实验动物学复习题word精品

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名词解释

1■人类疾病动物模型:是指生物医学研究中建立的具有人类疾病模拟表现的动物实验对象和相关实验材料。

2■实验性动物模型:是指研究者通过使用物理的、化学的和生物的致病因素作用于动物,造成动物组织、器官或全身一定的损害,出现某些类似人类疾病时的功能、代谢或结构形态方面的病变,即人工地诱发出特定的疾病,以供研究使用。

3■实验动物:经人工饲育,对其携带的微生物进行控制,遗传背景明确或者来源清楚的,于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的动物。

4■实验用动物:是泛指用于各类实验的所有动物,即用于实验的动物。广义的实验用动物包括实验动物、野生动物、经济动物和其他动物。狭义的试验用动物, 即国内通常所说的试验用动物,特指尚无国家标准、行业标准或地方标准但又用于各类实验的动物,以示与实验动物的区别,故不包含实验动物。

5■近交系动物:根据遗传基因调控原理,采用近交方法,使动物基因纯化而获得的遗传基因高度均一的实验动物。

6.3R原则:Reduction (减少)是指在科学研究中,用较少量的动物获取同样多的实验数据或使用一定数量的动物能获得更多实验数据的的科学方法。

Replacement (替代)是指使用其他方法而不用动物所进行的试验或其他研究课题并达到研究目的的方法。或者是使用没有知觉的实验材料代替以往使用神志清醒地获得脊椎动物进行试验的一种科学方法。

Refinement (优化)是指在符合科学原则的基础上,通过改进条件、善待动物、提高动物福利;或完善试验程序和改进实验技术,避免或减轻给动物造成的与实验目的无关的疼痛和紧张不安的科学方法。

7■无菌动物:就是指动物身上不可检出一切生命体的动物。进一步说,是指用现有的检测技术在动物体内外的任何部位均检不出任何微生物和寄生虫的动物。

8.Spf级动物:无特殊病原体级动物。除清洁动物应排除的病原外,不携带主要潜在感染或条件致病和对科学实验干扰大的病原。

9■隔离系统:设施采用无菌隔离装置以保持无菌或无外来污染的状态。工作人员通过隔离器上组装的无菌手套进行操作,不直接接触动物。隔离系统内的空气、饲料、垫料、水及实验用品要先进行灭菌处理,动态传递须经过特殊的传递系统。该环境适用于饲育无特定病原体动物、悉生动物及无菌动物,可用于特殊动物的保护、动物的繁殖及实验、动物的检疫隔离等。

10■清洁级动物:除普通级动物应排除的病原(不人兽共患病原和动物烈性传染病病原)外,不携带对动物危害大和对科学研究干扰大的病原。

11.免疫缺陷动物:是指由于先天性遗传突变或用人工方法造成一种或多种免疫系统组成成分缺陷的动物。因其与人类在体内免疫系统缺陷的相似性,而广泛应用于免疫学、肿瘤学的研究。

12■转基因动物:将外源重组基因转染并整合到动物受体细胞基因组中,从而形成在体表达外源基因的动物,称为转基因动物。

简答题

1■大鼠给药方法(给药途径、常用给药量、注意事项)

注射:腹腔1-3 肌肉0.2-0.5静脉1-2皮下0.5-1.0

灌胃:1-4ml

2■小鼠

注射:腹腔0.2-1.0肌肉0.1-0.2 静脉0.2-0.5皮下0.1-0.5

灌胃:0.2-1ml

1.2.注意事项

灌胃:左手固定大鼠、小鼠,使动物呈垂直体位,右手持灌胃器。先大致测量一下从口角到最后肋骨之间的距离,作为灌胃针插入的长度。然后沿右口角插入口腔,与食管成一直线,再将灌胃针沿上颚壁缓慢插入食管,如动物无挣扎等症状,方可注入药液。若针头插入时遇到阻力或动物挣扎厉害,应抽出灌胃针重新插入,切记不可强行插入,否则易造成动物损伤,若误插入气管,动物会立刻死亡。有一种情况需特别注意,由于注射针插入时倾斜可能使灌胃针插入动物对侧腋下部,虽然注入药物后动物不会立刻死亡,但一二天后动物会出现异常症状。

皮下注射:选择皮下组织比较疏松的部位,大小鼠常用注射部位有颈背、腋下、侧腹和后肢。先用酒精棉球消毒需注射部位的皮肤,再将皮肤提起,进针时,从头部方向刺入皮下,再沿体轴方向将注射针推进5-10m m,若针尖易左右摆动,表明已刺入皮下。然后轻轻抽吸,如无回流物可缓慢注射药液。注射完毕缓慢拔出注射针,用干棉球压针刺部位,以防止药液外漏。

