USP36 1117 优良微生物检测规范中英文版

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USP36 1117 优良微生物检测规范(中英文1/ 2)

2013-08-09 15:30:46| 分类:USP|举报|字号订阅

1117 MICROBIOLOGICAL BEST LABORATORY PRACTICES 优良微生物检测规范INTRODUCTION 介绍

Good laboratory practices in a microbiology laboratory consist of activities that depend on several principles: aseptic technique, control of media, control of test strains, operation and control of equipment, diligent recording and evaluation of data, and training of the laboratory staff. Because of the inherent risk of variability in microbiology data, reliability and reproducibility are dependent on the use of accepted methods and adherence to good laboratory practices.

优良微生物检测规范由一些活动组成,这些活动依赖于几个基本要素:无菌技术、培养基控制、检测用菌株控制、设备操作和控制、完善的记录和数据评估、化验室员工的培训。由于微生物数据具有天生的不确定性,数据的可靠性和重复性取决于是否使用被接受的方法,以及是否严格遵守化验室规范。

MEDIA PREPARATION AND QUALITY CONTROL 培养基制备和质量控制

Media Preparation 培养基制备

Culture media are the basis for most microbiological tests. Safeguarding the quality of the media is therefore critical to the success of the microbiology laboratory. Media preparation, proper storage, and quality control testing can ensure a consistent supply of high-quality media.

培养基是大多数微生物测试的基础。保证培养基的质量因而成为微生物实验室成功的关键。培养基的制备、合适的存贮和质量控制检测可以保证持续高质量培养基供应。

It is important to choose the correct media or components in making media based on the use of accepted sources or references for formulas. The manufacturer's formula and instructions for preparation routinely accompany dehydrated media and

ready-made media. Because different media types may have different preparation requirements (e.g., heating, additives, and pH adjustment), it is important to follow these instructions to ensure preparation of acceptable media quality. A certificate of analysis describing expiration dating and recommended storage conditions accompanies ready-made media, as well as the quality control organisms used in growth-promotion and selectivity testing of that media.

在制备培养基过程中使用已接受的来源或配方标准,选择正确的培养基或成份是非常重要的。一般生产商在供应培养基干粉和配制好的培养基时,其配方和配制指示都会随货发送。由于不同的培养基类型可能有不同的配制要求(例如,加热、添加剂,和pH值调节),重要的一点是需要遵守其提供的配制指示以保证配制出的培养基质量。如果是已制备好的培养基碟/瓶,随货会收到指明有效期和推荐的存贮条件的分析报告,以及促生产试验用微生物种类,和该培养基的选择性试验用微生物种类。

Water is the universal diluent for microbiological media. Purified Water is most often used for media preparation, but in certain cases the use of deionized or distilled water may be appropriate. Water of lesser quality should not be used for microbiological media preparation. The volume of the water used should be recorded.

水是通用的微生物培养基稀释剂。纯化水常用于培养基制备,但在某些情况下,也可以使用去离子水或蒸馏水。更低品质的水不应用于微生物培养基制备。水的用量应记录。Consistent preparation of media requires accurate weighing of dehydrated media or media constituents. A calibrated balance with the appropriate weight range for the ingredients should be used (See Weighing on an Analytical Balance1251). Clean weighing containers and tools (such as spatulas) should be used to prevent foreign substances from entering the formulation. The weight of the components should be recorded.

要保持培养基配制的一致性,需要对培养基干粉或培养基组份进行准确称量。应使用在所需称量范围内经过校正的天平(见1251分析天平称量)。应对称重容器和工具(例如料勺)进行清洁以保证无异物进入所配物料。各成份的重量应进行记录。Dehydrated media should be thoroughly dissolved in water before dispensing and sterilization. If heating is necessary to help dissolve the media, care should be taken not to overheat media, because all culture media, to a greater or lesser extent, are

heat-sensitive. Equipment used in the preparation of media should be appropriate to allow for controlled heating, constant agitation, and mixing of the media.

培养基干粉应在水中完全溶解,然后进行配制和灭菌。如果需要加热助溶,要注意不能过热,因为所有的培养基,或多或少,都是对热敏感的。用于培养基配制的设备应适当,以便控制加热、持续搅拌和培养基混合。

Darkening of media (Maillard-type reaction or nonenzymatic browning) is a general indication of overheating. When adding required supplements to media, adequate mixing of the medium after adding the supplement should be performed.

培养基变黑(美拉德类型反应或非酶褐变)一般说明过热。在向培养基中加入所需要的补充成分时,在加入后需要进行充分搅拌混合。

Preparation of media in poorly cleaned glassware can allow inhibitory substances to enter the media.

在清洁不彻底的玻璃器皿中配制培养基会使得抑制性物质带入培养基。

Inhibitory substances can come from detergent residue after cleaning glassware or from prior materials used in the glassware. Be sure that the cleaning process removes debris and foreign matter, and that the detergent is thoroughly rinsed out with Purified Water. See Cleaning Glass Apparatus1051for additional guidance.

抑制性物质可能来自于玻璃器皿中的清洁剂残留,或来自于玻璃器皿中上次所盛装的物料。要保证清洗程序可以去除残渣和外来物质,并且清洁剂可以被纯化水彻底冲洗掉。参见1051玻璃容器的清洁。

Sterilization of media should be performed within the parameters provided by the manufacturer or validated by the user. Commercially prepared media should provide documentation of the sterilization method used.

培养基灭菌应在生产商提供的参数范围,或用户验证的参数范围内实施。商业制备好的培养基应随货有所用的灭菌方法。

Autoclaving by moist heat is the preferred sterilization technique, except in instances when boiling is required in order to avoid deterioration of heat-labile components of the media. Sterilization by filtration may also be appropriate for some formulations.

湿热灭菌是较好的灭菌技术,除非需要煮沸以避免培养基中不耐热成分被破坏。有些配方可能适用过滤灭菌。

The effects of the sterilization method and conditions on the media should be validated by sterility and growth-promotion testing of the media. In addition, if sterilized by moist heat, the autoclave cycle should be validated to ensure proper heat distribution for selected loads and volumes. Typically, manufacturers recommend using an autoclave cycle of 121 for 15 minutes using a validated autoclave. These conditions apply to time at temperature of the media. As container size and the load configuration of the autoclave will influence the rate of heating, longer cycles may be required for larger loads. However, the sterilization time will be dependent on the media volume and autoclave load. Sterilization cycles in which the autoclave is slow to come up to temperature may result in overheating of the media. Therefore, care must be taken to validate a sterilization cycle, balancing the need for sterile media against the tendency of the media to degrade under excessive heating. Storage of the media in the autoclave after the liquid cycle is completed is not recommended after cooling, as it may damage the media. Improper heating or sterilizing conditions—for commercially prepared or internally prepared media—may result in a difference in color change, loss of clarity, altered gel strength, or pH drift from the manufacturer's recommended range, as well as reduced growth-promotion activity and/or selectivity.灭菌方法和条件对培养基的影响应经过无菌验证和培养基促生长试验确认。另外,如果采用湿热灭菌,灭菌周期应进行验主下以保证在所选的负载和体积下的热分布。生产商一般会推荐采用121℃15分钟作为灭菌条件,培养基灭菌即采用此条件。由于容器尺寸和灭菌器的负载参数会影响加热速度,如果负载较大时,应延长灭菌时间。当然,灭菌时间还是取决于培养基体积和灭菌负载。升温较慢的灭菌条件可能会导致培养基过热,因此需要特别注意灭菌周期的验证,在培养期灭菌要求和培养基在过热条件下分解中寻求平衡点。在灭菌结束冷却后,不建议将培养基留在灭菌器中存贮,因为可能会对培养基造成损坏。不适当的加热或灭菌条件---对于商业制备的培养基或公司自制的培养基-----可能会导致颜色变化差异、澄清度差、胶强度改变、或pH值超出生产商指定范围、以及促生产试验表示出活性下降和/或具有选择性。

The pH of each batch of medium should be confirmed after it has cooled to room temperature (20 –25 ) by aseptically withdrawing a sample for testing. Refrigerated purchased media should be allowed to warm up to ambient room temperature if it is to

be checked for pH confirmation. A flat pH probe is recommended for agar surfaces, and an immersion probe is recommended for liquids. See pH791for guidance with pH measurement and instrument calibration. The pH of media should be in a range of ±0.2 of the value indicated by the manufacturer, unless a wider range is acceptable by the validated method.

每个批次培养基在冷却到室温后(20-25℃),应采用无菌方式取样检测pH值;冷冻的采购来的培养基应在升温至室温后检测pH值。建议对培养基平面采用扁平的pH探头,液体培养基则采用浸入式探头。pH值测量和仪器校正指南见pH791.除非有验证过的方法可以接受一个更宽的范围,否则培养基的pH值应在生产商指示的pH值±0.2之内。

Prepared media should be checked by appropriate inspection of plates and tubes for the following:

培养基制备好后,应对碟或管进行以下检查

—Cracked containers or lids

—容器或盖裂开

—Unequal filling of containers

—容器填充不匀

—Dehydration resulting in cracks or dimpled surfaces on solid medium

—脱水导致固体培养基裂开或凸陷

—Hemolysis

—溶血

—Excessive darkening or color change

—太黑或颜色变化

—Crystal formation from possible freezing

—可能因为冷冻引起的结晶

—Excessive number of bubbles

—过量气泡

—Microbial contamination

—微生物污染

—Status of redox indicators (if appropriate)

—氧化还原指示剂状态(适用时)

—Lot number and expiration date checked and recorded

—检查批号和有效期并记录

—Sterility of the media

—培养基灭菌

—Cleanliness of plates (lid should not stick to dish)

—培养基用碟清洁(盖不应该粘在碟上)

Media Storage 培养基存贮

It is prudent to consider how the manufacturer or supplier transports and stores media before distribution to the end user. Manufacturers of media should use transport and storage conditions that minimize the loss of moisture, control the temperature, prevent microbial contamination, and provide mechanical protection to the prepared media.

培养基的生产商或供应商在培养基销售给最终用户前的运输和存贮方式是需要慎重考虑的。培养基生产商所采用的运输和贮存条件应最大程度降低水份损失、保证温度的控制、防止微生物污染,提供对已制备培养基的物理保护。

Media should be labeled properly with batch or lot numbers, preparation and expiration dates, and media identification. Media should be stored according to the manufacturer's instructions. Media prepared in house should be stored under validated conditions. Do not store agar at or below 0℃, as freezing could damage the gel structure. Protect stored media from exposure to light and excessive temperature. Before prolonged storage, agar plates should be placed into a sealed package or container to retard moisture loss.

培养基应标识批号,制备时间和有效期,以及培养基识别信息。培养基应根据生产商指示进行存贮。公司自己制备的培养基应在经过验证条件下存贮,不要将培养基存贮等于或低于0℃条件下,因为结冻可能会对胶质结构造成损伤。存贮期间培养基应避光,避免超温。如果要延长存贮时间,培养基碟应放在密封的包装或容器中以减少水分损失。Remelting of an original container of solid media should be performed only once to avoid media whose quality is compromised by overheating or potential contamination. It is recommended that remelting be performed in a heated water bath or by using free-flowing steam. The use of microwave ovens and heating plates is common, but care should be taken to avoid damaging media by overheating and to avoid the potential injury to laboratory personnel from glass breakage and burns. The molten agar medium should be held in a monitored water bath at a temperature of 45 to 50 for not more than 8 hours.

