定PCR最终产物量,一般是紫外光。

反应要求不同:荧光定量对扩增片段有较高的要求,一般为100-300bp;普通定量可以扩增长点的片段。如果不需要检测产物分子量大小,荧光定量可以不进行电泳就对产物进行定量分析,普通PCR必须电泳。

结果不同:荧光定量可以实现精确定量,普通PCR则不行。荧光定量体现可以看到整个扩增过程,可以看到扩增效率,溶解温度,直接得到的标准曲线等,这些是普通PCR无法实现的。

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