分子生物学实验室教学教材
分子生物学实验教案新部编本,大纲,目录
教师学科教案[ 20 – 20 学年度第__学期]任教学科：_____________任教年级：_____________任教老师：_____________xx市实验学校分子生物学实验室实验目录实验1 质粒DNA的提取、酶切与电泳实验2 大肠杆菌感受态细胞的制备与质粒DNA分子转化实验3 聚合酶链式反应扩增DNA片段实验4 植物基因组DNA提取及电泳实验5 植物RNA提取及电泳实验6 RT-PCR技术实验7 外源基因在原核细胞中的表达及分析实验8 DNA重组体的构建与筛选《分子生物学实验》教学大纲英文名称： Molecular Biology Experiments学分：1 学时：32教学对象：生物工程专业、生物科学专业、生物技术专业教学目的：在开设的理论课程的基础上，结合实验课程的教学，使学生能较全面系统的掌握分子生物学的基本操作，拓宽专业知识面，加深对专业知识的理解，强化动手能力。
基本要求：了解分子生物学的实验操作原理，掌握有关实验仪器的使用方法。
实验内容：实验1. 质粒DNA的提取、酶切与电泳（8 学时）基本要求:通过学习碱变性抽提法对大肠杆菌中的质粒的抽提，掌握质粒DNA 的小量制备方法，了解碱裂解法制备质粒DNA 的原理。
进一步了解限制性内切酶的特性及酶切反应过程，掌握DNA 的酶切技术。
重点:掌握质粒DNA 的小量制备方法，了解碱裂解法制备质粒DNA 的原理。
进一步了解限制性内切酶的特性，掌握DNA 的酶切技术。
难点:掌握质粒DNA 的小量制备方法及DNA 的酶切技术。
实验2. 大肠杆菌感受态细胞的制备与质粒DNA分子转化（4 学时）基本要求:了解细菌基因组DNA 的提取的目的，原理，掌握细菌基因组DNA 的提取的实验步骤及操作方法重点:掌握细菌基因组DNA 的提取的实验步骤及操作方法难点:掌握细菌基因组DNA 的提取的实验步骤及操作方法实验3. 聚合酶链式反应扩增DNA片段（4 学时）基本要求:了解大肠杆菌感受态细胞的制备原理及转化反应的目的，应用范围及操作过程，掌握重组DNA 质粒转化大肠杆菌的操作技术。
2024年《分子生物学实验》课程教学大纲
《分子生物学试验》课程教学大纲课程编号： 05030适用专业：生物工程与生物技术试验学时数：36学时试验学分：1教材：主要参考书：《分子生物学试验指导》徐庆华等成栋学院立项教材 2024一、课程说明《分子生物学试验》以介绍分子生物学中的试验方法、试验手段和培育学生试验操作技能为其主要内容。
须要以分子生物学基本理论为基础，其教学目的是为了提高学生在分子生物学技术方面的动手实力，培育学生分析问题和解决问题的实力。
通过试验，要求学生能在原有的相关理论学问基础上较全面和深化理解分子生物学基本原理，驾驭基本的分子生物学试验方法和技巧，初步具备肯定的试验设计实力，以求为以后的学习和科研工作打下良好和扎实的基础。
本试验课在方法上力求经典，试验内容涉及了质粒DNA的提取及限制性内切酶酶切质粒分析；大肠杆菌感受态细胞的制备及质粒DNA转化大肠杆菌；应用多聚酶链式反应（PCR）体外基因扩增及产物鉴定；SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质分子量等分子生物学的基本理论。
二、学时安排三、教学内容及教学基本要求试验一碱裂解法小量提取质粒DNA及琼脂糖凝胶电泳检测一、试验特点试验类型：综合试验类别：专业基础安排学时：6 每组人数：2二、试验目的1、驾驭碱裂解法小量提取质粒DNA和试剂盒提取质粒DNA的原理和方法。
2、驾驭琼脂糖凝胶的制备及外源DNA的检测原理。
3、了解质粒DNA的粗略定量方法。
三、试验内容提要1、将单菌落接种于3m1含相应抗生素的LB培育基中，37℃摇菌过夜；2、12,000rpm离心30sec，收集菌体；3、加200u1溶液I(含RNaseA 100ug/ml )，振荡悬浮菌体；4、加200ul新配制的溶液II，颠倒混匀；5、溶液澄清后马上加入预冷的200u1溶液III混匀后冰上放置5~10 min；6、4℃、12,000rpm离心15min，取上清，加0.7倍异丙醇混匀，室温静置5min；7、12,000rpm离心10min，70%乙醇洗涤沉淀，抽干后溶于适量水或TE，-20℃保存备用。