皮内注射:常选择背部脊柱两侧皮肤。需先将动物注射部位脱毛,酒精棉球消毒局部,用左手将皮肤捏成皱襞,右手持注射针,将针头与皮肤大约呈30°角

刺入皮下,然后使针头向上挑起并稍刺入,即可注射。注射后,皮肤表面可见鼓起一小丘,停留片刻拔出针头。需注意针头号的选择,针头过小不易注射,针头过大药液易漏出。

肌肉注射:一般选择肌肉丰满而无大血管通过的臀部或大腿外侧或内侧肌肉。注射部位先用酒精棉球消毒,持注射针刺入肌肉,回抽无血方可进行注射。大小鼠一般选5号针头,应避开坐骨神经位置,否则会导致后肢瘫痪。

腹腔注射:部位为下腹部腹中线左右两侧1cm处,为避免伤及内脏,抓取固定动物时应使头稍向后低,使内脏移向上腹。注射部位消毒,右手持注射器在注射位置将针头刺入皮肤,针头到达皮下后,再稍向前进针,后以约45°角刺入腹腔,针尖通过腹腔后抵抗力消失,回抽针栓,如无回血或液体方可注入药液。

尾静脉注射:大小鼠尾部有四根明显的血管,其中腹侧的一根为动脉,背部和侧部为静脉,两侧的静脉较易固定,常作为静脉注射部位。操作时先将动物固定在固定器中,动物身体被固定住,尾部充分暴露。尾部用45-50。温水浸泡半

分钟或用酒精棉球反复擦拭使血管扩张,并可使表皮角质软化,用左手无名指从下面托起尾巴,以拇指和小指夹住尾巴的末梢,右手持4号或4号半注射器,沿与静脉平行方向,从尾下1/4处进针,针头刺入后,轻推药液,若无阻力表示针头已在静脉中,可继续缓慢推入药液;若轻推药液阻力较大,且有白色隆起,说明注射到皮下,需拔出针重新刺入。注射完毕后以干棉球按压止血或把尾巴向注射侧弯曲以止血。如需反复注射,应从尾末端开始进针,逐渐向尾根部移动。3■实验动物和实验用动物的主要区别是什么?

(1) 实验动物是指经人工繁育,对其携带微生物实行控制,遗传背景明确或者来源清楚的用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的动物.(2)实验用动物是指一切用于各种实验的动物,其中除了符合严格要求的实验动物外,还包括经济动物、野生动物和观赏动物,统称为实验用动物。(3)实验动物可包括在实验用动物中。由于野生动物和经济动物及观赏动物与实验动物相比其生物学特性、遗传背景、微生物控制状态等都有一定的不确定性,应用这些动物进行科学实验其结果往往出现较大差异,从而降低了实验结果的可靠程度,因此,应严格区分实验动物和

实验用动物。

4■试举3例说明实验动物编号的方法主要有哪些?

(1) 染色法:使用化学药品在动物明显体位被毛上进行涂染识别的方法,一般

用于短期实验经常应用的涂染化学药品有:①涂染红色:0.5%中性红或品红溶液。

②涂染黄色:3-5%苦味酸溶液。③涂染咖啡色:2%硝硝酸银溶液。

标记时用棉签或卷着纱布的玻璃棒故取上述溶液,在动物体的相应部位逆毛流方向涂上有色斑点,编号的原则是:“先左后右,先上后下”一般把涂在左前腿部记为I 号,左侧腰部记为2号,左后腿为3号,头部为4号.腰背部为5号,尾部为6号.右前腿为7号,右侧腰部为8,右后腿9号,不涂色的为10号,用单一颜色可标记1-10号。如果动物数量超过10只可用两种颜色同时标记,即一种颜色代表十位.另一种颜色代表个位,这样可以标记到99;

(2) 穿耳孔法:用动物专用打耳器在动物耳朵的不同部位打一小孔或打成缺口来表示一定号码的方法。打孔原则:左耳代表十位,右耳代表个位,这种方法可标记100只左右的动物。

(3) 标牌法:用金属制作的标牌固定在实验动物的颈部、耳朵或脚上,将分组

编号写在卡片上,挂在动物饲养笼外。方法简单易识别、数量不限。

5■小鼠和大鼠的最大安全采血量及最小致死采血量分别是多少?

