血平板
一）血平板
适于各类细菌的生长，一般细菌检验标本的分离，都应接种此平板。
1）原料普通琼脂培养基100ml 脱纤维血液5—10ml
（2）制法
①以无菌操作采取绵羊、牛、马或兔血置于灭菌并盛有玻璃珠的三角瓶内，边加血边不停地摇动玻璃珠直至血纤维分离为止。
②普通琼脂培养基加热溶解后，待冷至约55—60度时，以无菌操作按量加入血液，轻轻摇动均匀，不使产生泡沫，随即分装于灭菌的平皿或试管中，制成血液琼脂平板或血液琼脂斜面。
③用途：供某些病原菌的分离培养用；观察细菌的溶血现象，作鉴别用；常规移植继代和保存菌种。
取营养琼脂（PH7．6），加热使其溶解待冷至45-50℃，以灭菌操作于每100毫升营养琼脂加灭菌脱纤维羊血或兔血5-10毫升,轻轻摇匀，立即倾注于平板或分装试管，制成斜面备用。
（四）麦康凯平板
具中等强度选择性，抑菌力略强，有少数革兰阴性菌不生长。在麦康凯平板上能否生长，是非发酵菌鉴定的一个依据。https://www.360docs.net/doc/727983092.html,
6.麦康凯培养基
（1）原料琼脂 1.5—2g 胆盐0.5g
蛋白胨2g 1％中性红溶液0.5ml
氯化钠0.5g 蒸馏水100ml
纯乳糖1g
（2）制法
①将琼脂加于50ml蒸馏水中，加热溶解作为甲液。
②另将蛋白胨、乳糖、氯化钠、胆盐置于50ml蒸馏水中，在水浴中加热溶解，作为乙液。
③将甲、乙两液混合矫正PH至7.4，然后用脱脂棉过滤。
④分装于三角瓶中，每瓶100ml，高压蒸气灭菌15min。
⑤待冷至65度时每100ml甲、乙液中加入1％中性红溶液0.5ml。
⑥摇匀后即可将其倾入无菌平皿内，制成平板待用。
⑦用途：分离沙门氏菌及志贺氏菌属细菌时用。
备注：此培养基可利用乳糖的发酵来鉴别肠道致病性革兰氏阴性细菌，此原理同S.S琼脂平板，但其对大肠杆菌的抑制作用没有S.S琼脂培养基强。
（五）SS琼脂
有较强的抑菌力，用于志贺菌和沙门菌的分离。因选择性过强，可影响检出率，所以，使用时最好加一种弱选择平板以配对互补。
哥伦比亚血琼脂基础说明书
哥伦比亚血琼脂基础培养基使用说明书 【产品名称】 通用名称：哥伦比亚血琼脂基础培养基 英文名称：Columbia Blood Agar Base Medium 【包装规格】 Φ90㎜和Φ70㎜，5块／包。 【预期用途】 本产品用于营养需求较高的细菌培养和保存菌种用，既适合革兰氏阳性菌生长也适合革兰氏阴性菌生 长。 【检验原理】 培养基（Medium）是指由人工方法配制而成的，专供微生物培养、分离、鉴别、研究和保存用的混合营养制品。培养基按用途分为基础培养基、增菌培养基、选择性培养基、鉴别培养基和厌氧培养基等，按原料来源分为天然培养基、半合成培养基和合成培养基。按形态分为液体培养基、流体培养基、半固体培养基和固体培养基等。 本产品是以人工的方法配制而成的，除基础培养基外另外还添加了脱纤维羊血，以增加营养性能，适 应有些细菌的特殊营养要求。 【主要组成成份】 哥伦比亚血琼脂基础培养基由脱纤维羊血、蛋白胨、氯化钠、牛肉浸粉、琼脂粉和玫瑰红酸等原料经配制、高压灭菌，至45℃加入动物血定量灌入一次性塑料培养基内而成。 【贮存条件及有效期】 2-8℃，避光保存，有效期3个月，用前复温。 【样本要求】 标本可以是液体也可以是固体，液体标本可以直接使用，固体标本需用适量无菌生理盐水溶解后，取溶液使用。根据浓度需要决定是否采用10倍稀释法进行稀释。 【检验方法】 用接种环或棉签以无菌方法取标本直接画线接种于培养基中，或无菌吸取0.1ml适当浓度的标本溶液用玻璃涂布棒均匀涂布于培养基中，置35~37℃温箱中培养。 【检验结果的解释】 大肠埃希氏菌生长良好，菌落为白色半透明；金黄色葡萄球菌产生β-溶血环，菌落呈金黄色；肺炎链球菌的周围产生α溶血。 【检验方法的局限性】 正确的标本采集及良好的细菌划线分离技术是检出细菌的基础，所检出细菌要经镜检、生化鉴定来确 认。 【注意事项】 1．该培养基仅用于体外诊断。
平板边界层实验报告
流体力学实验 平板边界层实验报告 班级 姓名 实验日期 指导教师 北京航空航天大学流体力学研究所
流体力学实验 平板边界层实验报告 一、实验目的 测定平板边界层内的流速分布，并比较层流边界层及紊流边界层的速度分布的差别。 二、实验设备 本实验使用的是一个二维开路闭口低速风洞，在该风洞实验段中装有两块平板，以分别测量层流及紊流边界层的速度分布。为测量速度分布，在平板板面上安装有总压排管及静压管。这些测压管分别用橡皮管连接到多管压力计上，通过测量多管压力计液柱高度推算出速度来，具体原理见后。为测出实验段风速，在实验段侧壁上装有风速管，风速管的总压孔及静压孔也分别用橡皮管连接于多管压力计上，装备情况见图1。 图1 三、实验原理 当气流流过平板时由于粘性作用使紧贴平板表面处的流速为零，离开板面速度就逐渐增大，最后达到相当于无粘时的气流速度。对平板来说，就等于来流速度了。由于空气粘性很小，只要来流速度不是很小时，流速变化大的区域只局限在靠近板面很薄的一层气流