固体培养基只能解冻一次,以避免培养基由于过热或潜在污染造成质量问题。建议在热水浴中或使用自由流动蒸汽中解冻培养基。通常会使用微波炉和加热盘,但需要注意避免因为过热造成培养基损伤,避免因玻璃仪器破裂和燃烧引起化验室人员受伤。熔融的培养基应在40-45℃水浴中不超过8小时。

Caution should be taken when pouring the media from a container immersed in a water bath to prevent water from the bath commingling with the poured sterile media. Wiping the exterior of the container dry before pouring may be advisable.

将培养基从浸在水浴中的容器中倒出时要特别注意,避免水浴用水混入倒出的无菌培养基中。最好在将容器从水浴中取出后、倾倒前,将容器外表面擦干。

Disposal of used cultured media (as well as expired media) should follow local biological hazard safety procedures.

使用过的培养基处理(和过期的培养基)需要按照微生物危险控制程序处理。

Quality Control Testing 质量控制检测

Although growth media can be prepared in a laboratory from individual components, many laboratories, for ease of use, use dehydrated media or purchase commercially prepared media in plastic plates or glass containers. Manufacturers of media attempt to standardize raw materials from biological sources, but must constantly deal with unavoidable differences in raw materials obtained from natural sources, and therefore,

lot-to-lot variability of media must be considered. In addition, the performance of media prepared in a laboratory or by a manufacturer is highly dependent on preparation and storage conditions.

虽然生产用培养基可以采用各组份配制而成,但许多化验室为了方便,采用培养基干粉或采购商业制备的装在塑料培养皿或玻璃容器中的培养基。培养基生产商会尽量采用同一生物来源的原料,但这些原料不可避免会有差异,因此需要考虑到培养基批次之间的差异。另外化验室制备的或者生产商制备的培养基的性能很大程度度上取决于培养条件和存贮条件。

Improper media preparation can cause unsatisfactory conditions for microbial growth or recovery and unreliable results.

培养基制备不当会导致微生物生长或回收条件不理想,从而导致不可靠的结果。

Therefore, quality control tests should be performed on all prepared media, including media associated with swabs or media in strips and other nontraditional formats. Tests routinely performed on in-house prepared media should include pH, growth promotion, inhibition, and indicative properties (as appropriate), and periodic stability checks to confirm the expiration dating.

因此,需要对制备的所有培养基进行质量控制检测,包括擦拭结合培养基、条状培养基和其它非传统方式。一般公司自制培养基检测应包括pH值、促生长试验、抑制试验和指示性试验(如需要),并进行定期稳定性检查以确认有效期。

When in-house prepared microbiological media are properly prepared and sterilized using a validated method, the growth-promotion testing may be limited to each incoming lot of dehydrated media, unless otherwise instructed by the relevant compendial method. If the media preparation procedure was not validated, then every batch of media should be subjected to growth-promotion testing. Test organisms may be selected from the appropriate compendial test chapter. In addition, microorganisms used in growth-promotion testing may be based on the manufacturer's recommendation for a particular medium, or may include representative environmental isolates (but these latter are not to be construed as compendial requirements).

如果公司采用经过验证的方法进行培养基制备和灭菌,则促生产试验可以是只针对购入的每个培养基干粉批次,除非相关药典方法另有要求。如果培养基制备程序未经验证,则所制备的每个批次培养基均需要进行促生长试验。检验用菌种可以从相应的药典检测章节中选择。另外,对于特殊的培养基,用于促生长试验的菌株可以采用生产商推荐的品种,或包括有代表性的环境隔离物(但后者不构成药典要求的内容)。

Expiration dates on media should have supporting growth-promotion testing to indicate that the performance of the media still meets acceptance criteria up to and including the expiration date. The length of shelf life of a batch of media will depend on the stability of the ingredients and formulation under specified conditions, as well as the type of container and closure.

培养基的有效期应能支持促生长试验,在培养基有效期内及到到有效期时,该培养基应仍符合可接受标准。一个批次培养基货架期长度取决于配料成份的稳定性、在特定条件下的配方,以及容器和密封的形式。

When a batch of media does not meet the requirements of growth-promotion testing, an investigation should be initiated to identify the cause. This investigation should include a corrective action plan to prevent the recurrence of the problem. Any batch of media that fails growth-promotion testing is unsuitable for use.

如果培养基的促生长试验失败,则应启动调查程序寻找原因。该调查应包括纠正措施以防止相同问题重复发生。所有促生产试验失败的培养基不得用于检测。[NOTE—Failed growth-promotion test results may not be used to negate positive test results. ]

注:促生产试验失败可能会导致阳性检测为阴性。

Some reagents are used for diagnostic purposes to help support identification of microbial organisms, e.g., Gram stain and oxidase test reagents. These may have attributes that can be quality control tested similar to microbiological media. Select the correct quality control standard microorganisms, following the manufacturer's instructions, and perform the testing before unknown sample diagnostic testing. All relevant diagnostic reagents should be subjected to incoming quality confirmation before use.

有些诊断试剂用于帮助鉴别微生物种类,例如革兰氏染色和氧化酶检测试剂。这些试剂具有与微生物培养基类似的进行质量控制测试的特性。选择正确的质量控制标准微生物,按照生产商指示,在未知样品诊断检测前进行测试。所有相关的诊断试剂均应进行进厂质量确认才可使用。

Special care should be taken with media that is used in sterility tests (see Sterility Tests71for requirements) and in environmental monitoring studies. Media used for environmental monitoring of critical areas should preferably be double-wrapped and terminally sterilized. If terminal sterilization is not performed, media should be subjected to 100% pre-incubation and inspection before use within a critical area. [NOTE—Growth-promotion testing for this media must be performed after the preincubation stage. ] This will prevent extraneous contamination from being carried into controlled environments and will prevent false-positive results. A raised agar level for surface contact plates should be verified.

用于无菌检测(见71无菌检测)和环境监控研究的培养基需要特别注意。用于关键区域环境监控的培养基最好用双层包装,并采用最终灭菌方式。如果无法进行最终灭菌,则在使用前应进行100%预培养并检查【注:该培养基的促生长试验必须在预培养阶段后进行】。这样能防止由于携入受控制环境中所产生的额外污染,防止假阳性结果。接触碟培养基厚度应进行确认。

MAINTENANCE OF MICROBIOLOGICAL CULTURES 微生物培养维护

Biological specimens can be the most delicate standards to handle because their viability and characteristics are dependent on adequate handling and storage. Standardizing the handling and storage of cultures by the user laboratory should be done in a way that will minimize the opportunity for contamination or alteration of growth characteristics. The careful and consistent treatment of stock cultures is critically important to the consistency of microbiological test results. Cultures for use in compendial tests should be acquired from a national culture collection or a qualified secondary supplier.

生物种属可能是最精致的分类标准,因为其活性和属性取决于充分的处理和存贮。在使用菌种的化验室,其菌种处理和存贮应采用标准化程序以最大程度降低污染或生长特性变异。对库存菌种进行小心的处理对于保证微生物检验结果的一致性是至关重要的。在药典检测中使用的菌种应从国家菌种保藏中心或有资质的二级供应商处获取。

They can be acquired frozen, freeze-dried, on slants, or in ready-to-use forms. Confirmation of the purity of the culture and the identity of the culture should be performed before its use in quality control testing.

菌种可以是冰冻、冻干、斜面或即用即配形式。在将其用于质量控制检测前应对培养物的纯度进行确认和鉴别。

Ready-to-use cultures should be subjected to incoming testing for purity and identity before use. The confirmation of identity for commonly used laboratory strains should ideally be done at the level of genus and species.

临用现配菌种应在进厂时检测其纯度和鉴别方可使用。化验室常用菌株的鉴别最好在其属和种的层次进行。

Preparation and resuscitation of cultures should follow the instructions of the supplier or a validated, established method. The ―Seed-Lot‖ technique is recommended for storage of stock cultures.

菌种的制备和接种应遵守供应商的指示,或遵守经过验证的已有的方法。建议对菌种保藏采用“种子批”技术。

The original sample from the national culture collection or a qualified secondary supplier is resuscitated and grown in an appropriate medium. Aliquots of this stock culture (the first transfer or passage) are suspended in a cryoprotective medium, transferred to vials, and frozen at –30℃ or below, until use. If stored at –70 ℃, or in lyophilized form, strains may be kept indefinitely. These frozen stocks can then be used to inoculate monthly or weekly working cultures. Once opened, do not refreeze unused cell suspensions after culturing a working suspension. The unused portion should be discarded to minimize the risk of loss of viability and contamination of the stock.

从国家菌种保藏中心或有资质的二级供应商获得的原始样品在适当的培养基中进行复苏和生产。库存菌种(第一次传递或通道)的分装为低温防护培养基形成混悬液,转移至小瓶,在-30℃下冷冻直至使用。如果在-70℃下存贮,或以冻干形式存贮,菌种可以无限期地存贮。这些冷冻存贮的菌种可以用作每周或每月的工作菌种。未使用的部分应该弃去以最大程度降低活性损失的风险和存贮污染的风险。

The number of transfers of working control cultures should be tracked to prevent excessive subculturing that increases the risk of phenotypic alteration or mutation. The number of transfers allowable for specific compendial tests may be specified in that test. One passage is defined as the transfer of organisms from a viable culture to a fresh medium with growth of the microorganisms. Any form of subculturing is considered to be a transfer/passage.

工作控制菌种的传代应可以追溯,以防止过度传代,从而增加表型变异性或异化的风险。特定的药典检测所允许传代的次数必须在该检测中指明。一种途径可以界定为从活菌传代至新鲜培养基,在其中微生物可以生长。任何形式的接种都应被作为是传代/通道。LABORATORY EQUIPMENT 实验室设备

Most equipment (incubators, water baths, and autoclaves) is subject to standard validation practices of incoming qualification, operational qualification, and performance qualification. Additionally, periodic calibration (generally annually) is commonly required. New equipment, critical to the operation of the laboratory, should be qualified according to a protocol approved by the quality assurance unit (QAU). In addition, regular cleaning and sanitization of equipment such as incubators, refrigerators, and water baths should be performed to minimize the potential for contamination in the laboratory. Door seals of incubators and refrigerators should be cleaned and checked for state of repair.

主要设备(培养箱、水浴锅、灭菌器)需要进行标准验证,包括进厂确认、操作确认和性能确认。另外,一般还需要对其进行周期性校正(一般每年校正)。化验室操作的关键新设备应根据质量部门批准的方案进行确认。此外,对设备,如培养箱、冰箱和水浴锅,进行定期清洁和灭菌都是需要的,这样可以最大程度降低化验室中污染的风险。培养箱和冰箱的门封应进行清洁并对维修状态进行检查。

Instruments (pH meters and spectrophotometers) used in a microbiology laboratory should be calibrated on a regular schedule and tested to verify performance on a routine basis. The frequency of calibration and performance verification will vary based on the type of instrument and the importance of that equipment to the generation of data in the laboratory.