最大安全采血量指一次采血不会引起动物死亡或者严重威胁其健康的采血量上限。通常为血容量的10-15%,成者体重的1%;最小致死量:一次采血可引起动物死亡的最小采血量,通常为血容量的20%以上。

小鼠最大安全采血量为0.2ml,最小致死采血量0.3ml;大鼠最大安全采血量为

1ml,最小致死采血量2ml。

6■实验动物麻醉过量时,可以采取什么对策?

应根据过量的程度,采用不同的方式处理。①如动物呼吸极慢而不规则,但血压和心搏仍照常时,可施行人工呼吸,并给苏醒剂。②若动物呼吸停止,血压下降,但仍有心搏时,应迅速施行人工呼吸,同时注射50%的温热葡萄糖溶液、1:10,000肾上腺素及苏醒剂。③若动物呼吸停止,而且心搏极弱或刚停止时,应用5%CO2和95%O2的混合气体人工呼吸,进行心脏按摩,注射温热的生理盐水和心脏按摩。心搏恢复后,注射50%葡萄糖及苏醒剂。常用苏醒剂有咖啡因、可拉明和山梗菜等。

7■家兔消化系统的组成如何?有何结构为家兔独有?

(1) 消化系统包括消化道和消化腺。消化道由口腔、咽喉、食道、胃、小肠(十二脂肠、空肠、回肠)、大肠(盲肠、结肠、直肠)、肛门组成;消化腺包括唾液腺、耳下腺(腮腺)、颌下腺、舌下腺、眶下腺、肝脏、胰脏、脾脏。

(2) ①胸腔内构造与其它动物不同,胸腔中央由纵隔连于顶壁、底壁及后壁之间将胸腔分为左右两部,互不相通,纵隔由膈胸膜和纵隔胸膜两层纵隔膜组成。肺被肋胸膜和肺胸膜隔开,心脏又被心包膜隔开。因此,开胸后打开心包胸膜暴露心脏进行实验操作时,只要不弄破纵膈膜,动物不需要作人工呼吸。②家兔回肠与盲肠相接处膨大形成一厚壁的圆囊,称圆小囊,这是兔独有的。

8■简述动物术后的注意事项:

(1)麻醉期未过时,注意动物保暖,术后观察与手术完全一致,恒温25~30C 为宜,温差小于3C。(2)未清醒的动物注意摆正头颈部位置,保持呼吸通畅,及时清除口腔鼻腔的呕吐物及分泌物,以防误入气管。(3)术后疼痛可以引起实

验动物的嘶叫、行为异常、饮食异常、心率加快甚至循环衰竭等。(4)手术创口

一般用纱布或绷带固定,防止细菌感染,必要时采取抗生素治疗。(5)术后恢复

期要喂饲高蛋白能量饲料,体质虚弱者应补救。(6)严格控制观察环境条件,加

强消毒防疫,防止并发症发生。

9■实验动物分组中设置对照组、空白对照组和标准对照组的含义是什么?

(1) 对照组指随机抽取的实验对象的子集?在这个子集中?每个单位不接受实验组成员所接受的某种特别的处理

(2) 空白对照指不做任何实验的对照组或不给对照组以任何处理因素。常用于评定测量方法的准确度以及观察实验是否处于正常状态,能明白地对比和衬托实验组的变化和结果,增加说服力

(3) 标准对照组:生物生理、生化的某些项目也都有相应的标准,将观察测定的实验数值与规定的标准值相比较,以确定其正常与否的对照方法?标准对照不设立专门的对照组,而是用现有标准值或正常值做对照。例如,用一种已确认的药物作标准对照组,比较新药的药效。

10.家兔开胸后打开心包膜暴落心脏进行实验操作时,不需作人工呼吸的原因?胸腔内构造与其它动物不同,胸腔中央由纵隔连于顶壁、底壁及后壁之网将胸腔分为左右两部,互不相通,纵隔由膈胸膜和纵隔胸膜两层纵隔膜组成。肺被肋胸膜和肺胸膜隔开,心脏又被心包膜隔开。因此,开胸后打开心包胸膜暴露心脏进行实验操作时,只要不弄破纵膈膜,动物不需要作人工呼吸。

11■屏障系统用来饲养什么级别的实验动物,并简述实验操作人员从进入到退出该系统的流程及注意事项。

(1)进入:先到第一更衣室处换拖鞋、脱衣、洗头、清洗身体尤其是双手双脚,进入第二更衣室擦干身体,戴口罩帽子,穿洁净衣裤、工作服,双手消毒,戴手套,风淋三分钟,依次进入洁净走廊、饲养室。注意事项:换洁净工作服时要站

立操作,洁净服不能接触到任何物品?进(出)洁净区必须按顺序穿戴洁净服。在不同的洁净区应穿不同的洁净服,禁止不更换或未按要求穿戴工作服进入洁净区。

(2)退出:二作完毕后把废弃物、用过的用具和笼具一同整理装车,推出房间,进入污染走廊并随手锁门。工作人员把运输车推入缓冲间后撤回污染走廊,经由人流缓冲间通道返回一更间,随手关好缓冲间门,进行更衣;将穿过的消毒服放置更衣室指定地点,待重新洗涤消毒处理。注意事项:工作完成后出屏障设施时,应脱掉工作服,并将其按规定放入收集箱内?洗手、洗脸或淋浴即可离开。离开清洁区时必须锁门.