内，这一薄层气流通常叫作边界层。人为地规定，自板面起，沿着它的法线方向，至达到99%无粘时的速度处的距离，称为边界层厚度δ。 不可压流场中，每一点处的总压P 0，等于该点处的静压和动压 1 2 2ρv 之和。 p p v 021 2=+ ρ 则 v p p = -20() ρ （1） 因此只需测出边界层内各点处的静压p ，总压p 0，就可计算出各点的速度来。但考虑到垂直平板方向的静压梯度等于零（即??p y /=0），我们只需在平板表面开一静压孔，所测的静压就等于该点所在的平板法线方向上各点的静压。要测边界层内的速度分布就只要测出沿平板法线上各点的总压即可。 p i 0──为各测点的总压。 p i ──为各测点的静压。 v i ──为各测点的速度。 γ ──为多管压力计所使用的液体重度（公斤/米3）。 ?h i ──为各测点总压管与静压管的液柱高度差。 ρ ──为空气的密度，实验时可依据当时室温及大气压强由表查出。 φ ──为多管压力计的倾斜角。 根据（1）式，边界层内各测点处的速度为 v h i i = 2 ρ γφ?sin （2） 通常边界层内的速度分布用无量纲的形式表示为 v v f y i i 1=()δ y i 为各测点至板面的高度，δ 为边界层厚度，v 1为边界层外边界上的速度，对平板 来说即为来流速度。 v 1可通过风速管的静压管和总压管在多管压力计上的液柱高度差?h 1，由下式算出： v h 112 =ρ γφ?sin （3） 由（2）式和（3）式，可得 v v h h i i 1 1 =?? （4）
三星平板电脑
三星平板电脑GT-P5110官网刷机（包）请备份 复制 GT-P5110_P5110XXBLH3-OTA-P5110XXALD6_PEO_257954742.zip， GT-P5110_P5110XXCLI1-OTA-P5110XXBLH3_FIXED.zip Superuser-3.1.3-arm-signed.zip 到外部SD卡 2、关机 3、先按住右键再按电源键进入到Download mode后，再按左键。 4、进入到Odin软件，点击PDA选择HOME_P5110UVSALD3_P5110XXALD6.tar.md5 文件后，START。完成后自动重启。 5、关机 6、先按住左键再按电源键进入到Recovery mode，选择SD卡上的GT-P5110_P5110XXBLH3-OTA-P5110XXALD6_PEO_257954742.zip文件后按电源键，完成后重启。 7、关机 8、先按住右键再按电源键进入到 Download mode 后，再按左键。 9、进入到Odin软件，点击PDA选择GT-P5110_ClockworkMod-Recovery_6.0.1.0.tar文件(不要選"F.Reset Time", 打開時有選的, 請改為不要)，把 Auto Reboot 和Reset Time 的勾拿掉（不选这两项，为的是不让平板自动重启，自动重启4.0.4会把 Recovery 覆盖成旧版，我就是在这卡了很久）后，START。 10、上一步完成后，直接按住左键再按电源键进入到Recovery mode， 选择SD卡上的GT-P5110_P5110XXCLI1-OTA-P5110XXBLH3_FIXED.zip 文件后按电源键。 11、上一步完成后，再选择SD卡上的Superuser-3.1.3-arm-signed.zip 文件后按电源键。 12、上一步完成后，选择factory reset/full wipe（双清）。 13、重启。
微生物培养基种类大全
摘要：1、营养琼脂（普通琼脂）成份：牛肉浸液（或其它浸液，消化液或肉膏汤）100毫升琼脂（视天气，琼脂质量而定）制法：将上物加热溶解，补足水，调ph至7．6，过滤分装121℃，高压灭菌15分钟。用途：作普通琼脂平皿。2、血琼脂平板（BA）制法：取营养琼脂（PH7．6），加热使其溶解待冷至45-50℃，以灭菌操作于每100毫升营养 1、营养琼脂（普通琼脂) 成份：牛肉浸液（或其它浸液，消化液或肉膏汤) 100毫升 琼脂（视天气，琼脂质量而定) 制法：将上物加热溶解，补足水，调ph至7．6，过滤分装121℃，高压灭菌15分钟。 用途：作普通琼脂平皿。 2、血琼脂平板（BA) 制法：取营养琼脂（PH7．6)，加热使其溶解待冷至45-50℃，以灭菌操作于每100毫升营养琼脂加灭菌脱纤维羊血或兔血5-10毫升,轻轻摇匀，立即倾注于平板或分装试管，制成斜面备用。 用途：1．一般棉拭子均接种此培养基。 2．尿液，脓液 3．分离细菌标本用。 3、基础培养基（肉膏汤BB) 成份：蛋白胨10克牛肉膏5克 氯化钠5克水1000毫升 制法：将以上各物称好，加水煮沸溶解，用1NNOH校正PH至7．6，过滤分瓶，121℃高压灭菌，20分钟备用。 用途：1 作耐药试验，增菌用分装小管。 2 作普通琼脂斜面。 4、血液培养基（大管肉汤培养基) 成份：1 新鲜牛肉浸液1000毫升 2 PABA（对氨基苯甲酸〔相当于10mg/毫升〕) 1g% 1毫升 3 MgSO 4 [相当于0．493/100毫升] 49．3% 1毫升 4 枸椽酸钠0．3g 制法：1 将1号，4号混合液，2号，3号液分装高压灭菌。
2 取灭菌1，4号混合液用无菌法加入PABA，MgSO4，再分管，行无菌试验三天方可使用。 用途：作血，骨髓培养用。 5、肠道杆菌培养基（伊红美兰琼脂) 成份：蛋白胨10克乳糖10克 氯化钠5克琼脂25（22)克 水1000毫升2%伊红溶液20毫升 0．5%美兰溶液20毫升 制法：将蛋白胨，氯化钠琼脂称好，加水1000毫升使溶解，校正PH7．4过滤，补足失水，加入2%伊红溶液20毫升，0．5%美兰溶液20毫升，（115℃高压20分钟)，冷却至50℃左右倾注平板，凝固后存冰箱备用。（高压以后方可再加乳糖) 用途：用作分离沙门氏，志贺氏菌属，也作菌群调查。 1 6、罗文斯坦培养基 成份：磷酸二氢钾2．4克硫酸镁0．24克 枸椽酸钠0．6克天门冬素3．6克 纯甘油（丙三醇) 12毫升水600毫升 马铃薯粉30克鸡蛋1000毫升（约3公斤) 2%孔雀绿水溶液20毫升 制法：1 除鸡蛋外（还有孔雀绿)。可将其它物品称好，放入大三角瓶包扎好，高压灭菌。 2 鸡蛋用75%酒精泡30分钟，灭菌法打蛋，倒入盛有玻璃珠的灭菌三角烧瓶内充分将鸡蛋摇散。 3 将各成份按比例配好，分装每管约5毫升。 4 间歇灭菌第一次90℃1小时，第二次80℃半小时，第三次80℃半小时（或放85℃烤箱内连续二次)。 质控标准： 1 灭菌试验合格。 2 接种结核杆菌要求两星期生长良好。 用途：作结核分枝杆菌培养用。