在微生物化验室使用的仪器(pH计和光度计)应按计划进行定期校正,并测试以按照常规要求确认其性能。校正频率和性能确认可以根据仪器的类型和仪器重要性而制订不同的周期。

Equipment that is difficult to sanitize (such as refrigerators and incubators) should be dedicated to aseptic operations (such as storage of media for testing and incubation of sterility test samples) and live culture operations to minimize the potential for inadvertent contamination of the tests.

难以灭菌的设备(例如冰箱和培养箱),如果用于无菌操作(例如测试用培养基存贮和无菌测试样品的培养)和活菌操作,则分开专用,以最大程度降低可能无意的污染。Autoclaves are central to the operation of the laboratory and must have proper validation in place to demonstrate adequate sterilization for a variety of operations. Autoclave resources must be available (and validated) to sterilize waste media (if performed in that laboratory) as well as the media prepared in that laboratory. The choice of one or several autoclaves is not driven by a need to separate aseptic and live operations (everything in the properly maintained autoclave is sterile after the cycle) but rather driven by resource considerations (see below).

灭菌器是化验室操作的核心设备,必须经过适当验证以证明其不同操作的灭菌保障。灭菌器资源(经过验证)应支持废培养基灭菌(如果在化验室灭菌),在化验室制备的培养基灭菌。是选择用一台还是多台灭菌器不需要根据将无菌操作和活菌操作分开的原因(所在经过适当维护的灭菌器灭菌的物质均是无菌的),而是应根据化验室要保证提供操作所需的充分资源(参见下文)来考虑。

LABORATORY LAYOUT AND OPERATIONS 实验室平面设计和操作

Laboratory layout and design should carefully consider the requirements of good microbiological practices and laboratory safety. It is essential that

cross-contamination of microbial cultures be minimized to the greatest extent possible, and it is also important that microbiological samples be handled in an environment that makes contamination highly unlikely.

化验室平面设计应全面考虑优良微生物规程和化验室安全要求。对此基本的要求是应尽可能降低微生物培养基的交叉污染,同样重要的是样品操作的环境应保证无污染。

In general, a laboratory should be divided into clean or aseptic areas and live culture areas. Areas in which environmental or sterile product samples are handled and incubated should be maintained completely free of live cultures, if possible. If complete separation of live and clean culture zones cannot be accomplished, then other barriers and aseptic practices should be employed to reduce the likelihood of accidental contamination. These barriers include protective clothing, sanitization and disinfection procedures, and biological safety cabinets designated for clean or aseptic operations only. Procedures for handling spills or mishaps with live cultures should be in place, and all relevant technical personnel should be trained regarding these methods.

一般来说,微生物检验室应分为洁净区域或无菌区域、活菌区域。如有可能,环境监控样品或无菌产品样品操作和培养的区域应保持无活菌。如果活菌和无菌培养区域无法完全隔离,则应采用物理隔断和灭菌措施以降低可能的意外污染。这些物理隔断包括防护服、灭菌和消毒程序,仅供洁净或无菌操作所用的生物安全柜。应对操作中活菌洒出或灾祸制订书面程序,所有相关的技术人员均应接受此相关培训。

Some samples will demonstrate microbial growth and require further laboratory analysis to identify the contaminants. When growth is detected, the sample should be taken from the clean section of the laboratory to the live culture section without undue delay. Subculturing, staining, microbial identification, or other investigational operations should be undertaken in the live culture section of the laboratory. If possible, any sample found to contain growing colonies should not be opened in the clean zone of the laboratory. Careful segregation of contaminated samples and materials will reduce false-positive results.

有些样品可能会发现有微生物生长,需要进一步的实验分析以确定污染物。如果发现有微生物生长,样品应立即从洁净区域移至活菌区域。次培养、染色、微生物鉴别,或其它调查操作应在活菌区域进行。如有可能,所有发现有菌株生长的样品均不可化验室洁净区域打开。对受污染样品和物料小心进行隔离可以减少假阳性结果。

Staff engaged in sampling activities should not enter or work in the live culture handling section of a laboratory unless special precautions are taken, including wearing protective clothing and gloves and careful sanitizing of hands upon exiting.

Ideally, staff assigned to sampling activities, particularly those in support of aseptic processing, should not work in the vicinity of live culture laboratory operations.

取样人员不应进入或在活菌操作区域工作,除非采取了特殊的预防措施,包括穿着防护服和手套、退出时进行仔细的手消毒。理想情况下,取样人员尤其是那些无菌工艺的取样人员,不应在活菌操作附近工作。

It is important to consider that microbial contamination of samples, which leads to false-positive results, is always possible unless careful aseptic precautions are taken. Facilities should be designed so that raw material and excipient sampling can be done under controlled conditions, including proper gowning and sterilized sampling equipment. It may not always be possible to sample utility systems, such as water systems, under full aseptic conditions; however, it should be noted that when samples are not taken aseptically, their reliability is inevitably compromised.

考虑样品被污染的可能性是非要重要的,这种情况可能会导致假阳性结果,除非采取了严格的无菌预防措施,否则总会存在这种可能性。设施的设计应使原料和辅料取样操作在控制环境下进行,包括进行适当的更衣和对取样工具进行灭菌。对公用系统进行无菌条件下取样有时可能无法实现,例如水系统,此时如果不是在无菌条件下取样应注意其可靠性不可避免地会降低。

Environmental sampling methods should require minimal aseptic handling in loading and unloading sampling instruments. Whenever possible, sampling equipment should be loaded with its microbiological recovery media in the environment that is to be sampled.

环境取样方法应尽可能减少取样工具的无菌操作。只要可能,取样工具应在将要取样的环境里载入其微生物回收培养基。

All testing in laboratories used for critical testing procedures, such as sterility testing of final dosage forms, bulk product, seed cultures for biological production, or cell cultures used in biological production, should be performed under controlled conditions. Isolator technology is also appropriate for critical, sterile microbiological testing. Isolators have been shown to have lower levels of environmental contamination than manned clean rooms, and therefore, are generally less likely to produce false-positive results. Proper validation of isolators is critical both to ensure environmental integrity and to prevent the possibility of false-negative results as a

result of chemical disinfection of materials brought into or used within isolators

(see Sterility Testing—Validation of Isolator Systems1208).

在化验室进行的所有关键检测,例如制剂无菌测试、原料药、生物制品接种、或生物制品细胞培养,均应在受控环境下进行。分离技术也适用于关键的无菌微生物测试。隔离器经证明比手工清洁房间具有更低的环境污染水平,因此一般不可能产生假阳性结果。对隔离器进行适当的验证很关键,可以保证环境的完整性,以及防止由化学消毒物质引起的可能的假阳性结果。(参见无菌测试----隔离系统验证1208)

SAMPLE HANDLING 样品制备

Viable microorganisms in most microbiology samples, particularly water, environmental monitoring and bioburden samples, are sensitive to handling and storage conditions. Critical parameters in these conditions include product (or sample) composition, container composition, time of storage, and temperature of storage. Therefore, it is important to minimize the amount of time between the sampling event and the initiation of testing and to control, as much as possible, the conditions of storage. If the sample is to be transported to a distant location for testing, then the conditions of transport (time, temperature, etc.) should be qualified as suitable for that test and sample. Guidance for water testing in this regard can be found in Water for Pharmaceutical Purposes 1231 . Product mixing before sampling may need to be evaluated and applied in order to ensure microbial dispersement and representation in the sample aliquot.

大多数微生物样品中的活菌,尤其是水样、环境监控样品和生物负载样品,对处置过程和存贮条件非常敏感。这些环境下的关键参数包括产品(或样品)成分、容器成份、存贮时长、存贮温度。因此,尽量缩短取样和检验开始的时间间隔非常重要,以及尽可能控制存贮环境。如果样品需要送到一个较远的检测场所,则传送条件(时间、温度等)应针对所做的检测和样品进行确认以保证其合适。有关水检测的指南参见1231制药用水。在取样前即进行混合的产品可能需要进行评估,以保证微生物水平及样品代表性。All microbiological samples should be taken using aseptic techniques, including those taken in support of nonsterile products. If possible, all microbiological samples should be taken under full aseptic conditions in specialized sampling areas. The areas should be as close to the point of use as possible to minimize contamination during transit.

所有用于微生物检测的样品均应在无菌环境下取样,包括用于非无菌制剂的样品。如有可能,所有微生物检测用样品应在特定的无菌条件的取样区域取样,该区域应与使用时的环境尽可能接近,以最大程度降低转移过程中的污染。

Samples submitted to the microbiology laboratory should be accompanied by documentation detailing source of the sample, date the sample was taken, date of sample submission, person or department responsible for the submission, and any potentially hazardous materials associated with the sample. The testing department should acknowledge receipt of the sample and reconcile the identity and number of samples as part of this sample documentation.

样品传递至微生物化验室时应附有详细的记录,包括样品来源、取样日期、样品传递日期、传递人员或部门、样品可能会含有的危险物质。检验部分应告知样品收到,并核对编号和样品数量,在取样记录中注明。

MICROBIOLOGICAL MEDIA INCUBATION TIMES 微生物培养基培养时间Incubation times for microbiological tests of less than 3 days' duration should be expressed in hours: e.g., ―Incubate at 30 to 35 for 18 to 72 hours‖. Tests longer than 72 hours' duration should be expressed in days: e.g., ―Incubate at 30 to 35 for 3 to 5 days‖. For incubation times expressed in hours, incubate for the minimum specified time, and exercise good microbiological judgment when exceeding the incubation time. For incubation times expressed in days, incubations started in the morning or afternoon should generally be concluded at that same time of day.

微生物测试的培养时间如果少于3天,则应表述为小时,例如“在30-35℃培养18-72小时”。如果大于72小时,则应表述为天数,例如“在30-35℃培养3-5天”。如果培养时间以小时计,则培养时间应为指定的最短时间,如果超出指定的培养时间,则需要应用好的微生物判断。如果培养时间以天计,则上午或下午开始进行培养一般会在结束天的同一时间进行判定。

TRAINING OF PERSONNEL 人员培训

Each person engaged in each phase of pharmaceutical manufacture should have the education, training, and experience to do his or her job. The demands of microbiological testing require that the core educational background of the staff, supervisors, and managers be in microbiology or a closely related biological science.

They should be assigned responsibilities in keeping with their level of skill and experience.

参与药品生产各阶段活动的所有人员均需要进行教育、培训,具备其所操作岗位的经验。微生物检测岗位要求操作人员、主管和经理的基本教育背景为微生物学或相关生物学科。公司应根据人员的技能水平和经验赋予不同的责任。

A coherent system of standard operating procedures (SOPs) is necessary to run the microbiology laboratory. These procedures serve two purposes in a training program. Firstly, these SOPs describe the methodology that the microbiologist will follow to obtain accurate and reproducible results, and so serve as the basis for training. Secondly, by tracking the procedures in which a particular microbiologist has demonstrated proficiency, the procedure number or title also serves to identify what training the microbiologist has received specific to his or her job function.