12.■在做药物毒性实验时选择实验动物应注意的四个要点。

(1)动物的进化程度越高,对药物毒性的敏感性越好:(2)选用未成年的实验动物

较为合适,因在动物迅速生长时期,可以发现药物对生长及各器官,包括对性器官成熟的影响3)选择做毒性试验时,动物应雌雄各半,因为它们对毒性物质反应有差异,而且动物数量不宜太少,要满足统计学处理的要求;(4)实验要求至少采用两种不同种属的动物:一种为啮齿类(大鼠、小鼠、兔等);另一种为哺乳类(犬、猴等),一般米用大鼠和犬。

三、问答

1■请说明根据随机数据表如何将12只动物完全随机地分为3组。

先将实验动物按体重编号,再从随机排列表中随机指定第21行,舍去大于12的数,将0-11之间的数字一次录于实验动物号下。按预先规定,将随机数字为0-3的分人甲组,4-7的分入乙组,8-11分入丙组即可。

2 ?实验动物标准化的主要研究内容是什么?

(1)实验动物标准化是指实验动物遗传背景清楚,微生物控制、环境、营养、饲养

条件等均执行相应标准规定,动物实验达到规范化管理要求,常规公认的动物实验捡测项目执行国家或行业标准,从而形成统一、科学、规范的实验动物管理体系,即实脸动物饲养管理和动物实验实行标准化管理。

(2)主要研究内容:实验动物遗传学质量标准化、实验动物微生物学质橄标准化、实验动物设施环境标准化和实验动物饲料营养标准化。

⑶我国把实验动物分为四个等级:一级:普通级动物:二级:消洁级动物;三

级:SPF级动物《无特定病原体动物》;四级:无菌动物实验动物生产与动物实验环境标准化:开放环境:一级动物(普通级);屏障系统:清洁动物、SPF 动物;隔离系统:无菌动物

3■实验动物选择的基本要求如何?

(1)选择与人的功能、代谢、结构和疾病特点相似的实验动物(2)选择遗传背景明确、体内微生物得到控制或模型症状显著的动物(3)选用解剖、生理特点符合实验目的要求的动物⑷选择对实验因素最敏感的动物⑸选择与实验目的相适应的动物(6)选择要符合3R原则:替代、减少、优化原则((7)选择要注意动物福利4■家兔在生物医学中的应用主要有哪些,它们都分别利用了家兔的哪些生物生理学特点?

(1)免疫学研究:免疫学研究中常用的各种免疫血消,大多数是采川家兔来

制备的.家兔血清量产生较多,胸淋巴结明显,耳静脉大,易于注射和采血,其制品广泛地用于人、畜各类抗血清和诊断血清的研究。(2)生殖生理和避孕药的研究:利用家兔可诱发排卵的特点进行各种研究。也可用于避孕药的筛选研究。

(3)皮肤反应实验:家兔皮肤对刺激反应敏感,其反应近似于人。(4)眼科的研究:家兔的眼球甚大、几乎呈圈形,眼球体积约5-6cm2.重约3-4g,便于进行手

术操作和观察。同时在同一只家兔的左右眼进行疗效观察,可以避免动物年龄、性别、产地、品种等个体差异,是眼科研究中最常用的动物。(5)微生物学研究:家兔对许多病毒和致病菌非常敏感,适用于各种微生物学的研究,如对过敏、免疫、狂犬病、天花、脑炎等的研究。

5■比较SPF级与无菌实验动物在生物学特点、饲喂管理等方面的异同。

(1)形态学改变:①消化系统:主要在肠道,无菌动物的肠道肌层薄,盲肠肥大,一般为SPF级动物的5~6倍。常因盲肠扭转或肠壁破裂死亡,肠粘膜绒毛增加,肝重量下降。②循环系统:心脏相对缩小。③血液系统:白细胞增加且总数波动范围大,无菌动物较恒定。④网状内皮系统:脾脏缩小,无三级滤泡,网状内皮细胞功能下降。