分子生物学实验教学教案
分子生物学实验教学教案第一章：DNA的提取与纯化1.1 实验目的掌握DNA的提取与纯化原理学会使用DNA提取试剂盒进行DNA提取了解DNA的质量和浓度的测定方法1.2 实验原理DNA的溶解性与不溶性PCR扩增原理DNA提取试剂盒的使用方法1.3 实验材料动物细胞组织DNA提取试剂盒氯化钠溶液酚-氯仿溶液异丙醇溶液紫外线检测仪1.4 实验步骤1.4.1 DNA的提取1.4.2 DNA的纯化1.4.3 DNA的定量1.4.4 琼脂糖凝胶电泳分析1.5 实验结果分析分析DNA的质量和浓度观察DNA在琼脂糖凝胶上的迁移情况第二章：PCR扩增目的基因2.1 实验目的掌握PCR扩增原理及操作步骤学会使用PCR仪器进行扩增了解PCR扩增产物的检测方法2.2 实验原理PCR扩增原理PCR反应体系组成PCR扩增产物的检测方法2.3 实验材料模板DNAPCR试剂盒引物脱氧核糖核苷酸热稳定DNA聚合酶琼脂糖凝胶紫外线检测仪2.4 实验步骤2.4.1 PCR反应体系的准备2.4.2 PCR扩增2.4.3 PCR扩增产物的检测2.5 实验结果分析观察PCR扩增产物的迁移情况分析PCR扩增产物的质量和数量第三章：DNA琼脂糖凝胶电泳分析3.1 实验目的掌握DNA琼脂糖凝胶电泳分析原理及操作步骤学会使用琼脂糖凝胶电泳仪器了解DNA琼脂糖凝胶电泳的结果分析3.2 实验原理DNA琼脂糖凝胶电泳分析原理琼脂糖凝胶的制备DNA在琼脂糖凝胶上的迁移规律3.3 实验材料模板DNA琼脂糖凝胶核酸染料电泳缓冲液紫外灯3.4 实验步骤3.4.1 琼脂糖凝胶的制备3.4.3 琼脂糖凝胶电泳3.5 实验结果分析观察DNA在琼脂糖凝胶上的迁移情况分析DNA的质量和数量第四章：DNA序列测定4.1 实验目的掌握DNA序列测定原理及操作步骤学会使用DNA序列测定仪器了解DNA序列测定结果的分析方法4.2 实验原理DNA序列测定原理Sanger测序方法DNA序列测定仪的使用方法4.3 实验材料模板DNADNA测序试剂盒测序酶测序缓冲液测序仪4.4 实验步骤4.4.1 DNA模板的制备4.4.3 测序产物的分析4.5 实验结果分析分析DNA序列测定结果比对测序结果与参考序列的一致性第五章：基因克隆与表达5.1 实验目的掌握基因克隆原理及操作步骤学会使用克隆载体和克隆方法了解基因表达载体构建和表达方法5.2 实验原理基因克隆原理克隆载体的选择基因表达载体构建方法基因表达方法5.3 实验材料模板DNA克隆载体限制性内切酶连接酶转化试剂宿主细胞培养基5.4 实验步骤5.4.1 基因克隆5.4.2 基因表达载体构建5.4.3 基因转染5.4.第六章：RNA的提取与纯化6.1 实验目的掌握RNA的提取与纯化原理学会使用RNA提取试剂盒进行RNA提取了解RNA的质量和浓度的测定方法6.2 实验原理RNA的溶解性与不溶性逆转录酶的作用原理RNA提取试剂盒的使用方法6.3 实验材料动物细胞组织RNA提取试剂盒氯化钠溶液酚-氯仿溶液异丙醇溶液紫外线检测仪6.4 实验步骤6.4.1 RNA的提取6.4.2 RNA的纯化6.4.3 RNA的定量6.4.4 琼脂糖凝胶电泳分析6.5 实验结果分析分析RNA的质量和浓度观察RNA在琼脂糖凝胶上的迁移情况第七章：逆转录酶实验7.1 实验目的掌握逆转录酶原理及操作步骤学会使用逆转录酶进行cDNA合成了解逆转录酶实验结果的分析方法7.2 实验原理逆转录酶原理cDNA合成方法逆转录酶实验结果分析7.3 实验材料提取的RNA逆转录酶试剂盒引物dNTPs逆转录酶缓冲液紫外线检测仪7.4 实验步骤7.4.1 cDNA的合成7.4.2 逆转录酶反应体系的优化7.4.3 逆转录酶产物的分析7.5 实验结果分析分析cDNA的质量和浓度观察逆转录酶产物的迁移情况第八章：Western Blotting实验8.1 实验目的掌握Western