流体力学平板边界层内的流速分布实验报告电子版
平板边界层内的流速分布实验 实验日期 2011-5-21 小组成员：李超，郭静文（93班）等 报告人 周楠 能动95 09031125 实验目的 1） 测量离平板前缘任意截面边界层内的速度分布； 2） 根据速度分布确定边界层厚度； 3） 了解风洞结构及测量仪器。 仪器设备 吸入式风洞、大气压强计、温度计、微压计、U 型测压管、平板模型、总压探针及三维坐标架。 其中仪器的重要参数包括： (1)吸入式低速风洞P max =P a , 工作截面尺寸300mm ×300mm; (2)风洞的气体流速u max <25m/s, M<0.3,所以风洞内气体流动可以看成二维不可压缩流动即ρ=ρa (3)平板尺寸325mm ×200mm (4)总压探针头部直径：d=0.9mm 实验原理 1 流体在大雷诺数下绕物体流动时，由于流体粘性的作用，与物体表面接触的流体速度为零，然后沿法向很快增至主流速度，这层贴近物体表面，沿着法向有很大速度梯度的流动薄层，称为边界层； 2 在边界层内，速度梯度很大，不能忽略流体的粘性，因此流动作实际流动u x 和p o 都在变化且u x 2009年04月20~22日平板附面层速度剖面与厚度的测定 一、实验目的： 1．熟悉附面层速度分布和厚度的测量方法。 2．具体测定平板附面层层流与湍流附面层的速度分布及其厚度。 3．把实验结果与理论计算结果进行比较，分析其差异产生的原因。 二、实验原理： 粘性匀质不可压缩流体，测量边界层内的速度，仍利用风速管（皮托管）测风速的原理，即测出某点的总压P0和静压P后再换算成该点的速度，因为边界层很薄，其厚度往往只有几mm到十几mm，因而只能用极细的探针去探测边界层内的压力。 由于在边界层内部满足?(P)/?(Y)=0，即静压P沿着平板的法线方向不变，因此，可以用壁面上的静压P来表示边界层内法线上所有不同高度的静压。于是，本实验将一根微总压管装在一标架上，使微总压管以很小的间距上下移动，测出不同高度处的总压P0(y)后，即可算出法线上离壁面y处的速度。 实验时，把总压管由壁面逐步往上移动，则测出的总压越来越大。当移动到某一高度以后，再继续往上移动几个间距，这时所测到的总压已不再随高度的变化而变化。记录下数据，经软件分析后可得速度边界层厚度和速度剖面，并与理论曲线对照。 理论分析中总是假定从平板（或物体）的前缘（或驻点）就开始形成层流或湍流边界层。实际上绕流体的运动常常是组合边界层问题，即在物体的前部分首先形成层流边界层，在它的后部分形成湍流边界层，在它们之间还有一个过渡段。 过渡段从层流的失稳点（层流不稳定点）开始直到流动成为完全湍流之点（湍流过渡点）结束。性质介于两者之间。 为了读出压力的微小变化,本实验采用压力传感器,采用总压和静压之差，将其采集的压力信号转换成电信号，再通过放大器进行信号放大后，输入A/D转换器，由计算机直接计算出速度值。 由于速度剖面是以无量纲形式画成的，因此，不需要计算一点的速度，只要计算出速度的相对值就可以了。计算各高度上的u y/v和y/δ的值，以y/δ为纵 苹果iPad平板电脑新手使用教程 https://www.360docs.net/doc/727983092.html, 2010年06月11日 14:24 手机中国网 最近关于苹果最火的无非就是iPad的发售，之前用过iPhone的朋友对iPad的使用还算了解，但也有没用iPhone但入手iPad的朋友，这样对苹果官方的套件iTunes就不是很熟悉了，小编有幸入手了一台iPad，这里给刚入手iPad但又不是很熟悉不太会用的朋友一个简单的初级入门iPad使用教程。 什么是iTunes iTunes是苹果所有移动设备的PC套件，不管是iPod、iTouch、iPhone还是今天要说的iPad，都要使用iTunes来安装应用程序。 下载完毕后，安装好下载的iTunes，把iPad用数据线连上电脑，iTunes就会识别了。 同步程序 因为现在iPad的越狱还没有高人放出，大家只能花钱购买正版或者是免费的试玩版的游戏或者软件了。 注册好了之后，找到你喜欢的一个应用程序，比如我选的这个 点开之后是这个界面，然后点击这里的免费字样 然后就会显示正在下载 下载好了之后，在应用程序选项卡，就会看到刚刚下载的游戏。 这时点击设备中的应用程序选项卡，然后选中要同步的程序 接着点击右下角的同步字样，等待同步完毕即可。 这样就同步完毕之后就会在iPad的桌面上看到刚刚下载的网球游戏了，QQ等其他一些免费的软件也是一样的道理。 下面是我用iPad专用的QQ上的一些截图，看着确实很过瘾。 同步音乐 同步音乐其实也是很简单的，首先先把你电脑中要同步到iPad中的音乐添加到iPad的资料 库中。 这样iPad中的资料库的音乐标签里就会显示 然后找到设备中的音乐标签，选中要同步的音乐， 然后依然点击右下角的同步即可。 实验 两平行平板间的缝隙流动试验 一、实验目的 1. 两平板之间（平板之间没有相对运动）充满了不可压缩流体，测量其流量，温度，黏度，密度，及流速及其雷诺系数，分析流体流动的动态特性以及不可压缩流体以均匀的速度U 沿二元平板作恒定流动时边界层的厚度和壁面切应力的分步规律。 2. 通过紊流对平板的作用力和平板对紊流的反作用力验证不可压缩流体定常流动的动量方程。 3.不同的边界情况下平行平板缝隙流，写出截面上每个点的切应力分布，平板上的摩察应力，摩察系数。 二、实验装置 实验装置如图2.1所示。 雷诺试验装置主要由稳压溢流水槽、试验导管和转子流量计等部分组成，如图1所示。自来水不断注人并充满稳压溢流水槽。稳压溢流水槽的水流经试验导管和流量计，最后排入下水道。