要使微生物室正常运行,需要有一套条理分明的标准操作规程(SOP)。这些程序对于培训来说有两个目的,一是这些SOP描述了微生物化验员需要遵守以获得准确和可重复的结果的方法,从而作为培训的基础教材,二是在SOP中由指定的微生物化验员进行了专业描述,该SOP的编号和题目可以用以识别微生物化验员接受了其岗位所对应的培训。

Training curricula should be established for each laboratory staff member specific to his or her job function.

对各化验室人员,应根据其岗位要求制订相应的培训课程。

He or she should not independently conduct a microbial test until qualified to run the test. Training records should be current, documenting the microbiologist's training in the current revision to the particular SOP.

化验室人员在未获得资格前,不得独立进行微生物测试。培训记录应保持更新,记录微生物化验员根据特定SOP现行版本所进行的培训。

Periodic performance assessment is a wise investment in data quality. This performance testing should provide evidence of competency in core activities of the microbiology laboratory such as hygiene, plating, aseptic technique, documentation, and others as suggested by the microbiologist's job function.

对化验员进行周期性的绩效评估是对数据品质的明智投资。这种行为测试应提供微生物核心活动合格的证据,如卫生、铺碟、无菌操作、记录和其它微生物化验员工作内容的活动。

Microbiologists with supervisory or managerial responsibilities should have appropriate education and inhouse training in supervisory skills, laboratory safety, scheduling, budgeting, investigational skills, technical report writing, relevant SOPs, and other critical aspects of the company's processes as suggested in their role of directing a laboratory function.

微生物室具有监督或管理职责的人员应具有适当的教育背景,以及公司内部培训,内容包括监管技巧、化验室安全、制订计划、制订预算、调查技巧、技术报告书写、相关SOP、公司程序所要求其岗位应具体的领导化验室的职责的其它关键方面。Competency may be demonstrated by specific course work, relevant experience, and routinely engaging in relevant continuing education. Achieving certification through an accredited body is also a desirable credential. Further, it is expected that laboratory supervisors and managers have a demonstrated level of competence in microbiology at least as high as those they supervise. Expertise in microbiology can be achieved by a variety of routes in addition to academic course work and accreditation. Each company is expected to evaluate the credentials of those responsible for designing, implementing, and operating the microbiology program. Companies can thus ensure that those responsible for the program understand the basic principles of microbiology, can interpret guidelines and regulations based on good science, and have access to individuals with theoretical and practical knowledge in microbiology to provide assistance in areas in which the persons responsible for the program may not have adequate knowledge and understanding. It should be noted that microbiology is a scientifically based discipline that deals with biological principles substantially different from those of analytical chemistry and engineering disciplines.

人员是否合格可以通过特定工作、相关经验和日常从事相关持续教育进行证明。获得相关机构的证书也是一种理想的方法。另外,最好化验室主管和经理能具备其所监管的微生物工作的至少同样水平的能力。除通过专业课程和专业机构证书外,也可以通过不同的方法达到微生物专业水平。公司应评估负责微生物程序设计、实施和操作的负责人员的证书,从而保证这些人员具备基本的微生物原理,可以对指南和法规基于科学理论进

行解释,并知晓哪些人具备理论和实践微生物知识,能在负责某程序的人不具备充分知识和理解时提供相关的帮助。需要注意的是,微生物学是一门科学严谨的学问,是与生物原则相关的学科,根本区别于分析化学和工程学原理。

Many times it is difficult for individuals without specific microbiological training to make the transition.

一个人如果没有特定的微生物培训知识,要进行知识传递是非常困难的。LABORATORY RESOURCES 化验室资源

The laboratory management is responsible for ensuring that the laboratory has sufficient resources to meet the existing testing requirements. This requires some proficiency in budget management and in determining appropriate measures of laboratory performance. A measure of laboratory performance is the number of investigations performed on tests conducted by the laboratory, but this measure alone is not sufficient. In addition to tracking investigations, the period of time between sample submission and initiation of testing should be tracked, as well as the period of time between end of test and report release (or test closure). Significant delays in these measures are also indications of an under-resourced laboratory staff.

实验室管理人员应保证实验室具有充足的资源,以满足现有的检测要求。要做到这点,需要有充足的预算以及对化验室表现做出适当的评估。化验室表现的评估标准之一是化验室所做检测的调查数量,但仅采用该标准是不够的。除了追踪调查之外,还应追踪样品传送间隔和检测开始时间,以及检测结束到出具报告(或检测关闭)的时间间隔。这些行为的延迟也说明化验室人员未满足资源要求。

The laboratory management should have sufficient budget to meet testing requirements. Particular measures of budgetary requirements will be specific to the given laboratory, but budgetary considerations related directly to the need of the laboratory for sufficient resources must be addressed to ensure reliable testing results.

化验室管理应具备充足的预算,以满足检测的要求,预算应细化针对各特定的化验室,与化验室资源是否充分直接相关的预算要求则必须进行说明,以保证获得可靠的检测结果。

DOCUMENTATION 文件记录

微生物限度检查方法及其验证报告(修改)

文件编号:73021微生物限度检查方法及其验证报告

目录1 样品相关信息 1.1 基本信息 2 主要仪器设备和试验耗材信息 2.1 主要使用的仪器设备 2.2 试验用培养基 2.3 试验用试剂 2.4 试验用菌种 3 试验环境 3.1 无菌室 3.2 洁净工作台 3.3 生物安全柜 4 试验方案 4.1 验证试验目的 4.2 微生物限度检查方法草案 5 方法验证试验 5.1 菌液制备 5.2 计数培养基适用性检查 5.3 控制菌检查用培养基使用性检查 5.4 供试液制备 5.5 方法验证 5.5.1 菌落计数方法验证试验 5.5.2 控制菌检查方法的验证 5.6 方法验证结论 6 供试品微生物限度检查结果

1 样品相关信息 1.1 基本信息(三批) 2 主要仪器设备和试验耗材信息2.1 主要使用的仪器设备 2.2 试验用培养基 2.2.1 对照培养基

2.2.2 试验用培养基 2.3 试验用试剂 2.4 试验用菌种

3 试验环境 《中国药典》2015版规定,微生物限度检查应在环境洁净度10000级下的局部洁净度100级的单向流空气区域进行。 本公司微生物限度室、阳性对照室、生物安全柜及超净工作台洁净度检测无特殊情况下每季度进行一次。 3.1 无菌室 无菌室按《医药工业洁净厂房设计规》GB 50457-2008监测,静态洁净度检测结果符合GB50457-2008对10000级洁净度要求。 3.2 超净工作台 超净工作台按《医药工业洁净厂房设计规》GB50457-2008监测,静态洁净度检测结果符合GB50457-2008对100级洁净度要求。 超净工作台沉降菌检测记录 2015.11.15 3.3生物安全柜 生物安全柜按《生物安全实验室建筑技术规》GB50346-2011监测,静态洁净度检测结果符合GB50457-2008对100级洁净度要求。 生物安全柜沉降菌监测记录 2015.11.15 4 试验方案 按《中国药典》2015年版第四部:(通则1105)非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法、(通则1106)非无菌产品微生物限度检查:控制菌检查法、(通则1107)非无菌药品微生物限度标准及(通则1121)抑菌效力检查法规定,本品微生物限度标准为:1g供试品中,需氧菌总数不得过1000cfu,霉菌和酵母菌总数不得过100cfu,大肠埃希菌不得检出。

常见的微生物检测方法

常见的微生物检测 方法

摘要:微生物的检测,无论在理论研究还是在生产实践中都具有重要的意义,本文分生长量测定法,微生物计数法,生理指标法和商业化快速微生物检测简要介绍了利用微生物重量,体积,大小,生理代谢物等指标的二十余种常见的检测方法,简要介绍了这些方法的原理,应用范围和优缺点。 概述: 一个微生物细胞在合适的外界条件下,不断的吸收营养物质,并按自己的代谢方式进行新陈代谢。如果同化作用的速度超过了异化作用,则其原生质的总量(重量,体积,大小)就不断增加,于是出现了个体的生长现象。如果这是一种平衡生长,即各细胞组分是按恰当的比例增长时,则达到一定程度后就会发生繁殖,从而引起个体数目的增加,这时,原有的个体已经发展成一个群体。随着群体中各个个体的进一步生长,就引起了这一群体的生长,这可从其体积、重量、密度或浓度作指标来衡量。微生物的生长不同于其它生物的生长,微生物的个体生长在科研上有一定困难,一般情况下也没有实际意义。微生物是以量取胜的,因此,微生物的生长一般指群体的扩增。微生物的生长繁殖是其在内外各种环境因素相互作用下的综合反映。因此生长繁殖情况就可作为研究各种生理生化和遗传等问题的重要指标,同

时,微生物在生产实践上的各种应用或是对致病,霉腐微生物的防治都和她们的生长抑制紧密相关。因此有必要介绍一下微生物生长情况的检测方法。既然生长意味着原生质含量的增加,因此测定的方法也都直接或间接的以次为根据,而测定繁殖则都要建立在计数这一基础上。微生物生长的衡量,能够从其重量,体积,密度,浓度,做指标来进行衡量。 生长量测定法 体积测量法:又称测菌丝浓度法。 经过测定一定体积培养液中所含菌丝的量来反映微生物的生长状况。方法是,取一定量的待测培养液(如10毫升)放在有刻度的离心管中,设定一定的离心时间(如5分钟)和转速(如5000 rpm),离心后,倒出上清夜,测出上清夜体积为v,则菌丝浓度为(10-v)/10。菌丝浓度测定法是大规模工业发酵生产上微生物生长的一个重要监测指标。这种方法比较粗放,简便,快速,但需要设定一致的处理条件,否则偏差很大,由于离心沉淀物中夹杂有一些固体营养物,结果会有一定偏差。 称干重法:

食品微生物检验的内容及检测技术

食品微生物检验的内容及检测技术 食品安全检验过程的主要内容 食品微生物的检验。食物在生产过程中以及放置过程中会受到环境中微生物的损坏或影响,在部分研究中,将食品中细菌数量对食品的损坏程度作为食品安全检测的首 要内容。在食品微生物的检验过程中,我们主要对人体有害微生物进行检验,其中在食品安全检验过程中,因为食品中有多种微生物共存现象,所以在检验前,微生物检验员要把不同的菌体进行分离,这样才能更加清楚的了解各种微生物的数量及菌体的分布情况,包括生产型食品微生物,如醋酸杆菌,酵母菌等和使食物变质的微生物,如霉菌、细菌等和食源性病原微生物如溶血性大肠杆菌,肉毒杆菌等。对食品原辅料微生物的控制和产成品微生物的检验是保证食品安 全的重要途径。 针对食品致病菌的相关检验。不同的致病菌会对人们的身体健康有不同程度的危害,像我们在生活中经常吃到的大米,有些不法商家将发霉的大米加工后再次放入市场进行二次销售,虽然经加工后,在外表上和普通大米没啥两样,但这种大米中含有黄曲霉这一致病菌,据可靠信息表明,黄曲霉的危害性十分巨大,如果人们长时间吃这样的大米,出