Blotting原理及操作步骤学会使用转膜仪和显影设备了解Western Blotting结果的分析方法8.2 实验原理Western Blotting原理蛋白转移方法免疫检测方法8.3 实验材料提取的蛋白转膜试剂抗体标记二抗显影液X光片8.4 实验步骤8.4.1 蛋白的转移8.4.2 抗体孵育8.4.3 标记二抗的添加8.4.4 X光片显影8.5 实验结果分析分析蛋白条带的形成比对实验结果与预期的一致性第九章：实时荧光定量PCR实验9.1 实验目的掌握实时荧光定量PCR原理及操作步骤学会使用实时荧光定量PCR仪器了解实时荧光定量PCR结果的分析方法9.2 实验原理实时荧光定量PCR原理荧光染料的选择扩增循环的监控9.3 实验材料提取的DNA或cDNA实时荧光定量PCR试剂盒引物荧光染料实时荧光定量PCR仪器9.4 实验步骤9.4.1 反应体系的准备9.4.2 实时荧光定量PCR扩增9.4.3 实时荧光定量PCR产物的分析9.5 实验结果分析分析实时荧光定量PCR扩增曲线计算目标基因的表达量第十章：蛋白质纯化与分析10.1 实验目的掌握蛋白质纯化原理及操作步骤学会使用蛋白质纯化仪器了解蛋白质分析的方法10.2 实验原理蛋白质纯化原理离子交换色谱凝胶过滤色谱SDS-PAGE分析原理10.3 实验材料蛋白质纯化柱洗脱液染色剂SDS-PAGE凝胶10.4 实验步骤10.4.1 蛋白质的纯化10.4.2 蛋白质的分析10.4.3 SDS-PAGE电泳10.5 实验结果分析分析蛋白质纯化曲线观察蛋白质在S第十一章：蛋白质结晶与筛选11.1 实验目的掌握蛋白质结晶原理及操作步骤学会使用蛋白质结晶仪器了解蛋白质结晶筛选的方法11.2 实验原理蛋白质结晶原理结晶条件的筛选晶体生长的观察11.3 实验材料结晶试剂培养皿晶体观察显微镜结晶筛选仪器11.4 实验步骤11.4.1 蛋白质结晶条件的筛选11.4.2 结晶试验的进行11.4.3 晶体的观察与筛选11.5 实验结果分析分析结晶条件的适宜性观察晶体的形态和质量第十二章：X射线晶体学分析12.1 实验目的掌握X射线晶体学原理及操作步骤学会使用X射线衍射仪了解X射线晶体学数据分析的方法12.2 实验原理X射线晶体学原理X射线衍射模式晶体结构分析的方法12.3 实验材料X射线衍射仪探测器晶体学数据分析软件12.4 实验步骤12.4.1 X射线衍射数据的收集12.4.2 晶体结构的重组12.4.3 晶体结构分析与验证12.5 实验结果分析分析X射线衍射数据观察晶体结构的特点和差异第十三章：生物信息学分析13.1 实验目的掌握生物信息学分析原理及操作步骤学会使用生物信息学软件了解生物信息学分析的方法13.2 实验原理生物信息学分析原理序列比对方法结构预测方法13.3 实验材料序列数据生物信息学软件计算机设备13.4 实验步骤13.4.1 序列比对分析13.4.2 结构预测与分析13.4.3 生物信息学结果的解读13.5 实验结果分析分析比对结果的相似性评估结构预测的准确性第十四章：高通量测序数据分析14.1 实验目的掌握高通量测序数据分析原理及操作步骤学会使用高通量测序数据分析软件了解高通量测序数据的应用方法14.2 实验原理高通量测序数据分析原理序列拼接方法表达量分析方法14.3 实验材料高通量测序数据高通量测序数据分析软件计算机设备14.4 实验步骤14.4.1 序列拼接与组装14.4.2 表达量分析与比较14.4.3 高通量测序数据的应用14.5 实验结果分析分析序列组装的质量评估表达量分析的可靠性第十五章：实验室安全与规范15.1 实验目的掌握实验室安全知识及操作规范学会使用实验室安全设备了解实验室安全事故的处理方法15.2 实验原理实验室安全原理实验室规范操作的重要性安全事故的处理方法15.3 实验材料实验室安全设备实验室规范操作指南安全事故应急预案15.4 实验步骤15.4.1 实验室安全设备的操作与使用15.4.2 实验室规范操作的实践15.4.3 安全事故的处理与演练15.5 实验结果分析分析实验室安全设备的有效性评估实验室规范操作的熟练程度总结安全事故的处理经验重点和难点解析重点：1. DNA、RNA的提取与纯化方法及其质量检测。