(2)生理学改变:①免疫功能由于免疫系统发育不完全,体内无细菌,无寄生虫,无抗体,比SPF级耐微生物敏感性弱。②生长率:无菌条件下,对不同种属的影响不同,无菌鸟类高于SPF无菌大小鼠无明显差别。③代谢:无菌动物血中含N 量少,肠管对水的吸收率低,代谢周期更长。④营养:无菌动物肠道上皮细胞的更换率低,肠壁的物质交换也慢,因肠内无菌,不能帮助消化纤维素以提供机体所需营养。⑤寿命:无菌大小鼠比SPF长寿。

饲喂管理:①SPF饲养于温湿度恒定的屏障系统,空气经过过滤,进入其中的所有物品都要求严格灭菌,工作人员进入时必须严格穿戴消毒过的隔离衣,饮水经高压消毒或PH2.5-2.8的酸化水,或过滤净化水。②无菌动物必须在与自然界隔绝的无菌隔离器内饲养,隔离器应对微生物隔绝,其内部空间级内容物能接近高压蒸汽或者化学药品的灭菌处理,其空间及内容物可被随时观察,可在不破坏其无菌环境前提下进行无菌操作,饮食换气等。无菌动物的水应无活的微生物和寄生虫及虫卵,必须经充

分灭菌,且应补充灭活而破坏的营养成分,因其肠道无正常菌群,饲料中还必须补充这些细菌的营养成分,以保证其营养平衡。

实验动物学实验报告

实验动物学实验报告 一、实验动物:小鼠 二、操作流程:抓取,固定,编号,给药,取血,麻醉,绝育,解剖。 三、具体操作 1、抓取:抓取小鼠时,右手抓住小鼠尾巴,不要过于用力,以免惊吓小鼠。左手从小鼠身体后部向前抓(以免小鼠向后缩咬伤自己),抓住小鼠颈部。固定住小鼠后,将小鼠皮肤往上抓,尽量将小鼠背部皮肤抓住。左手将小鼠腹部朝向自己,把小鼠尾巴用左手无名指和小指夹住,这时小鼠腹部皮肤紧绷,不能动弹。 2、固定:通常使用固定器进行固定。将固定器拧开后,抓住小鼠尾巴,使其钻入固定器中,再将拧下的固定器部分装好,使小鼠尾部露出,再将可旋转的铁片固定住即可进行后续实验。 3、编号:编号方式有两种:①剪脚趾编号:把小鼠腹面朝上,在下的脚趾从左至右依次编为1~10号,剪10号脚趾加1~9号脚趾依次编为11~19号,在上的脚趾依次编为20,30,40,50,60,70,80,90号,其余编号与11~19号类似。②打耳钉编号:耳钉上均有唯一编号,通过使用耳钉钳将耳钉打在小鼠耳朵上即可。实验时通常使用的是第一种方式进行编号,第二种编号通常用于需要长距离运输的动物。 4、给药:常用的给药方式有: ①口服给药:即灌胃。将注射器装入药物溶液,装上灌胃针(灌胃针有直头和弯头两种,区别不大)。如上所述,抓取小鼠后,使其头部朝上,尽量呈一直线,取灌胃针,从小鼠嘴角一侧缓缓插入(保持刻度在自己能看到的位置),顺着小鼠口腔食道的弧度让小鼠将针咽入,灌胃过程中如果遇到阻碍一定要及时拔出灌胃针,不可强行灌胃以免伤及小鼠食道以及肺部。灌胃针顺利进入后基本与小鼠身体呈一条直线,注入适量体积后再顺着食道缓缓取出灌胃针。 ②静脉注射:小鼠尾部有3条静脉和1条动脉,3条静脉非别位于背部,及两侧。静脉注射时一般选取两侧静脉,因为其相对于背部静脉更为清晰饱满。将小鼠固定后,用酒精擦拭其尾部静脉,使其充血,以便注射。之后使注射器针孔处朝上,针与尾部呈约30°扎入尾部后向上轻挑,再向内扎入部分,此过程应该比较顺畅,没有阻碍,若阻碍较大则有可能扎入到了皮肤中。扎入后将活塞向后回抽一点可见到有血回流,则说明成功扎入静脉当中,注射适当体积后迅速拔针,用酒精进行消毒。 5、取血:有断尾取血法和眼眶取血法两种。本次实验使用的是眼眶取血法。抓取小鼠,固定其头部用手指将其上下眼睑分开,露出其眼球并且不能闭上。用玻璃毛细管从其上眼角处扎入眼球后方毛细血管从,使血液顺着毛细管留下,取血完成后快速将毛细管取下。 6、麻醉:抓取老鼠,使其头部朝下,使其腹部脏器向胸腔靠拢,露出腹部空腔,以免刺伤脏器。将注射器竖直扎入靠近后腿部腹腔,刺入之后稍微向前倾斜但不要向前刺入,一般注入0.5mL麻醉剂即可。随后拔出针,方向小鼠,等待几分钟后即可麻醉。 7、绝育:绝育手术是通过剪除雌鼠卵巢或雄鼠输精管来实现的。将麻醉的雌鼠背面朝上,从其胸腔和尾部之间向下三分之一处剪开一个小口,用镊子将其卵巢取出,上面呈现红色斑点的部分即为卵巢,用剪刀将这一部分剪除,然后用缝合针线将其缝合,缝合方法为将针穿过后,将线缠绕镊子两圈再逆时针缠绕两