现癌症的风险要比常人高出很多倍,由此可见,食品中致病菌的检验是保证我们能吃到放心食品十分关键的微生物检 测技术,所以我们在致病菌的检验上对不同种类的致病菌进行定量严格检验。如乳制品和肉制品的致病菌主要是黄曲霉菌和大肠杆菌,而蛋制品中则容易出现染沙门菌、大肠菌群、大肠杆菌和金黄色葡萄球菌,罐头食品容易出现肉毒梭菌、产气荚膜梭菌、蜡样芽胞杆菌。 食品微生物检验中的主要特点 对食品检测要求相对较高。在食品微生物的一系列检验中,由于食品中涉及的微生物种类较多,因此加大了食品微生物检验的难度。国家标准或行业标准对不同食品中微生物的含量特别是致病菌的含量有明确的要求。在食品的运输过程中,食品致病菌以及其他微生物对相应的食品有一定的污染,随着微生物种类的增多,检测人员需要对食品受致病菌影响的程度、食品保质期以及其他相关的标准进行测量,难度会随着微生物种类的增多而复杂。所以在微生物检验上我们对每一阶段的食品安全检测都要重视,在各个微生物的测量上,相关的检测技术要求就有所提高。 食品微生物检验效率。随着食品市场的商品流通提高,人们对食品需求不断增加,而食品安全问题却在日益严重,为了保障人们在能够及时满足食品种类和数量要求的同时,进一步促进食品安全的保障措施落实,必须加强食品安

食品微生物检测方法的研究进展

食品微生物快速检测方法的研究进展 【摘要】本文从食品安全与卫生的角度出发,介绍了分子生物学方法中的核酸探针检测法、基因芯片检测法、PCR技术检测法的检测原理及优缺点、在食品微生物检测中的应用。 【关键词】食品微生物、快速、检测、分子生物学 随着世界食品开发、生产、销售的迅速发展与人们生活水平的不断提高,研究和建立食品微生物快速检测方法以加强对食品卫生安全的监测越来越受到各国科学家的重视,其关键是及时、准确地检测出食品中的微生物。传统的检测方法准确性、灵敏性均较高,但有涉及的实验较多、操作繁琐、效率低等缺点。近年来,微生物的快速检测和自动化研究进展声速,主要包括微生物学、分子化学、生物化学、生物物理学、免疫学和血清学等方面及其它们的结合应用。本文主要介绍分子生物学方法中的核酸探针检测法、基因芯片检测法和PCR技术检测法 分子生物学方法 随着微生物学、生物化学和分子生物化学的飞速发展,对微生物的鉴定已不再局限于对它的外部形态结构及生理特性等一般检验上,而是从分子生物学水平上研究生物大分子,特别是核酸结构及其组成部分。在此基础上建立的众多检测技术中,核酸探针和聚合酶链反应,以其敏感、特异、简便、快速的特点成为世人瞩目的生物技术革命的新产物,已逐步应用于信源性病原菌的检测。 1 核酸探针法 细胞核酸DNA 和RNA 是唯一一类可以传递遗传信息的大分子,而每一种病原体都有独特的核酸片段,核酸探针是带有将已知核苷酸DNA或RNA片段用同位素或其它方法标记的基因特异片段,它主要利用碱基配对原理,使互补的2条核酸单链形成双链。 根据核酸探针中核苷酸成分的不同,可将其分为DNA探针或RNA探针;根据选用基因的不同又可分为两种,一种探针能同微生物中全部DNA分子中的一部分发生反应,它对某些菌属、菌种、菌株有特异性,另一种探针只能限制性同微生物中某一基因组DNA发生杂交反应,它对某种微生物中的一种菌株或仅对微生物中某一菌属有特异性。 美国GENE-TRAK公司研制出了脱氧核糖核酸杂交筛选比色法,主要利用特异的基因探针对沙门菌、李斯特菌和大肠杆菌的rRNA进行检测。检测步骤如下:先设计出与细菌rRNA互补的基因探针,待检样经过增菌培养后,溶解细菌并加入带有标记的探针进行液相杂交:如果待检样中存在靶细菌rRNA、荧光素标记的检测探针和多聚脱氧腺嘌呤核苷酸末端捕获将与目标rRNA序列杂交;此后,把包被多聚脱氧胸腺嘧啶核苷酸的固相载体测杆插入杂交溶液中,利用多聚脱氧腺嘌呤核苷酸与多聚脱氧胸腺嘧啶核苷酸间的碱基配对将杂交核酸捕获于固体载体中,并将固相载体真培养于过氧化酶-抗荧光素接合剂中,使探针上的荧光素与结合剂结合;最后,将固相载体置于酶底物-色原溶液中,使过氧化酶与底物反应,在450nm处测量吸光度值,以确定样品中是否存在靶细菌。 总的来说,核酸探针技术是一种理想的快速检测技术,它最大优势是特异性和敏感性,而且兼备组织化学染色的可见性和定位性,主要用于食品致病性病原微生物的检测。但是也存在一定问题,如每检测一种菌就需要制备一种探针,而且目前尚未建立所有菌种的探针;要达到检测量还要对样品进行一定时间的培养;对毒素污染的食品有时因样品中不含产毒菌而无法检测出,所以该技术还有待进一步发展。 2基因芯片技术 基因芯片的基本原理是将各种寡核苷酸点样于芯片表面,微生物样品DNA经PCR扩增制备荧光标记探针,然后再与芯片上寡核苷酸点杂交,最后通过扫描仪定量和分析荧光分布模式来确定检测样品是否存在某些特定微生物。

生物传感器的研究现状及应用

生物传感器的研究现状及应用 生物传感器?这个熟悉但又概念模糊的名词最近不断出现在媒体报道上,生物传感器相关的研究项目陆续获得巨额的研究资助,显示出越来越受重视的前景。要掌握生命科学研究的前研信息,争取好的研究课题和资金,你怎能不了解生物传感器? 让我们来看看生物通最近的一些报道: 英国纽卡斯尔大学科学家研发了可用于检测肿瘤蛋白以及耐药性MASA细菌的微型生物传感器。该系统利用一个回旋装置来检测,类似导航系统和气袋的原理。振荡晶片的大小类似于一颗尘埃尺寸,有望可使医生诊断和监测常见类型的肿瘤,获得最佳治疗方案。该装置可以鉴定肿瘤标志物-蛋白以及其它肿瘤细胞产生的丰度不同的生物分子。该小组下一步目标是把检测系统做成一个手持式系统,更加快速方便地检测组织样品。欧共体已经拨款1200万欧元资金给该小组,以使该技术进一步完善。 苏格兰IntermediaryTechnologyInstitutes计划投资1亿2千万英镑发展“生物传感器平台(BiosensorPlatform)”——一种治疗诊断技术。作为将诊断和治疗疾病结合在一起的新兴疗法,能够在诊断的同时,提出适合不同病人的治疗方案,可以降低疾病诊断和医学临床的费用与复杂性,同时具备提供疾病发展和药品疗效成果的能力。目前该技术已被使用在某些乳癌的治疗上,只需在事前做些特殊的测试,即可根据结果决定适合的疗程。这个技术更被医学界视为未来疾病疗程的主流。 来自加州大学洛杉矶分校的研究者使用GeneFluidics开发的新型生物传感器来鉴定引起感染的特定革兰氏阴性菌,该结果表明利用微型电化学传感器芯片已经可以用于人临床样本的细菌检查。GeneFluidics'16-sensor上的芯片包被了UCLA设计的特异的遗传探针。临床样本直接加到芯片上,然后其电化学信号被多通道阅读器获取。根据传感器上信号的变化来判断尿路感染的细菌种类。从样品收集到结果仅需45分钟。比传统方法(需要2天时间)

微生物限度检查记录 版

表:微生物限度检查记录(通用) 三、大肠埃希菌检查 胰酪大豆胨液体培养基(配制批号:)、麦康凯液体培养基(配制批号:)麦康凯琼脂培养基(配制批号:)

微生物限度检查记录 (30~35℃,3~5天) 20℃~25℃,5~7天) 沙氏葡萄糖琼脂培养基(配制批号:) 三、控制菌检查(30-35℃)

表: 胰酪大豆胨液体培养基(配制批号:)、麦康凯液体培养基(配制批号:)麦康凯琼脂培养基(配制批号:) (30℃~35℃) 胰酪大豆胨液体培养基(配制批号:)、RV沙门增菌液体培养基(配制批号:),木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基(配制批号:)、三糖铁琼脂(配制批号:) 五、耐胆盐革兰阴性菌检查 胰酪大豆胨液体培养基(配制批号:)、肠道菌增菌液体培养基(配制批号:),紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基(配制批号:)

表: (含药材原粉的片剂) 胰酪大豆胨液体培养基(配制批号: )、麦康凯液体培养基(配制批号: )麦康凯琼脂培养基(配制批号: ) (30℃~35℃) 胰酪大豆胨液体培养基(配制批号: )、RV 沙门增菌液体培养基(配制批号: ),木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基(配制批号: )、三糖铁琼脂(配制批号: ) 五、耐胆盐革兰阴性菌检查 胰酪大豆胨液体培养基(配制批号: )、肠道菌增菌液体培养基(配制批号: ),紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基(配制批号: )

表:微生物限度检查记录(蛇胆川贝液) 三、大肠埃希菌检查 胰酪大豆胨液体培养基(配制批号:)、RV沙门增菌液体培养基(配制批号:),木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基(配制批号:)、三糖铁琼脂(配制批号:)

微生物检验方法验证方案

微生物限度检查方法(平皿法) 验证方案 目录 一、验证方案的制定 二、验证方案的起草与审批 三、微生物限度检查方法(平皿法)验证方案 1.验证目的和原理 2.验证方法步骤 3.试验实施 3.1试验前的准备 3.2验证试验操作 3.3试验结果 4.验证结果评价分析

5.附件 微生物限度检查方法(平皿法)验证文件一、验证方案的制定 二、验证方案的起草与审批 1验证方案的起草

2.验证方案的审核与批准 验证方案审核人:审核日期:年月日验证方案批准人:批准日期:年月日三、微生物限度检查方法(平皿法)验证方案 1.验证目的和原理 1.1 验证目的 为确认所采用的方法适合于该药品的细菌、霉菌、酵母菌数的测定,特制定本方案。验证过程应严格按照本方案规定的内容进行,若因特殊原因确需要变更时,应报验证委员会批准。 1.2 原理 通过比较试验4组中试验菌的恢复生长结果来评价整个检验方法的准确性、有效性和重现性。 2.验证方法步骤 2.1验证前的准备进行微生物限度检查方法(平皿法)验证前,所有的平皿和稀释剂都应该严格按照相关的灭菌程序消毒,以确保其对试验的结果没有影响。试验菌应包括G-、G+、酵母菌和霉菌类微生物以基本覆盖样品中可能存在的微生物。 2.2验证试验的操作计划用3个不同批号产品按照微生物限度检测方法进行平行试验,通过计算回收率来判断微生物限度检查方法是否对产品有影响。 2.3试验结果可接受标准用标准菌株评价方法“尿素维生素E乳膏的微生物限度检查”对检品中微生物的抑制性,试验结果应显示3次独立的平行试验中,稀释剂对照组的菌回收率应不小于70%,试验组的回收率也不低于70%。 3.试验实施 3.1试验前的准备 3.1.1主要仪器设备:高压蒸汽灭菌器、恒温烘干箱、净化工作台、生物安全柜、