2024版《分子生物学》教案
培养学生运用分子生物学知识解决实际问 题的能力，如基因克隆、基因表达调控等。
培养学生的科学素养、创新思维和实验技 能，为未来的科研或职业生涯打下基础。
教材及参考书目
01
教材
02
参考书目
《分子生物学》（第X版），作者XXX，出版社：XXX出版社。
《基因VIII》，作者XXX，出版社：XXX出版社；《分子生物学精 要》，作者XXX，出版社：XXX出版社等。
单细胞测序技术
在肿瘤、发育生物学等领域的应用及挑 战。
表观遗传学
DNA甲基化、组蛋白修饰等表观遗传标 记的研究进展。
合成生物学
人工合成基因线路、细胞工厂等合成生 物学实践。
未来发展趋势预测
精准医疗
基于个体基因组的定制化医疗方案。
再生医学
利用干细胞和基因治疗等手段实现组织 再生和修复。
生物信息学
大数据和人工智能在分子生物学中的应 用。
子与反密码子的相互作用。
基因突变与修复机制
基因突变的类型与原因
列举基因突变的类型，包括碱基替换、插入和缺失等，并解释突变的原因，如环境因素、化 学因素和生物因素等。
DNA损伤与修复机制
介绍DNA损伤的类型，如碱基损伤、单链断裂和双链断裂等，并阐述细胞通过直接修复、切 除修复和重组修复等方式来修复DNA损伤。
应用领域
广泛应用于疾病发生发展机制、药物 作用机制、植物抗逆性等领域的研究。
蛋白质组学实验技术
蛋白质分离技术
包括双向电泳、液相色谱等，用于将复杂 蛋白质混合物分离成单个蛋白质或简单蛋 白质组分。
VS
蛋白质鉴定技术
如质谱技术，通过测量蛋白质的质量和电 荷比来鉴定蛋白质的种类和数量。
现代分子生物学实验教程
现代分子生物学实验技术教材目 录第一章 质粒DNA的分离、纯化和鉴定第二章 DNA酶切及凝胶电泳第三章 大肠杆菌感受态细胞的制备和转化第四章 RNA的提取和cDNA合成第五章 重组质粒的连接、转化及筛选第六章 基因组DNA的提取第七章 RFLP和RAPD技术第八章 聚合酶链式反应(PCR)扩增和扩增产物克隆第九章 分子杂交技术第一章 质粒DNA的分离、纯化和鉴定第一节 概 述把一个有用的目的DNA片段通过重组DNA技术,送进受体细胞中去进行繁殖和表达的工具叫载体(Vector)。
细菌质粒是重组DNA技术中常用的载体。
质粒(Plasmid)是一种染色体外的稳定遗传因子,大小从1-200kb不等,为双链、闭环的DNA 分子,并以超螺旋状态存在于宿主细胞中。
质粒主要发现于细菌、放线菌和真菌细胞中，它具有自主复制和转录能力,能在子代细胞中保持恒定的拷贝数,并表达所携带的遗传信息。
质粒的复制和转录要依赖于宿主细胞编码的某些酶和蛋白质，如离开宿主细胞则不能存活,而宿主即使没有它们也可以正常存活。
质粒的存在使宿主具有一些额外的特性,如对抗生素的抗性等。
F质粒(又称F因子或性质粒)、R质粒(抗药性因子)和Col质粒(产大肠杆菌素因子)等都是常见的天然质粒。
质粒在细胞内的复制一般有两种类型:紧密控制型(Stringent control)和松驰控制型(Relaxed control)。
前者只在细胞周期的一定阶段进行复制,当染色体不复制时,它也不能复制,通常每个细胞内只含有1个或几个质粒分子,如F因子。
后者的质粒在整个细胞周期中随时可以复制,在每个细胞中有许多拷贝,一般在20个以上,如Col E1质粒。
在使用蛋白质合成抑制剂-氯霉素时,细胞内蛋白质合成、染色体DNA复制和细胞分裂均受到抑制,紧密型质粒复制停止,而松驰型质粒继续复制,质粒拷贝数可由原来20多个扩增至1000-3000个,此时质粒DNA占总DNA的含量可由原来的2%增加至40-50%。
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运输功能
如载体蛋白，血红蛋白等 ，在生物体内运输各种物 质。
免疫功能
如抗体蛋白，参与生物体 的免疫应答。
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蛋白质的功能与调控