实验动物学试题及答案

《实验动物学》复习题及答案 1、小鼠的给药途径有那些?请演示一下 答:灌胃(ig):左手将动物固定后,右手持装有灌胃针头的注射器,自口角进针,沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射(sc):常在背部皮下注射。一手固定动物,另一只手注射给药。 腹腔注射(ip):左手固定动物,右手持注射器,从下腹部外侧,呈45 度角刺入腹腔,进针约3~5mm。 肌内注射(im):多注射后肢股部肌肉,如一人单独操作,以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤,小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢,右手持注射器刺入后肢肌肉给药 尾静脉注射(iv):将动物固定,鼠尾巴露在外面,用70%~75%的酒精棉球擦尾部,或将鼠尾浸入45~50℃温水中。待尾部左右静脉扩张后,左手拉着尾,右手进针 2、请演示一下大鼠、小鼠的捉持、固定及灌胃给药 答:(1)小鼠的捉持:捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾,置于实验台或鼠笼上,并稍向后拉;用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤,将鼠置于左手心中,拉直后肢,以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。 (2)大鼠的捉持:大鼠的捉拿时,可戴上手套。实验者可用右手捉住鼠尾,放在实验台或鼠笼上,并稍向后拉;左手掌面向鼠背,食指和中指压住鼠的头顶,拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入,将鼠的两前肢卡住;或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。 (3)灌胃(ig):左手将动物固定后,右手持装有灌胃针头的注射器,自口角进针,沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 3、大鼠的给药方法有那些?请演示一下常用的给药方法 答:灌胃(ig):左手将动物固定后,右手持装有灌胃针头的注射器,自口角进针,沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射(sc):常在背部皮下注射。一手固定动物,另一只手注射给药。 腹腔注射(ip):左手固定动物,右手持注射器,从下腹部外侧,呈45 度角刺入腹腔,进针约3~5mm。

实验动物学重点题库

复习题 1、简述动物实验中3R原则内容及其意义。 Replacement 替代1.尽量使动物一体多用2、用低等动物代替高等动物3、尽量使用高质量动物4、使用恰当的试验设计和统计学方法 Reduction 减少1、用有生命的物体代替动物进行研究2、用数理化方法模拟动物进行研究Refinement 优化1、改善实验设施条件,提高动物实验质量2、改善控制技术,减少对机体的干扰 3R研究的意义 1、作为提升突破技术壁垒能力的载体和具体体现“标尺”,在经济发展和国际贸易中发挥不可替代的重要作用。 2、为科学发展提供了新思路和新方法。 3、体现时代发展、社会进步 2、简述免疫缺陷动物的概念以及生物学特性(主要是裸鼠和联合免疫缺陷鼠)。 指由于先天性遗传突变或用人工方法造成一种或多种免疫系统组成成分缺陷的动物。 一、T淋巴细胞功能缺陷动物:1、裸小鼠(nude mice):1)被毛生长异常,呈裸体外表。2)无胸腺,仅有胸腺残迹或异常胸腺上皮,不能使T-cell正常分化,导致细胞免疫力低下。幼龄鼠有残存的未分化的上皮细胞。3)B细胞功能正常,NK细胞活力增强。4)繁育能力差,乳腺发育缺损,以雄性纯合子与雌性杂合子繁育。5)T细胞缺陷可通过移植成熟T细胞、胸腺细胞或正常胸腺上皮得到校正。2、裸大鼠(nude rat):基因符号为rnu,一般特征似裸小鼠。1)发育迟缓,体重为正常大鼠的70%。2)裸大鼠较裸小鼠对多种传染病更敏感。3)比裸小鼠更强壮、寿命更长。4)体型较大,对大范围的外科手术方法较有利。二、联合免疫缺陷动物1、严重联合免疫缺陷小鼠(SCID mice):突变基因scid位于16号染色体。1)该突变基因造成编码Ig重链和TCR的基因重排异常,抑制B-cell和T-cell前体的正常分化。2)C.B-17Icr为携带来自C57BL/ka小鼠的免疫球蛋白重链Igh-1b等位基因的 BALB/cAnIcr的同源近交系。3)纯合子血清中无免疫球蛋白,淋巴结、胸腺变小,缺乏体液、细胞免疫功能。饲养于SPF环境中。4)通过移植人免疫组织或免疫细胞,可使SCID 小鼠具有人类部分免疫系统,称为SCID-hu小鼠。