制药企业微生物限度控制菌检查培养基适用性检查记录表式样

控制菌检查培养基适用性检查记录 一、菌液制备(需要的菌种在□内划“√”): □(1)大肠埃希菌新鲜肉汤培养物1ml ,9ml0.9%无菌NaCl溶液,10倍递增稀释; □(2)金黄色葡萄球菌新鲜肉汤培养物1ml,9ml0.9%无菌NaCl溶液,10倍递增稀释; □(3)乙型副伤寒沙门菌新鲜肉汤培养物1ml,9ml0.9%无菌NaCl溶液,10倍递增稀释; □(4)铜绿假单胞菌新鲜肉汤培养物1ml,9ml0.9%无菌NaCl溶液,10倍递增稀释; □(5)生孢梭菌新鲜硫乙醇酸盐流体培养物1ml,9ml0.9%无菌NaCl溶液,10倍递增稀释; 二、每ml菌液含菌量的计数测定。 测定方法:取稀释后的菌液1ml(剩余的菌液冷藏保存),置直径90mm的无菌平皿中,注入15-20ml已经过适用性检查确正的温度不超过45℃的溶化的营养琼脂培养基(细菌类别计数选用该培养基)或玫瑰红钠琼脂培养基(霉菌、酵母菌类别计数选用该培养基),混匀,凝固,倒置培养。每稀释级每种培养基至少制备2个平板。细菌类别培养温度为30℃~35℃;霉菌、酵母菌类别培养温度为23℃~28℃。细菌类别培养3天,霉菌、酵母菌类别培养5天。 三、检查结果:需做的检查在□内划“√”。 □ 1. 增菌培养基促生长能力检查

分别接种不大于100cfu的试验菌于被检培养基和对照培养基中,在相应控制菌检查规定的培养温度及最短培养时间下培养。与对照培养基管比较,被检培养基管试验菌。 检验标准:与对照培养基管比较,被检培养基管试验菌应生长良好。 结论: □ 2. 固体培养基促生长能力检查 检验标准:被检培养基的菌落数与对照培养基菌落数相比大于70%,且菌落形态大小应与对照培养基上的菌落一致。判该培养基的适用性检查符合规定。 结论: □ 3. 培养基抑制能力检查 分别接种试验菌于被检培养基中,在相应控制菌检查规定的培养温度和时间下培养,试验菌。 检验标准:试验菌应不得生长。 结论: □ 4. 培养基指示能力检查 分别接种少量试验菌于被检培养基和对照培养基中,在相应控制菌检查规定的培养温度和时间下培养。被检培养基中试验菌生长的菌落形态、大小、指示剂反应情况等。 检验标准:被检培养基中试验菌生长的菌落形态、大小、指示剂反应情况等应与对照培养基一致。 结论: 结论: 检验人:复核人:

微生物检验(完整版)

微生物检验(完整版) 名解 微生物:是一群个体微小结构简单肉眼不能看见的微小生物的总称 种:亲缘关系较近的微生物群体在进化发育阶段上有一定的共同形态和生理特征 微生物学:生物学的一个分支是研究微生物在一定条件下的形态结构生理生化遗传变异特性及微生物的进化分类生态等生命活动规律以及微生物之间与人类动植物自然界互相关系的一门科学 抗生素:是由某些微生物在代谢过程中产生的能抑制或杀灭某些其他微生物和肿瘤细胞的微量生物活性物质 细菌素:是某些细菌菌株产生的一类具有抗菌作用的蛋白质 条件致病菌:正常菌群在宿主体内具有相对稳定性一般不致病 消毒:指杀死物体上的病原微生物但不一定能杀死细菌芽孢的方法 灭菌:指杀灭物体上所有的微生物的方法 防腐:指防止或抑制微生物生长繁殖的方法 无菌:指没有货的微生物的存在 质粒:是细菌染色体外的遗传物质也是环状闭合的双联DNA分子比染色体小存在于细胞质中可自主复制 突变:是指细菌遗传物质的机构发生突然而稳定的改变所致的变异现象可遗传给后代 基因转移:外源性物质由供体菌转入受体细胞内的过程 基因重组:供体菌的基因进入受体菌细胞并在其中自行复制与表达或矛受体菌DNA整合在一起的过程 病毒:是一类个体微小结构简单只含一种核酸只能在活的易感细胞内以复制方式增殖的

非细胞型微生物 复制周期:病毒的增殖被人为分成吸附穿入脱壳生物合成装配成熟与释放七个步骤的完整过程 缺陷病毒:是指因病毒基因组不完整或因基因某一点改变而不能进行正常增殖的病毒 顿挫感染:病毒进入宿主细胞若细胞缺乏病毒复制所需的酶能量和必要成分等则病毒无法合成自身成分不能够装配和释放子代病毒的现象 干扰现象:两种病毒感染同一种细胞时可发生一种病毒抑制另一种病毒增殖的现象 人工自动免疫:是将疫苗等免疫原接种于人体刺激机体免疫系统产生特异性免疫应答使机体获得特异性免疫力 人工被动免疫:是指注射含某种病毒特异性中和抗体的免疫血清等一系列细胞因子是机体立即获得特异性免疫 干扰素:是由病毒或干扰素诱生剂作用于中性粒细胞成纤维细胞或免疫细胞产生的一种糖蛋白 致病性:一定种类的病原微生物在一定的条件下能在特殊的宿主体内引起特定疾病的能力半数致死量:在规定时间内通过一定途径能使一定体重或年龄的某种动物半数死亡或感染需要的最小病原体数量或毒素量 急性感染:发作突然病程较短一般是数天或数周 局部感染:病原体侵入机体后局限就在一定部位生长繁殖引起病变的一种感染类型 毒血症:致病菌侵入宿主体后只在机体局部生长繁殖病菌不进入血液循环但其产生的外毒素入血引起特殊的毒性症状 败血症:致病菌侵入血流后在其中大量繁殖并产生毒性产物引起全身性毒性症状 内毒素血症:革兰阴性菌侵入血流并在其中大量繁殖崩解后释放出大量毒素也可有病灶

《微生物检测技术》教学大纲

《微生物检测技术》教学大纲 一、基本信息 二、教学目标及任务 教学目标:通过36个学时的教学,努力使学生了解微生物检验检测中的基本技术体系,了解微生物检测技术在研究工作中的用途和新技术的发展动态,使学生在微生物检验检测方面能够提高认识,并对技术体系有一定的了解,以适应就业后在动植物检验检疫、食品品质检测等方面的微生物检验检测业务的需要,也能适应学生今后在进一步的研究和开发过程中所需要用到的研究性检测业务。 三、学时分配 四、教学内容及教学要求 绪论我国粮食生产、我国农业的发展趋势及其和微生物的关系。 重点介绍我国粮食生产的趋势和供需关系,使学生理解微生物检验检测的重要性 无难点 了解微生物检验技术的重要性

第一章微生物在自然界的分布、作用和特征 第一节微生物在自然界的分布 第二节微生物在自然界的作用 第三节微生物在自然界的特征 本章重点介绍微生物的多样性、微生物分布的普遍性和检测特定的微生物的难点 无难点 了解技术对微生物检验的重要性 第二章微生物检验技术和社会 第一节微生物检验技术和植物检疫 第二节微生物检验技术和食品安全 第三节微生物检验技术和研究 本章重点介绍微生物检验检测技术在植物检疫、食品安全、资源开发以及研究活动中的作用和意义 无难点 理解微生物检验技术对国民经济和国民生活安全的重要性,了解微生物检验技术作用范围 第三章微生物检测技术概述 第一节可培养微生物的检测 第二节VBNC的检测技术 第三节其它的微生物检测技术 针对本课程以各项技术为中心展开,缺乏系统性的特点,本章首先给各种微生物检测技术进行概述,尽量给学生提供一个整体观和一些关键技术的信息。 难点在于理解VBNC的检测 理解各种常用的微生物检验技术和方法 第四章样品的采集和处理 第一节气体的采样和处理 第二节液体的采样和处理 第三节固体的采样和处理 从实际出发,本课程设置了采样技术,对用于微生物检验检测的样品的采集进行细致的介绍。 难点在于理解各种采样设备和工具(缺乏实物) 使学生注意到采样行为对微生物的检测结果带来的误差,并培养学生在自己今后的工作中尽量减少采样造成的误差的意识。 第五章微生物检测技术 第一节可培养微生物的检测 以国标为蓝本,介绍可培养微生物的检测方法 学生实验中有一定的基础,应无难点 使学生了解微生物检测的国家标准在实际工作中的应用,使学生学会如何利用国标。 第二节VBNC的检测技术 以最新的研究或最经典的研究例子为蓝本,介绍VBNC检测的各种方法 难点在于理解检测的理论原理和实际操作之间的差距 使学生了解VBNC的检测的方法及其特征,在必要的时候能选择使用。 第六章微生物分离和培养技术 第一节微生物的分离 介绍可培养以及难培养的微生物的分离方法,着重介绍菌根菌的分离 难点在于对于微生物的分离效果的理解 希望学生能掌握基本的微生物分离方法 第二节可培养微生物的培养 1 病原物的培养 2 非病原物的培养 介绍可培养微生物的培养方法,着重介绍病原菌培养时的注意事项 难点在于对于如何传达培养病原微生物时的临场感

生物传感器 检测限

生物传感器检测限 我做了一个生物传感器没有良好的线性范围怎么确定最低检测限呢?大侠们指导下吧 找出一段线性最好的范围,求出他的斜率,此为敏感度!用三倍的背景电流除以敏感度,即为检测极限~~~关键是你所说的没有良好的线性范围我没怎么明白~~ 就是浓度和信号没有线性关系啊以3倍的空白的标准偏差作为检测限可以吗?我是这么理解的,如果没有线性关系的话,很难保证信号是你的目标物引起的~~~ 这样子啊但是随浓度增高信号是变强的就是没有线性关系郁闷死我了 如果你多次重复实验都是这样的一个结果,而且你也确定你的实验没有问题的话,考虑一下能斯特关系,即信号与浓度的-logC之间可有线性关系,一般情况下,电流与浓度之间应该是线性关系,能斯特关系比较多的出现在开路电位与浓度的关系上。 背景电流应该怎样来求?不是太理解,谢谢! 我认为这是个好问题,当初自己在看文献的时候也产生过这样的疑问。希望论坛上能讨论更多这些研究细节的问题。线性范围和检测极限都是生物传感器重要的性能参数,对它们进行考察和分析在研究中是不可避免。其实也比较容易理解,如果有例子分析说明就好了。下面的图希望对你有帮助。 线性范围:

检测极限:

回归方程形式:y=a+b*x 请教一下:对于生物传感器,线性范围是否最好能有?是不是有的没有良好的线性范围?这样的话,检测下限就不能算出来了? 我看到有的用3σ计算检测限,用的是空白值的标准偏差。 谢谢! 不是所有的生物传感器都能得到线性的回归方程。但酶传感器一般是这样的,是由酶催化反应和电化学测试方法决定的。对于DNA传感器,待测物浓度和电流值通常不成线性关系,也就不能简单地线性拟合。但检测局限都是能确定的。也是根据公式Y-Yb=Sb。 3σ中的σ也即上贴公式中的Sb,就是空白值的标准偏差,通过测n次空白值后得到。只是在具体求值的时候,可以用标准偏差S代替,也有书上讲用回归标准偏差代替。

无菌检查和微生物限度检查操作规范

无菌检查和微生物限度检查操作规范 (中国药品生物制品检定所) 一、无菌室的要求: 无菌室是无菌检查、微生物限度检查的重要设备,面积不小于6平米,高度2.4-2.8m为宜。建筑材料要光洁,不吸潮,无凸起,耐腐蚀,易清洗。无菌室内部应六面光滑,无缝隙,里面连接处应呈凹凸形,不留死角。操作间和缓冲间的门不应直对,缓冲间两个。 无菌室内采光面积要大,照明灯应镶嵌在天花板内,光照应分布均匀,光照度不低于300lux,电源开关应设在室外。 无菌室、缓冲间和操作间均应设置紫外线杀菌灯,每立方米2-2.5瓦,距实验台高度不超过1米,并应定期检查辐射强度,距1米处应不低于70微瓦/平方厘米,无菌室内应安装空气除菌过滤层流装置及调温装置,控制温度18-26℃,相对湿度40%-60%,操作间或净化工作台的洁净空气应保持与相临环境形成正压,不低于4.9帕。操作区洁净度100级,操作间洁净度10000级,洁净度定期检查。 无菌室及缓冲间不得存放其他杂物,如培养箱。 用消毒液清洁无菌室操作台面,开启无菌室紫外灯和层流空气过滤30分钟以上。无菌室的无菌程度,常用的沉降菌测定方法为:取营养肉汤琼脂平板3个,置无菌室的操作区台面左、中、右位置上,开盖暴露30分钟,在30-35℃培养2天后,计算菌落数。用于无菌检查的无菌室或微生物限度检查的无菌室,细菌总数应小于3个,浮游菌每立方米应小于5个,否则,不能用于无菌检查和微生物限度检查。 二、培养基的准备 1、培养基的制备: 配制培养基的蒸馏水或去离子水应符合规定。再称取需气菌、厌气菌培养基、真菌培养基的干燥培养基,加水溶化后,调节PH值,使灭菌后需气菌、厌气菌培养基的PH值为7.0-7.3,真菌培养基的PH值为6.2-6.6,分装、盖塞、灭菌,待用。 2、培养基灵敏度试验: 培养基是无菌试验的基准物质,关系到无菌试验结果的科学、准确、可信度,因此,培养基灵敏度试验是无菌试验的重要组成部分。只有使用灵敏度试验合格的培养基,才能保证无菌试验结果准确、可靠。 培养基灵敏度试验操作如下:取藤黄微球菌、生孢梭菌、白色念珠菌的新鲜培养液,分别10倍递增稀释,制成每ml 含10-100个菌,并作菌落记数。将制备好的菌液分别加至需气菌、厌气菌培养基、真菌培养基各3管。至规定温度培养5天,每株菌接种的培养基不少于2管生长,则改培养基的灵敏度试验合格。 3、培养基用前的检查: (1)无菌检查:各种培养基在规定温度培养3天,应无菌生长。 (2)新鲜程度检查:需气菌、厌气菌培养基氧化层的颜色用前不能超过1/5,否则,不能使用。应煮沸去氧,只限加热一次。 4、培养基的保存时限: 配制好的无菌试验用培养基在2周内用完。 三、菌种复苏和保藏 1、菌种复苏: 先将冻干菌种的封口端用砂轮刻痕,在刻痕处过火焰数次,用无菌湿棉球炸裂后打开,然后,加入0.3-0.4ml稀释液于菌种管底部,将菌种稀释、混匀,并吸出菌液,接种于适宜的培养基。培养时间和温度根据不同的菌种而定。仔细检查菌种的有关特性,如无发现异常,即可传代、使用。 2、药品微生物用的菌种传代方法: 取复苏好的菌种一支,接种于规定的培养基数管,培养后,置冰箱中保藏。取出使用的菌种,经一段时间后即可废弃。 为防止微生物突变,菌种应尽量避免不必要的接种和传代。

第一篇 微生物检验基本技术

第一章细菌检验基本技术 一、形态学检查 意义:1.为后续的进一步检验提供参考依据 2.迅速了解标本中有无细菌及菌量的大致情况 3.对少数具有典型形态特征的细菌可以做出初步诊断,为临床选用抗菌 药物治疗起重要的提示作用。 分为:染色标本和不染色标本的检查 1、不染色标本的检查:用于观察细菌的动力及运动情况。常用方法有压滴法和悬滴法。 2、染色标本检查:检查的内容:对标本合格与否进行评价;了解标本有无细菌及大致菌量;根据细菌形态、染色性质等对病原菌初步识别分类,决定进一步的生化反应鉴定血清学鉴定、并为临床选择用药提供帮助。 常用染色方法有:革兰染色(常用)、抗酸染色(结核病、麻风病)、荧光染色(结核、麻风、白喉、痢疾)、负染色(墨汁负染色法用于新型隐球菌检查)、特殊染色(鞭毛染色、荚膜染色、异染颗粒(白喉))。 二、培养与分离技术(关键) 目的:鉴定细菌的种类和保存菌种,为进一步确定细菌的致病性、药物敏感性提供依据。 牛肉膏无糖,可作为肠道细菌鉴别培养基的基础成分。 流感嗜血杆菌需要X因子和V因子。 理想的凝固物质具有的特性:本身不被细菌利用;在微生物生长温度范围内保持固体状态,凝固点的温度对微生物无害;不因消毒灭菌而破坏,透明度好,黏着力强。(琼脂最合适) 半固体培养基琼脂含量 0.3%~0.5%;固体培养基1.5%~2.0%。 培养基质量检验:1、无菌试验:将灭菌后的培养基置35℃温箱培养过夜,判定是否灭菌合格。2、效果检验:按不同的培养要求,接种相应菌种(符合要求的标准菌种),观察细菌的生长、菌落形态、色素、溶血及生化反应等特征,判断培养基是否符合要求。 制备好的培养基存放于冷暗处或4℃冰箱,一般不超过七天,如果用塑料袋密封。保存期可延长,但至多两周。 专性需氧:结核分枝杆菌、霍乱弧菌 微需氧菌(5%氧气、10%二氧化碳、85%氮气):空肠弯曲菌,幽门螺杆菌兼性厌氧菌:大多数病原菌 专性厌氧菌:破伤风梭菌、脆弱拟杆菌 二氧化碳培养(5%~10%二氧化碳):淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、布鲁菌 菌落是单个细菌在培养基上分裂繁殖而成的肉眼可见的细菌集落。 菌苔是由众多菌落连接而成的细菌群落。 三、生物化学鉴定技术 1、碳水化合物代谢试验 2、蛋白质和氨基酸代谢试验 3、碳源利用试验 4、呼吸酶类试验 5、其他

什么是微生物检验

什么是食品微生物检验 吴崇食质12级1班学号:20122629 微生物是个体难以用肉眼观察的一切微小生物之统称。微生物包括细菌、病毒、真菌、和少数藻类等。(但有些微生物是肉眼可以看见的,像属于真菌的蘑菇、灵芝等。)病毒是一类由核酸和蛋白质等少数几种成分组成的“非细胞生物”,但是它的生存必须依赖于活细胞。根据存在的不同环境分为空间微生物、海洋微生物等,按照细胞机构分类分为原核微生物和真核微生物。 微生物对人类最重要的影响之一是导致传染病的流行。在人类疾病中有50%是由病毒引起。微生物导致人类疾病的历史,也就是人类与之不断斗争的历史。在疾病的预防和治疗方面,人类取得了长足的进展,但是新现和再现的微生物感染还是不断发生,像大量的病毒性疾病一直缺乏有效的治疗药物。一些疾病的致病机制并不清楚。大量的广谱抗生素的滥用造成了强大的选择压力,使许多菌株发生变异,导致耐药性的产生,人类健康受到新的威胁。一些分节段的病毒之间可以通过重组或重配发生变异,最典型的例子就是流行性感冒病毒。每次流感大流行流感病毒都与前次导致感染的株型发生了变异,这种快速的变异给疫苗的设计和治疗造成了很大的障碍。而耐药性结核杆菌的出现使原本已近控制住的结核感染又在世界范围内猖獗起来。 微生物千姿百态,有些是腐败性的,即引起食品气味和组织结构发生不良变化。当然有些微生物是有益的,它们可用来生产如奶酪,面包,泡菜,啤酒和葡萄酒。微生物非常小,必须通过显微镜放大约1000 倍才能看到。比如中等大小的细菌,1000个叠加在一起只有句号那么大。想像一下一滴牛奶,每毫升腐败的牛奶中约有5千万个细菌,或者讲每夸脱牛奶中细菌总数约为50亿。也就是一滴牛奶中可能含有50 亿个细菌。 微生物能够致病,能够造成食品、布匹、皮革等发霉腐烂,但微生物也有有益的一面。最早是弗莱明从青霉菌抑制其它细菌的生长中发现了青霉素,这对医药界来讲是一个划时代的发现。后来大量的抗生素从放线菌等的代谢产物中筛选出来。抗生素的使用在第二次世界大战中挽救了无数人的生命。一些微生物被广

微生物限度检查方法验证方案

微生物限度检查方法验证方案 1.目的: 为确认所采用的方法适合于该药品的微生物限度检查,包括细菌、霉菌及酵母菌计数和控制菌检查,特制定本验证方案,通过比较试验菌的恢复生长结果,来评价整个检验方法的准确性、有效性和重现性,以确认供试品在该实验条件下无抑菌活性或其抑菌活性可忽略不计,所采用的方法适用于该品种的微生物限度检查。 验证过程应严格按照本方案规定的内容进行,若因特殊原因确需变更时,应填写验证方案修改申请并报验证领导小组批准 2.范围: 本验证方案适用于微生物限度检查方法的验证。 3.规范性引用文件: 根据《中国药典》2010年版二部附录Ⅺ J 微生物限度检查法的要求,由于某些供试品具有抗菌活性,在建立微生物检查方法或产品的组分发生改变或原检查法的检验条件发生改变时,可能影响检验结果的准确性,必须对供试品的抑菌活性及测定方法的可靠性进行验证。 4.验证实施: 4.4.1 试验前的准备: 4.4.1.1 试验用具的准备:将试验需用的试管、刻度吸管、薄膜过滤器、滤膜(孔径0.22um、直径50mm)、平皿、空三角瓶、称量纸等,用牛皮纸包扎好后,放于湿热灭菌器中,在121℃,灭菌30 min,在3天内使用。 4.4.1.2试验用培养基的制备:取适用性检查合格的营养琼脂培养基、玫瑰红钠琼脂培养基、营养肉汤培养基、胆盐乳糖培养基(BL)、改良马丁琼脂培养基、4-甲基伞形酮葡糖苷酸培养基(MUG)等脱水培养基,按照相应的配制说明,用纯化水配制、分装后,在2小时内,放于湿热灭菌器中,在121℃,灭菌15 min,在3周内使用。 4.4.1.3试验用稀释剂/缓冲液、冲洗液的制备:取在有效期内的试剂,按照相应的配制方法,配制pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液、0.9%无菌氯化钠溶液、0.05%(ml/ml)聚山梨酯80的0.9%无菌氯化钠溶液等,用纯化水配制,加热使溶,过滤,分装,在121℃,灭菌15 min,在3周内使用。 4.4.2 试验菌的制备和稀释:

常见的微生物检测办法

精心整理 摘要: 微生物的检测,无论在理论研究还是在生产实践中都具有重要的意义,本文分生长量测定法,微生物计数法,生理指标法和商业化快速微生物检测简要介绍了利用微生物重量,体积,大小,生理代谢物等指标的二十余种常用的检测方法,简要介绍了这些方法的原理,应用范围和优缺点。 体积,是其在内外各种环境因素相互作用下的综合反映。因此生长繁殖情况就可作为研究各种生理生化和遗传等问题的重要指标,同时,微生物在生产实践上的各种应用或是对致病,霉腐微生物的防治都和他们的生长抑制紧密相关。所以有必要介绍一下微生物生长情况的检测方法。既然生长意味着原生质含量的增加,所以测定的方法也都直接或间接的以次为根据,而测定繁殖则都要建立在计数这一基础上。微生物生长的衡量,可以从其重

量,体积,密度,浓度,做指标来进行衡量。 生长量测定法 体积测量法:又称测菌丝浓度法。 取一 5为( 可用离心或过滤法测定。一般干重为湿重的10-20%。在离心法中,将一定体积待测培养液倒入离心管中,设定一定的离心时间和转速,进行离心,并用清水离心洗涤1-5次,进行干燥。干燥可用烘箱在105℃或100℃下烘干,或采用红外线烘干,也可在80℃或40℃下真空干燥,干燥后称重。如用过滤法,丝状真菌可用滤纸过滤,细菌可用醋酸纤维膜等滤膜过滤,过滤后用少量水洗涤,在40℃下进行真空干燥。称干重发法较为烦琐,通常获取的微生物产品为菌体时,常采用这种方法,如活性干酵母

(activity dry yeast,ADY),一些以微生物菌体为活性物质的饲料和肥料。 比浊法: 微生物的生长引起培养物混浊度的增高。通过紫外分光光度计测定一定波长下的吸 公司的紫外 OD600 或数法 血球计数板法: 血球计数板是一种有特别结构刻度和厚度的厚玻璃片,玻片上有四条沟和两条嵴,

食品微生物检测方法简易流程

各检测项目简易步骤 1、4789.2-2016菌总:PCA36℃48h 2、4789.3-2003大肠:LST管 36℃24h—→EMB 36℃24h 3、4789.3-2016大肠:(法一)LST管 36℃24h-48h—→BGLB管 36℃48h (法二)VRBA 36℃18h-24h—→BGLB管 36℃24h~48h 4、4789.4-2016沙门:25g+225 BPW 36℃8h-18h→1+10TTB 42℃18-24h→BS 36℃40-48h→生化鉴定18-24-48h→多价血清鉴定→报告。 1+10SC 36℃18-24h HE/XLD 36℃18-24h 5、4789.5-2012志贺:25g+225 SHI 41.5℃厌氧16-20h—→XLD、MAC/贺显 36℃20-48h—→TSI、NA斜面36℃20-24h—→生化鉴定、血清学分型。 6、4789.10-2016金葡: 定性:25g+225 7.5% 36℃18-24h—→BP36℃24-48h(血平板18-24h)—→镜检,BHI、NA36℃18-24h—→血浆凝固酶试验6h—报告。 平板:0.3 0.3 0.4 涂布BP平板 36℃24-48h—→计数,血平板36℃18-24h,镜检,BHI、NA36℃18-24h—→血浆凝固酶试验6h—报告。 MPN:3梯度各3个1mL于7.5%管36℃18-24h—→划线BP 36℃24-48h—→鉴定—→查MPN表,报告。 7、4789.15-2016霉菌酵母:(法一) RBA 28℃ 5d 8、4789.26-2013商业无菌:36℃、冰箱2-5℃ 10d 9、4789.30-2016单增: 定性:25g+225 LB1 30℃24h→0.1+10LB2 30℃24h→李显、PALCAM 36℃24-48h→木糖、鼠李糖36℃24h,TSA-YE 36℃18-24h→镜检,动力试验,生化鉴定24-48h 平板:(稀释液LPB或LB)0.3 0.3 0.4 李显36℃24-48h—→计数,木糖、鼠李糖36℃24h,TSA-YE 36℃18-24h→镜检,动力试验,生化鉴定24-48h MPN:25g+225LB 1(稀释液LPB或LB)1+10LB 1 管 30℃24h—→0.1+10LB 2 30℃24h—→各管1环划线李显 36℃24-48h—→鉴定,查MPN表报告。 10、4789.35-2016乳酸:双歧+乳杆:MRS 36℃厌氧72h。 嗜热+乳杆:MC 36℃72h+MRS 36℃厌氧72h。 双歧+嗜热:改良MRS 36℃厌氧72h + MC 36℃72h

微生物限度检查办法验证方法

微生物限度检查方法验证方案 1. 目的: 为确认所采用的方法适合于该药品的微生物限度检查,包括细菌、霉菌及酵母菌计数和控制菌检查,特制定本验证方案,通过比较试验菌的恢复生长结果,来评价整个检验方法的准确性、有效性和重现性,以确认供试品在该实验条件下无抑菌活性或其抑菌活性可忽略不计,所采用的方法适用于该品种的微生物限度检查。 验证过程应严格按照本方案规定的内容进行,若因特殊原因确需变更时,应填写验证方案修改申请并报验证领导小组批准 2. 范围: 本验证方案适用于微生物限度检查方法的验证。 3. 规范性引用文件: 根据《中国药典》2010 年版二部附录ⅪJ 微生物限度检查法的要求,由于某些供试品具有抗菌活性,在建立微生物检查方法或产品的组分发生改变或原检查法的检验条件发生改变时,可能影响检验结果的准确性,必须对供试品的抑菌活性及测定方法的可靠性进行验证。 4. 验证实施: 4.4.1 试验前的准备: 4.4.1.1 试验用具的准备:将试验需用的试管、刻度吸管、薄膜过滤器、滤膜(孔径 0.22um、直径50mm)、平皿、空三角瓶、称量纸等,用牛皮纸包扎好后,放于湿热灭菌器中,在121℃,灭菌30 min,在3 天内使用。 4.4.1.2 试验用培养基的制备:取适用性检查合格的营养琼脂培养基、玫瑰红钠琼脂培养基、营养肉汤培养基、胆盐乳糖培养基(BL)、改良马丁琼脂培养基、4- 甲基伞形酮葡糖苷酸培养基(MUG)等脱水培养基,按照相应的配制说明,用纯化水配制、分装后,在 2 小时内,放于湿热灭 菌器中,在121℃,灭菌15 min,在3 周内使用。 4.4.1.3 试验用稀释剂/ 缓冲液、冲洗液的制备:取在有效期内的试剂,按照相应的配制方法, 配制pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液、0.9%无菌氯化钠溶液、0.05%(ml/ml )聚山梨酯80的 0.9%无菌氯化钠溶液等,用纯化水配制,加热使溶,过滤,分装,在121℃,灭菌15 min,在3

微生物检测手段及注意事项

微生物检测手段及注意事项

微生物检测手段及注意事项 微生物的检测,无论在理论研究还是在生产实践中都具有重要的意义,本文对生长量测定法、微生物计数法、生理指标法和商业化快速微生物检测简要介绍了利用微生物重量,体积,大小,生理代谢物等指标的二十余种常用的检测方法,简要介绍了这些方法的原理,应用范围和优缺点。 一个微生物细胞在合适的外界条件下,不断的吸收营养物质,并按自己的代谢方式进行新陈代谢。如果同化作用的速度超过了异化作用,则其原生质的总量(重量,体积,大小)就不断增加,于是出现了个体的生长现象。如果这是一种平衡生长,即各细胞组分是按恰当的比例增长时,则达到一定程度后就会发生繁殖,从而引起个体数目的增加,这时,原有的个体已经发展成一个群体。随着群体中各个个体的进一步生长,就引起了这一群体的生长,这可从其体积、重量、密度或浓度作指标来衡量。微生物的生长不同于其他生物的生长,微生物的个体生长在科研上有一定困难,通常情况下也没有实际意义。微生物是以量取胜的,因此,微生物的生长通常指群体的扩增。微生物的生长繁殖是其在内外各种环境因素相互作用下的综合反映。因此生长繁殖情况就可作为研究各种生理生化和遗传等问题的重要指标,同时,微生物在生产实践上的各种应用或是对致病,霉腐微生物的防治都和他们的生长抑制紧密相关。所以有必要介绍一下微生物生长情况的检测方法。既然生长意味着原生质含量的增加,所以测定的方法也都直接或间接的以次为根据,而

测定繁殖则都要建立在计数这一基础上。微生物生长的衡量,可以从其重量,体积,密度,浓度,做指标来进行衡量。 1. 微生物计量法 1.1 体积测量法 又称测菌丝浓度法,通过测定一定体积培养液中所含菌丝的量来反映微生物的生长状况。方法是,取一定量的待测培养液(如10 mL)放在有刻度的离心管中,设定一定的离心时间(如5 min)和转速(如5000 rpm),离心后,倒出上清夜,测出上清夜体积为v,则菌丝浓度为(10-v)/10。菌丝浓度测定法是大规模工业发酵生产上微生物生长的一个重要监测指标。这种方法比较粗放,简便,快速,但需要设定一致的处理条件,否则偏差很大,由于离心沉淀物中夹杂有一些固体营养物,结果会有一定偏差。 称干重法 可用离心或过滤法测定。一般干重为湿重的10~20%。在离心法中,将一定体积待测培养液倒入离心管中,设定一定的离心时间和转速,进行离心,并用清水离心洗涤1~5次,进行干燥。干燥可用烘箱在105 ℃或100 ℃下烘干,或采用红外线烘干,也可在80 ℃或40 ℃下真空干燥,干燥后称重。如用过滤法,丝状真菌可用滤纸过滤,细菌可用醋酸纤维膜等滤膜过滤,过滤后用少量水洗涤,在40 ℃下进行真空干燥。称干重发法较为烦琐,通常获取的微生物产品为菌体时,常采用这种方法,如活性干酵母(Activity Dry Yeast, ADY),一些以微生物菌体为活性物质的饲料和肥料。

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