调节功能
如激素，生长因子等，调节生物 体的生长发育和代谢过程。
2024/2/29
储存功能
如植物种子中的贮藏蛋白，动物体 内的肌红蛋白等，储存能量和营养 物质。
个性化医疗
根据患者的基因信息，制定个 性化的治疗方案。
药物基因组学
预测患者对药物的反应和副作 用，指导合理用药。
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基因治疗的原理与应用
基因治疗的原理
通过导入正常基因或修复缺陷基因， 从而治疗由基因突变引起的疾病。
遗传性疾病的治疗
如视网膜色素变性、腺苷脱氨酶缺乏 症等。
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癌症治疗
利用基因编辑技术，修复或敲除癌症 相关基因，抑制肿瘤生长。
基因表达调控的层次
基因表达调控可分为转录前调控、转录水平调控、转录后调控和翻 译水平调控等多个层次。
基因表达调控的意义
基因表达调控对于生物体的生长发育、代谢、免疫应答等生理过程具 有重要意义，同时也是疾病发生发展的重要因素。
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原核生物的基因表达调控
1 2 3
原核生物基因表达调控的特点
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DNA损伤的修复机制
直接修复
针对某些简单的DNA损伤，如碱 基错配，可通过特定的酶直接进行 修复。
碱基切除修复
通过识别并切除受损碱基，再合成 新的DNA片段进行修复。
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核苷酸切除修复
针对较严重的DNA损伤，如嘧啶 二聚体，通过切除一段包含受损部
分子生物学实验教学教案
分子生物学实验教学教案一、实验课程名称：DNA提取与鉴定1. 实验目的：（1）掌握DNA的提取方法；（2）了解DNA的理化性质；（3）学会使用紫外光谱仪进行DNA含量测定。
2. 实验原理：本实验通过盐析法、酶处理等方法提取植物组织中的DNA，通过紫外光谱仪进行DNA含量测定。
3. 实验材料：新鲜植物组织、氯化钠、硫酸、蛋白酶K、无水乙醇、紫外光谱仪等。
4. 实验步骤：（1）植物组织研磨：取新鲜植物组织约0.5g，加入预冷的研钵中，加入适量氯化钠、硫酸和蛋白酶K，迅速研磨至匀浆；（3）DNA纯化：将沉淀的DNA用滤纸轻轻吸干，加入预冷的70%乙醇洗涤两次，弃去滤液，晾干DNA；（4）DNA溶解：将干燥的DNA加入适量的双蒸水，用玻璃棒搅拌至DNA完全溶解；（5）DNA含量测定：取适量DNA溶液置于紫外光谱仪中，测定DNA的吸光度，计算DNA的浓度和纯度。
5. 实验结果分析：通过紫外光谱仪测定DNA的吸光度，可以得到DNA的浓度和纯度。
DNA浓度越高，吸光度越大；DNA纯度越高，吸光度曲线越平坦。
二、实验课程名称：PCR扩增目的基因1. 实验目的：（1）掌握PCR扩增技术；（2）学会分析PCR产物；（3）了解基因克隆的基本原理。
2. 实验原理：PCR（聚合酶链反应）是一种在生物体外复制特定DNA的核酸合成技术。
通过高温变性、低温复性和中温延伸等步骤，使目的基因在短时间内大量扩增。
3. 实验材料：DNA模板、引物、dNTPs、Taq酶、PCR反应缓冲液、琼脂糖凝胶、DNA Marker 等。
4. 实验步骤：（1）DNA模板准备：将DNA模板稀释至适当浓度；（2）引物设计：根据目的基因序列设计引物，并合成；（3）PCR反应：将DNA模板、引物、dNTPs、Taq酶和PCR反应缓冲液混合，进行PCR扩增；（4）PCR产物分析：取PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳分析，观察目的基因的扩增情况；（5）的目的基因克隆：将PCR产物与克隆载体连接，转化大肠杆菌，筛选阳性克隆。