动物实验报告

实验动物学实验报告 学院: 学号: 姓名 时间: 实验一:小鼠实验

一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法; 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法; 3、掌握小鼠的标记方法; 4、掌握小鼠的基本采血技术; 5、掌握小鼠的常用给药方法; 6、掌握小鼠的解剖方法,熟悉内部脏器的自然位置; 二、实验材料 1、实验动物:每组两只雌鼠,两只雄鼠; 2、实验器械及试剂:鼠笼;小鼠固定器和小鼠固定板;眼科剪;眼科镊;解剖刀;1ml注射器;毛细玻璃管;灌胃针;苦味酸染料;葡萄糖液;2%水合氯醛; 三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤,将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可。这种在手中固定方式,能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显,雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定,近者为雌,远者为雄。另外,雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟,而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1)耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口,左耳为十位,右耳为个位。 2)剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠; 3)染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位,注意逆着毛发生长方向刷。

4、小鼠的基本采血 1)剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾,将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟,也可用酒精棉球涂擦,使局新血管扩张。将鼠尾擦干,再用刀片剪去1-2mm,让血液滴入盛器或直接用移液器吸取,同时自尾根部向尾尖按摩。取血后,先用棉球压迫止血并立即用6%液体火棉胶涂于尾巴伤口处,使伤口外结一层火棉胶薄膜,保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血,三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0.2~0.3ml血,切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好,可以较长的间隔时间连续取血,进行血常规检查。 2)眼眶后静脉丛取血 当需中等量的血液,而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠,尽量捏紧头部皮肤,使头固定,并轻轻向下压迫颈部两侧,引起头部静脉血液回流困难,使眼球充分外突(示眼眶后静脉丛充血),右手持毛细玻璃管,沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺入深度小鼠2~3mm。当感到有阻力时再稍后退,保持水平位,稍加吸引,由于血压的关系,血液即流人玻璃管中。得到所需的血量后,拨出毛细管。若手法恰当,小鼠约可采血0.2~0.3ml。 3)心脏取血 动物仰卧固定在固定板上,剪去心前区部位的被毛,用碘酒酒精消毒皮肤。在左侧第3~4肋间,用左手食指摸到心搏处,右手取连有4~5号针头的注射器,

动物实验报告

动物实验(小鼠)的一般操作技术 实习日期:2007—11—13 一目的和要求: 通过实际操作,使学生掌握实验的一般操作方法,包括动物的抓去和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。 二实习内容: 1 实验动物的抓取 2 实验动物性别的鉴定 3 实验动物编号的标记方法 4实验动物被毛的去除 5 实验动物的给药途径和方法 6 实验动物的麻醉 7实验动物的采血 8 实验动物的处死方法 9 解剖 三实验的方法 1 小鼠的抓取:抓取时先用手将鼠尾提起,放在实验台上,轻轻拉尾,用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和头颈部皮肤,将鼠置于左手中心,用左手无名指和小指按住尾巴和后肢,即可做其他实验操作作用。 2 小鼠性别的鉴定:抓取小鼠后,观察动物肛门与生殖器之间的距离。距离远的为雄性,距离近的为雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睾丸的轮廓。 3 小鼠编号的标记方法:用被毛染色法做小鼠编号。用苦味酸(黄色),一般左前肢为1,左侧腹部为2,左后肢为3,头颈部为4,背部为5,尾根部为6,右前肢为7,右腹部为8,右后肢为9。用两种颜色可以染到99。 4 小鼠被毛去除:有剪毛法,拔毛法,剃毛法,用硫化钠脱毛法。 5 给药途径和方法:给药途径有经口灌胃法,经呼吸道吸入,经皮肤吸入和注射给药法。用一支特制的灌胃针进行灌胃,小鼠一般给1.5ml以下。用注射器抽好液体,然后抓取小鼠,针头延侧角通过食管进入胃内,然后将液体注入。 6 小鼠的麻醉:麻药有挥发性的和非挥发性两种。给药途径有吸入性麻醉,注射给药。小鼠一般用腹部麻醉的方法。用水合氯醛300ml/kg,根据小鼠的体重给药0.25ml。抓取小鼠后,使针头和腹部成30度的角,刺入腹腔,回抽若无回血或者肠内容物可以注入。注入麻药5分钟后,小鼠失去知觉。 7 小鼠的采血的方法:有静脉采血法,尾部采血法,眼眶静脉采血法和心脏采血法。将小鼠装入固定盒中,露出尾部,用二甲苯图擦,使尾静脉充盈。用锋利的刀片切断一根尾静脉即可用毛细管采血,也可用细注射器从尾静脉采血。 8 小鼠的处死方法:用颈椎脱臼的方法或者注射过量的麻药使小鼠死亡。 9 解剖:从腹部开始,查看腹部脏器,以肝脏胃脾肾输尿管姨小肠大肠膀胱前列腺性腺顺序。然后再看胸部,看到肺脏心脏胸腺等器官,并在直视的情况下进行了心脏的采血。然后再看颈部的解剖。最后解剖头部。 四讨论和结论: 通过此次实验,我们学到了实验动物的一般操作技术,如抓取和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。为以后进入临床进行实验研究做好了初步的准备。