稳压溢流水槽的溢流水，也直接排入下水道。 图2.1 动量方程实验装置简图 三、实验原理 经许多研究者实验证明：流体流动存在两种截然不同的型态，主要决定因素为流体的 密度和粘度、流体流动的速度，以及设备的几何尺寸（在圆形导管中为导管直径）。 将这些因素整理归纳为一个无因次数群，称该无因次数群为雷诺准数（或雷诺数），即 ()1 u d R e μ ρ= 式中d 一导管直径，m ρ一流体密度，kg ·m -3 ； μ一流体粘度，Pa · s ； u 一流体流速，m · s -1 ； 大量实验测得：当雷诺准数小于某一下临界值时，流体流动型态恒为层流；当雷诺数 大于某一上临界值时，流体流型恒为湍流。在上临界值与下临界值之间，则为不稳定的过 渡区域。对于圆形导管，下临界雷诺数为2000，上临界雷诺数为10000。一般情况下，上临 界雷诺数为400O 时，即可形成湍流。 应当指出，层流与湍流之间并非是突然的转变，而是两者之间相隔一个不稳定过渡区 域，因此，临界雷诺数测定值和流型的转变，在一定程度上受一些不稳定的其他因素的影 响。 四、实验步骤及注意事项 表皮葡萄球菌 产气肠杆菌 鼠伤寒沙门氏菌 单核增生李斯特氏菌 大肠埃希氏菌 金黄色葡萄球菌 金黄色葡萄球菌 金黄色葡萄球菌 表皮葡萄球菌 表面接触碟/表面接触皿 https://www.360docs.net/doc/727983092.html, 金黄色葡萄球菌 酿酒酵母菌 脑心浸出液肉汤(BHI) 品红亚硫酸钠液体培养基 MFC肉汤 CFU培养基基础 4-甲基伞形酮葡糖苷酸(MUG)培养基蛋白胨 胰蛋白胨 胰酪蛋白胨 酵母浸粉 大豆蛋白胨 酸水解酪蛋白 明胶蛋白胨 马铃薯浸粉 琼脂粉 琼脂粉 动物组织胃蛋白酶消化物 肉胃酶消化物 牛肉浸粉 牛肝浸粉 牛肝浸粉 牛心浸粉 多价蛋白胨(多聚蛋白胨) 月示蛋白胨 玉米浸出粉 一次性培养皿 表面接触碟 一次性培养皿（密理博浮游菌采样）表面接触碟/表面接触皿 https://www.360docs.net/doc/727983092.html, 金属玻璃培养皿（可重复使用） 金属玻璃表面接触碟 嗜热脂肪肝菌芽孢菌片（ATCC7953 枯草杆菌黑色变种芽孢菌片（ATCC9372）121度高压灭菌化学指示卡 132℃压力蒸汽灭菌指示卡 葡萄糖 氯化钠 L-半胱氨酸盐酸盐 氧化酶试剂 三磷酸腺苷二钠盐（ATP） 费尔休林（无吡啶） SDS-PAGE凝胶配制试剂盒 SDS-PAGE电泳液 SDS-PAGE上样缓冲液5倍 考马斯亮蓝R-250染色套装 铜绿假单胞菌 金黄色葡萄球菌 表皮葡萄球菌 大肠埃希氏菌 大肠埃希氏菌 产气肠杆菌 乙型副伤寒沙门氏菌 枯草芽孢杆菌 白色念珠菌 表面接触碟/表面接触皿 https://www.360docs.net/doc/727983092.html, 黑曲霉 生孢梭菌 大豆酪蛋白肉汤培养基(胰酪胨大豆肉汤) 大豆酪蛋白肉汤培养基(胰酪胨大豆肉汤) 无菌大豆酪蛋白肉汤培养基(胰酪胨大豆肉? 大豆酪蛋白肉汤培养基(胰酪胨大豆肉汤) 大豆酪蛋白消化液培养基 大豆酪蛋白琼脂培养基 大豆酪蛋白琼脂培养基 无菌大豆酪蛋白琼脂培养基 卵磷脂-吐温80营养琼脂培养基基础 胰化大豆坚固绿琼脂(TSFA) 营养肉汤(NB) 营养琼脂(NA) 0.5%葡萄糖肉汤培养基 pH7.0氯化钠-蛋白胨缓冲液 三糖铁琼脂培养基(TSI) 三糖铁琼脂培养基 R2A琼脂 实验三微生物分离纯化技术 一、目的要求 掌握浇注平板法、平板涂抹法和平板划线法分离微生物的基本原理和具体操作 二、实验材料 1、菌种 2、培养基：牛肉膏蛋白胨培养基 3、试剂和仪器：无菌水、无菌培养皿、无菌吸管、无菌三角玻棒、接种环、酒精灯、火柴、标签纸、水浴锅 2人一组，每人分别用三种方法操作三个培养皿 三、实验原理 平板划线分离法是指把混杂在一起的微生物或同一微生物群体中的不同细胞用接种环在平板培养基表面通过分区划线稀释而得到较多独立分布的单个细胞，经培养后生长繁殖成单菌落，通常把这种单菌落当作待分离微生物的纯种。有时这种单菌落并非都由单个细胞繁殖而来的，故必须反复分离多次才可得到纯种。其原理是将微生物样品在固体培养基表面多次作“由点到线”稀释而达到分离目的的。 浇注平板法和涂布平板法是两种最常用的菌种分离纯化方法，它们不仅可用于分离纯化，还可用于计数等。浇注平板法是将待分离的试样用生理盐水等稀释液作梯度系列稀释后，取其中一合适稀释度的少量菌悬液加至无菌培养皿中，立即倒入融化的固体培养基，经充分混匀后，置室温下培养。最后可从其表面和内层出现的许多单菌落中选取典型代表，将其转移至斜面培养后保存，此即为初步分离的纯种。 涂布平板法是指取少量梯度稀释菌悬液，置于已凝固的无菌平板培养基表面，然后用无菌的涂布棒把菌液均匀地徒步在装个平板表面，经培养后，在平板培养基表面会形成多个独立分布的单菌落，然后挑取典型的代表移接至斜面，经培养后保存。 四、实验过程 （1）稀释平板法 A 每组取培养皿2只，即每个同学做1只。先在无菌培养皿底部贴上标签，注明分离菌名、稀释度、组别、班级。 B 另取一吸管，以无菌操作法吸取10-3或10-4稀释液0.2mL，加在无菌培养皿的一边； C 取已熔化的在水浴锅中保温45－50 ℃左右的培养基，分别倒入上述培养皿中（见图－2），轻轻转动培养皿，使菌液、培养基充分混匀铺平，放在平坦的桌面上，凝固后，倒置于37 ℃恒温培养。 （2）平板涂抹法 A 每组取无菌培养皿2只（每个同学做1只）。在皿底贴上标签，注明分离菌名、稀释 血琼脂培养基配制标准操作规程 1．目的 规范血琼脂培养基配制标准操作规程，保证培养基质量。 2．原理 羊血或兔血等是细菌生长繁殖的良好营养物质。在45～50℃的基础培养基中加入血液可以完好保存血液中某些不耐热的生长因子，同时血细胞不被破坏。