分子生物学实验教学教案
DNA溶解与 抽提
使用溶解液溶解 DNA并进行提
取
DNA分离与 沉淀
加入异丙醇使 DNA沉淀
实验结果分析
01、 观察DNA提取效果
观察DNA溶液的透明度和浓度
02、
讨论实验中可能出现的问题
可能受到污染影响
DNA溶解不彻底等
03、
总结DNA提取实验的意义
DNA提取实验有助于学生理解DNA结构和提取 技术
● 06
第六章 实验总结与展望
实验总结
分子生物学实验教学在培养学生实验能力方面具 有重要意义，并面临挑战。通过实验，学生能够 深入理解科学原理，提高实验操作技能。在教学 中，课程反馈是改进的重要途径，通过不断优化 教学方法和内容，提升教学效果。
学生实验能力的培养
理论知识与 实践结合
提高学生理论应 用能力
● 04
第四章 Western blot实验
Western blot技 术简介
Western blot是一种 常用的蛋白质检测技 术，通过将样品中的 蛋白质分离、转移、 检测，从而实现对特 定蛋白质的定量和鉴 定。实验中所需试剂 包括蛋白提取缓冲液、 S D S - PA G E 凝 胶 、 蛋白印迹膜等设备。 该技术在癌症、免疫 学等领域有着广泛的 应用。
● 02
第2章 DNA提取实验
DNA提取实验原 理介绍
DNA提取是指从生物 体细胞中分离DNA分 子的过程。实验所需 试剂包括细胞裂解缓 冲液、蛋白酶K和异 丙醇等。操作步骤包 括细胞破碎与溶解、 DNA分离与沉淀、 DNA溶解与抽提。
DNA提取实验操作步骤
细胞破碎与 溶解
使用细胞裂解缓 冲液裂解细胞膜
开发新药物的基因工程
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分子生物学实验室
精品资料
仅供学习与交流，如有侵权请联系网站删除谢谢2 分子生物学实验室（P2设计）
1. 功能：进行分
组织培养前实验室设计
标签：产经/公司实验室微生物洁净室设计说明通风柜实验台家俱
组织培养前实验室设计
在进行植物组织培养工作之前，首先应对工作中需要哪些最基本的设备条件有个全面的了解，以便因地制宜地利用现有房屋，或新建、改建实验室。
实验室的大小取决于工作的目的和规模。
以工厂化生产为目的，实验室规模太小，则会限制生产，影响效率。
在设计组织培养实验室时，应按组织培养程序来没计，避免某些环节倒排，引起日后工作混乱。
植物组织培养是在严格无菌的条件下进行的。
要做到无菌的条件，需要一定的设备、器材和用具，同时还需要人工控制温度、光照、湿度等培养条件。
实验室设计原则：保证无菌操作，达到工作方便，防止污染。
实验室组成：化学实验室、洗涤菌室、无菌操作室（接种室）、培养室、细胞学实验室、其他小型仪器设备。
1) 化学实验室（准备室）：完成所使用的各种药品的贮备、称量、溶解、配制、培养基分装等。
主要设备：药品柜、防尘橱（放置培养容器）、冰箱、天平、蒸馏水器、酸度计及常用的培养基配制用玻璃仪器.
2) 洗涤、灭菌室：完成各种器具的洗涤、干燥、保存、培养基的灭菌等。
主要设备：水池、操作台、高压灭菌锅、干燥灭菌器（如烘箱）等。
3) 无菌操作室（接种室）：主要用于植物材料的消毒、接种、培养物的转移、试管苗的继代、原生质体的制备以及一切需要进行无菌操作的技术程序。
主要设备：紫外光源、超净工作台、消毒器、酒精灯、接种器械（接种镊子、剪刀、解剖刀、接种针）等。
接种室宜小不宜大，一般7～8平米，要求地面、天花板及四壁尽可能密闭光滑，易于清洁和消毒。
配置拉动门，以减少开关门时的空气扰动。
接种室要求干爽安静，清洁明亮。
在适当位置吊装1～2盏紫外线灭菌灯，用以照射灭菌。
最好安装一小型空调，使室温可控，这样可使门窗紧闭，减少与外界空气对流。
接种室应设有缓冲问，面积1m2为宜。
进入无菌操作室前在此更衣换鞋，以减少进出时带入接种室杂菌。
缓冲间最好也安一盏紫外线灭菌灯，用以照射灭菌。
4) 培养室：培养室是将接种的材料进行培养生长的场所。
培养室的大小可根据需要培养架的大小、数目、及其他附属设备而定。
其设计以充分利用空间和节省能源为原则。