若将NaCl浓度提高到0.85%，可使血平皿在35℃培养18～24小时后色泽仍然新鲜。 3．用途 供一般病原菌的分离培养、溶血性鉴别及保存菌种用。 4．配方 特殊蛋白胨23g、淀粉1g，氯化钠5g、琼脂10g、无菌脱纤维羊血（或兔血）5%～10%，pH7.1～7.5。 5.操作步骤 将上述成分混合，溶于1000ml蒸馏水中，加热溶化，校正pH，121℃高压灭菌15分钟。冷却至50℃加入无菌血液，充分摇匀后倾注平板，待凝固后冷藏备用。血琼脂层厚4mm。 6.储存条件 2～8℃冰箱。 7.有效期 实验室自行规定，确保培养基质量。 8. 质量控制 8.1 质控频度每次新配制时做质控 8.2 质控方法及结果见表5-18. 表5-18 配制血琼脂培养基质量控制方法及结果 试验方法结果 无菌试验<100块抽检5%，>100块随机取10 块，35℃培养，观察有无细菌生长 化脓性链球菌ATCC19615，35℃，培 无细菌生长 生长试验 平行试 验 养18～24小时 肺炎链球菌ATCC6305，35℃，培养 18～24小时 金黄色葡萄球菌ATCC25923， 35℃，培养18～24小时 大肠埃希菌ATCC25922，35℃，培养 18～24小时 做质控时，取新旧批号的培养基同时 做 生长良好，β溶血 生长良好，a溶血 生长良好，β溶血 生长良好， 9.注意事项 倾注时温度不易过高，否则血细胞易被破坏而溶血；若 温度过低，琼脂易凝固。 参考文献 [1] 周庭银编著.临床微生物学诊断与图解.第二版.上海： 上海科学技术出版社，2007 微生物的纯培养、分离纯化和平板菌落计数法 姓名 摘要：纯培养技术是进行微生物学研究的基础。从混杂的微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的过程称为微生物的分离与纯化。平板菌落计数法是一种应用广泛的测定微生物生长繁殖的方法，其特点是能测出微生物样品中的活细胞数。本实验通过稀释涂布平板法和平板划线分离法分离纯化微生物以获得纯培养并进行平板菌落计数，旨在了解微生物的纯培养含义和意义、熟练掌握倒平板的方法和几种常用的分离纯化微生物的基本操作技术、了解利用平板菌落计数法测定微生物样品中活细胞的原理、学习平板菌落计数的操作步骤与方法。实验结果表明，本实验达到了预期的目的。 关键词：微生物的纯培养、微生物的分离与纯化、平板菌落计数法 1.引言 自然界中各种微生物混杂生活在一起，即使取很少量的样品也是许多微生物共存的群体。人们要研究某种微生物的特性，首先须使该微生物处于纯培养状态。也就是说培养物中所有细胞只是微生物的某一个种或株，它们有着共同的来源，是同一细胞的后代。只有纯培养物才能提供可以重复的有意义的结果，纯培养技术是进行微生物学研究的基础。形状稳定的纯培养（菌种）是微生物学工作最重要的基本要求，否则生产或科研都无法正常进行。 从混杂的微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的过程称为微生物的分离与纯化。使用显微操作器单细胞挑取法可以直接得到纯培养。稀释涂布平板法、稀释混合平板法或平板划线法是分离和纯化微生物的常规方法。后几种方法不需要特殊的仪器设备，一般情况下都能顺利进行，达到好的效果。常用的方法有： （1）简易单细胞挑取法：它需要特制的显微操纵器或其他显微技术，因而其使用受到限制。简易单孢子分离法是一种不需显微单孢操作器，直接在普通显微镜下利用低倍镜分离单孢子的方法。它采用很细的毛细管吸取较稀的萌发的孢子悬浮液滴在培养皿盖的内壁上，在低倍镜下逐个检查微滴。将只含有一个萌发孢子的微滴放一小块营养琼脂片，使其发育成微菌落。再将微菌落转移到培养基中，即可获得仅由单个孢子发育而成的纯培养。 （2）平板分离法：微生物的平板分离纯化技术自1880年Koch发明以来已有100多年的历史。该方法操作简便，普遍用于微生物的分离与纯化。该技术的建立和发展为人类获得丰富的微生物资源以及在工、农、医、环境、动植物细胞培养等方面的应用作出了巨大贡献。由此可见，一项新的重大的微生物学实验技术的建立会对整个生命科学带来革命性的变化。随着分子生物学的发展和学科的相互渗透，微生物的分离鉴定技术将获得新的突破。目前发展的PCR、16S rRNA探针杂交技术、荧光抗体技术等已开始用于自然环境中某些特殊微生物的分离、鉴定，特别是对那些现在认为是非可培养的微生物。平板分离纯化技术的基本原理包括两方面：第一，选择适合于待分离微生物的生长条件，如营养、酸碱度、温度和氧等要求或加入某种抑制剂造成只利于该微生物生长，而抑制其他微生物生长的环境，从而淘汰一些不需要的微生物。第二，微生物在固体培养基上生长形成的单个菌落可以是由一个细胞繁殖而成的集合体。因此可通过挑取单菌落而获得一种纯培养。获取单个菌落的方法可通过稀释涂布平板或平板划线等技术完成。值得指出的是从微生物群体中经分离生长在平板上的单个菌落并不一定保证是纯培养。因此，纯培养的确定除观察其菌落特征外，还要结合显微镜检测个体形态特征后才能确定，有些微生物的纯培养要经过一系列的分离与纯化过程和多种特征鉴定方能得到。 Voyo eufi（BIOS）设置 目录 第一项MAIN信息 .....................................................................................错误!未定义书签。第二项Advanced 配置..............................................................................错误!未定义书签。 二.1 触摸屏传感器摄像头设置....................................................错误!未定义书签。 二.2 CPU设置........................................................................................错误!未定义书签。 二.3 PPM设置 .......................................................................................错误!未定义书签。 二.4 热参数设置................................................................................错误!未定义书签。 二.5 其他设置....................................................................................错误!未定义书签。 二.6 储存emmc SD卡设置...............................................................错误!未定义书签。 二.7 电池，性能设置........................................................................错误!未定义书签。 二.8 PCI总线设置 .................................................................................错误!未定义书签。 二. PCI总线寄存器设置-1 ......................................................错误!未定义书签。 二. PCI总线寄存器设置-2 ......................................................错误!未定义书签。 二.9 安全设置....................................................................................错误!未定义书签。 二.10 USB设置 ....................................................................................错误!未定义书签。 二.11 设备预防性维护设置................................................................错误!未定义书签。 二.12 设置............................................................................................错误!未定义书签。第三项南桥，北桥设置............................................................................错误!未定义书签。 三.1 图形，内存设置........................................................................错误!未定义书签。 三. 显卡设置............................................................................错误!未定义书签。 三. 显示屏设置........................................................................错误!未定义书签。 三. 显示管理权限设置............................................................错误!未定义书签。 三.2 音频，USB设置 ........................................................................错误!未定义书签。 三. 音频设置............................................................................错误!未定义书签。 三. USB设置 ............................................................................错误!未定义书签。第四项密码设置........................................................................................错误!未定义书签。 四.1 安全启动模式设置....................................................................错误!未定义书签。 四. 秘钥管理设置....................................................................错误!未定义书签。 四.2 四-2 安全启动模式设置...........................................................错误!未定义书签。第五项启动设置........................................................................................错误!未定义书签。第六项退出设置........................................................................................错误!未定义书签。 常用培养基的配制 （一）营养琼脂培养基 【用途】供细菌总数测定、保存菌种、细菌纯化、一般细菌培养、血琼脂培养基基础之用。 【成分】牛肉膏 3g NaCl 5g 蛋白胨 10g 琼脂 20g 【pH值】7.2±0.2 【制法】上述成分称取38g加蒸馏水1000ml，经121.3℃ 30min高压灭菌备用。 （二）蛋白胨水培养基 【用途】供细菌培养、吲哚试验之用。 【成分】蛋白胨 10g 氯化钠 5g 【pH值】7.6 【制法】将上述成分溶于1000ml蒸馏水中，过滤，分装于试管，每管2～3ml，经121.3℃20min高压灭菌备用。 （三）半固体培养基 【用途】供观察细菌动力、菌种保存、H抗原位相变异试验等。 【成分】蛋白胨 10g 氯化钠 5g 琼脂 2.5～3g 【pH值】7.6 【制法】上述成分加入1000ml蒸馏水中，加热溶解，分装于试管，每管3～4ml，经121.3℃ 20min高压灭菌备用。 （四）营养肉汤培养基 【用途】供一般细菌培养、转种、复苏、增菌等，也可用于消毒效果的测定。 【成分】蛋白胨 10g 氯化钠 5g 牛肉粉（牛肉浸汁） 3g 【pH值】7.2±0.2 【制法】将上述成分溶于1000ml蒸馏水中，分装小试管，每管2～3ml，经121.3℃ 20min 高压灭菌备用。 （五）葡萄糖蛋白胨水培养基 【用途】供甲基红试验及V-P试验之用。 【成分】蛋白胨5g 葡萄糖5g K2HPO4 (K2HPO4·3H2O) 5g (0.65g) 【pH值】7.0～7.2 【制法】将上述成分溶于1000ml蒸馏水中，过滤，分装试管，每管2～3ml，经112.6 ℃ 20min高压灭菌备用。 （六）伊红美蓝培养基（EMB培养基） 土壤微生物的分离与平板菌落计数实验二土壤微生物的分离与平板菌落计数 一、实验目的 (1)几种常用分离纯化微生物的基本操作技术 (2)掌握倒平板 (3)学习平板菌落计数的基本原理和方法 二.实验原理 微生物的分离与纯化是指从混杂的微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的过程。分离纯化微生物的常用方法有平板表面画线法、平板表面涂布法和琼脂培养基浇注法等，因为其方法简单、设备简单、分离效果好，所以一直被实验室普遍选用。 活菌计数的基本方法是将待测样品经适当稀释之后，其中的微生物充分分散成单个细胞，取一定量的稀释样液接种到平板上，经过培养，由每个单细胞生长繁殖而形成肉眼可见的菌落。统计菌落数，根据其稀释倍数和取样接种量即可换算出样品中的含菌数。 三.实验器材 1.材料:土壤 2.培养基:牛肉膏蛋白胨培养基 3.仪器或其他用具:无菌培养皿，盛有9ml无菌水的试管，1ml移液器，玻璃涂布器，恒温培养箱 四.实验步骤 (一)采样 取表层以下5-10cm处的土样，放入灭菌的袋中备用，或放在4 ?冰箱中暂存。 (二)倒平板(无菌操作) 培养基加热溶化，待冷至55-60? ，然后在无菌操作条件下倒入培养基于无菌培养皿中，并在各培养皿上作好标记。 (三)制备土壤稀释液(无菌操作) 1.制备土壤悬液 用电子天平称取 5g土于装有45ml无菌水的三角瓶中，振摇约20min,使土壤与水充分混匀 2.梯度稀释 取1ml土壤悬液加入装有9ml无菌水的试管，以此类推制成10-1 、10-2、10-3等不同稀释度的土壤溶液。 (四)平板分离单菌落(无菌操作) 选用平整、圆滑的接种环，按无菌操作法挑取少量含菌的土壤悬液，在酒精灯旁进行划线操作，用左手控制培养皿，右手捏接种环，在标记处划3-4条连续的平行线作当作初步稀释的菌源。烧去接种环上的残余菌样。将烧去残余菌样后的接种环在平板培养基边缘冷却以下，然后将培养基另一区转至划线位置，将接种环通过菌源区而移至现在的划线区，依次类推划上几次。然后烧去接种环上的残菌。最后平板倒置，恒温培养:细菌培养37?，1-2d;放线菌培养28?，5-7d;霉菌培养28?，3-5d。 (五)活菌计数 从10-2、10-3、10-4、10-5、10-6各管中，分别吸出1ml菌液加至相应编号的平板表面上。用左手控制培养皿，并将皿盖开启一缝，右手拿涂布玻璃棒把培养皿上的一滴菌液轻轻涂开、均匀铺满整个平板，并防止平板培养基破损。最后平板倒置，恒温培养:细菌培养37?，1-2d;放线菌培养28?，5-7d;霉菌培养28?，3- 5d。 便携式7寸MID 亲爱的用户： 非常感谢您选购此款MID产品。我们衷心希望您能从中获得长久的享受。祝愿您从该产品中获得最好的多媒体体验！ 本手册中包含的所有信息在出版时都是正确的。但由于我们不断对产品进行更新和改进，因此您设备上的软件、外观、功能可能与本手册中所描述的内容略有差别。 目 录 1.基本功能 (4) 1.1硬件配置 (4) 1.2软件配置 (5) 2.设备描述 (6) 2.1 触摸屏和轨迹球 (6) 2.2 Camera (6) 2.3 Power键 (6) 2.4 充电指示 (7) 2.5 Menu键 (7) 2.6 Home键 (7) 2.7 Mic孔 (7) 2.8 TF卡 (7) 2.9 MiniUSB (7) 2.10 复位钮 (7) 2.11 耳机插座 (8) 2.12 DC (8) 3.首次使用 MID (8) 3.1 电池管理及充电 (8) 3.2 打开/关闭 MID (8) 3.3 与PC连接 (9) 4.设备操作界面 (9) 4.1 主界面描述 (9) 4.2 菜单界面描述 (10) 4.3 状态栏描述 (11) 4.4 使用触摸屏 (11) 5.设备基本设置 (12) 5.1 网络配置 (13) 5.2 声音和显示 (14) 5.3 安全性和位置 (15) 5.4 应用程序 (15) 5.5 SD卡和MID 存储 (16) 5.6 日期和时间 (16) 5.7 区域和文本 (16) 5.8 触摸屏校准 (16) 5.9 USB模式选择 (17) 5.10 关于MID (17) 6. MID 软件安装及管理 (17) 6.1 APK安装器（应用程序安装工具） (17) 巧克力色血琼脂平板培养基使用说明书 【产品名称】 通用名称：巧克力色血琼脂平板培养基 英文名称：Chocolate Blood Agar Plate Medium 【包装规格】 Φ90㎜和Φ70㎜，5块／包。 【预期用途】 主要用于奈瑟氏菌(如脑膜炎球菌，淋病球菌)、流感嗜血杆菌等的增菌培养。 【检验原理】 培养基（Medium）是指由人工方法配制而成的，专供微生物培养、分离、鉴别、研究和保存用的混合营养制品。培养基按用途分为基础培养基、增菌培养基、选择性培养基、鉴别培养基和厌氧培养基等，按原料来源分为天然培养基、半合成培养基和合成培养基。按形态分为液体培养基、流体培养基、半固体培养基和固体培养基等。 本产品是以人工的方法配制而成的，除基础培养基外另外还添加了脱纤维羊血，以增加营养性能，并根据具体的要求经过特殊处理使成巧克力色，补加嗜血杆菌生长所须的各种生长因子，以适应营养要求苛 刻的微生物的特殊营养要求。 【主要组成成份】 巧克力色血琼脂平板培养基由蛋白胨、牛肉浸粉、酵母浸粉、琼脂等培养基原料经配制、高压灭菌，加入动物血和添加液定量灌入一次性塑料培养基内而成。 【贮存条件及有效期】 2-8℃，避光保存，有效期3个月，用前复温。 【样本要求】 标本可以是液体也可以是固体，液体标本可以直接使用，固体标本需用适量无菌生理盐水溶解后，取溶液使用。根据浓度需要决定是否采用10倍稀释法进行稀释。 【检验方法】 用接种环或棉签以无菌方法取标本直接画线接种于培养基中，或无菌吸取0.1ml适当浓度的标本溶液用玻璃涂布棒均匀涂布于培养基中，置35~37℃温箱中培养。 【检验结果的解释】 流感嗜血杆菌菌落微小，无色、透明、光滑整齐、似露滴状，48小时后达1.5mm，从血液或脑脊液中分离到的菌落往往形成液状，菌落较大，老培养物菌落中心凹陷；淋球菌菌落较小，菌落呈灰白色。【检验方法的局限性】 正确的标本采集及良好的细菌划线分离技术是检出细菌的基础，所检出细菌要经镜检、生化鉴定来确认。 【注意事项】 1．该培养基仅用于体外诊断。 2．使用前必须检查培养基，若培养基有污染迹象或超过有效期不得使用。 平板边界层实验（一） （一）实验目的 1．测定平板边界层内的流速分布，从而确定流速分布指数规律、边界层名义厚度δ、位移厚度1δ、动量厚度2δ、能量厚度3δ。 2．掌握毕托管和测压计的测速原理和量测技能。 （二）DQS 系列空气动力学多功能实验装置： 该装置相当于小型风洞，为组装式结构。由主机和多种易更换实验段组成，流量可以控制。风机提供气流，在压出段设有流量调节阀门，气流通过风道进稳压箱流速减慢进入阻尼网，阻尼网由二层细密钢丝网构成，可将流体较大尺度的旋涡破碎，使气流均匀地进入收缩段，经过收缩段可将收缩段进口的速度不均匀度缩小n 2倍，n 为收缩比，本收缩段的收缩比较大。收缩曲线应用波兰人维托辛斯基曲线。收缩段出口接各种实验段，实验排放的气流由实验台面的孔口进吸音箱回到风机入口，如图1所示。 多管测压计，设有可改变角度的测压排管及调平设置，当测某点压强时取与大气连通的测压管与该点测压管的读数差，即为测点的压强水头，如图2所示。 1.稳压箱 1.测压管 2.收缩段 2.角度盘 3.风道 3.支架 4.调节阀门 4.联通管 5.通风机 5.输液管 6.吸音箱 6.酒精库 7.阻尼网 7.通气管 图 1 图 2 （三）实验段简图 稳压箱内的气流经过阻尼网及收缩段均匀进入实验段，在实验段轴心位置安装一块一面光滑一面粗糙的平板，平板可沿轴线滑动，在实验段的出口装有精致的鸭咀形毕托管，其 头部厚度仅有0.3㎜,并配有千分卡尺，灯光显示设置和多管测压计，见图1-1。 （三）实验原理及计算式 1．平板紊流边界层的流速分布 实际流体因存在粘性，紧贴壁面的流体将粘附于固体表面，其相对速度为零，沿壁面法向随着与壁面距离的增加，流体的速度逐渐增大，当距离为δ时，其速度达到未受扰动的主流流速∞u ，这个厚度为δ的薄层称为边界层，通常规定从壁面到∞=u u x 99.0处的距离作为边界层的厚度。 边界层的厚度沿平板长度方向是顺流渐增的，在平板迎流的前段是层流边界层，如果平板足够长，则边界层可以过渡到紊流，判别过渡位置的特征值是雷诺数x Re ，如图1-2所示。 若量测断面坐标为x ，则该断面x Re 为 ν x u x ∞= Re (本装置用0u 代表∞u ) ( 1－1 ) 其中ν为空气运动粘滞系数，α ρμν= μ为动力粘滞系数，αρ为空气密度。 n T T ??? ? ??=00μμ 15.2880=T °Ｋ时，250/·10789.1m S N -?=μ K ℃t T 15.273/+= 90°K ＜T ＜300°K 时，n 取8/9，代入 29 85/· 15.28810789.1m S N K T ?? ? ????=-μ 紊流边界层内的流速分布用指数律表示为 图 1 - 1 n x y u u 10?? ? ??=δ ( 1－2 ) 式( 1－1 ) 、( 1－2 )中平板边界层速度剖面的测定讲义2
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