实验动物学试卷及答案

2013级专业型硕士研究生《医学实验动物学》考查题 姓名学号专业成绩 一、名词解释 1.AEIR “AEIR”是生命科学研究所必需的四个基本条件。“A”即animal(实验动物)“E”系equipment (设备)“I”为information(信息)“R”是reagent(试剂) 2.3R “3R”,即减少(reduction)、代替(replacement)和优化(refinement)原则。 3.SPF动物 无特定病原体动物( specific pathogen free animal, SPF)指在清洁动物的基础上,要求不携带可能干扰实验的特定病原体和寄生虫如绿脓杆菌等。SPF动物的种群来源于无菌动物,饲养于屏障系统中,实施严格的微生物和寄生虫控制。使用SPF动物,在实验中可以安全可靠地排除动物所携带病原体及特定微生物的干扰。SPF动物作为国际公认的标准实验动物,可适用于所有科研实验。该级动物健康,繁殖率高,自然死亡率低。 4.歪头病 肺支原体可引起化脓性鼻炎和慢性肺炎等呼吸系统疾病;有时并发中耳炎、内耳炎引起实验动物“歪头病”,患鼠头斜于患侧转圈走,提起鼠尾使之倒立,患鼠身体迅速旋转。肺支原体感染生殖道可导致死胎和不育。 5.封闭群动物 又称远交群(out bred stock)动物。按国际实验动物科学委员会的定义,是指以非近亲交配方式繁殖生产的一个种群,在不从外部引入新血缘的条件下,至少连续繁殖4代以上的动物。如昆明种小鼠、SD大鼠等。特点:繁殖率高,重复性差。 二、简答题 1.什么是近交系动物?简述近交系动物的特点。 从一个动物群体中选用血缘比较接近的雌雄个体,即有共同祖先的兄妹、母子、父女进行交配,此种近亲交配的方式称为近交。全同胞兄妹之间或亲代与子代之间连续交配繁殖达到20代以上的动物,称为近交系动物。 近交系动物的特点:㈠基因纯合性(homozygosity),㈡遗传组成的同源性(isogenicity),㈢表现型的一致性(uniformity),㈣对外界因素的敏感性(sensitivity),㈤遗传特征的可辩别性(identifiably),㈥遗传组成独特性(individuality),㈦背景资料可查性,㈧国际分布广泛性 2.“DBA/1fLACA/Lac小鼠”中英文字母、符号和数字的涵义是什么? DBA为小鼠近交系名称,1表示亚系,f表示代乳,LACA为代乳母鼠的品系,Lac代表培

浙江省医学实验动物与动物实验培训班考试试卷和答案(完整版)

浙江省医学实验动物与动物实验培训班考试试卷和答案(完整) 一、选择题(每题2分,共40分): 1、《实验动物管理条例》是年经国务院批准,由国家科技部颁布的第2号令,这是我 国政府颁布的一部实验动物管理法规,是全国实验动物工作的法律依据和管理准则。 A、1981年; B、1983 年; C、1986年; D、1988年 2、动物的出现,为分子生物学、特别是人类功能基因组学研究提供了最好的技术平台。 A、转基因; B、无菌和悉生; C、免疫缺陷; D、近交系 3、起源于同一祖先,其下一代个体至少连续经过20代全同胞兄妹交配,品系近交系数达到 98.6%以上的动物是动物。 A、近交系; B、封闭群; C、杂交群; D、重组系 4、除普通动物应排除的病原外,不携带干扰实验和危害动物的病原体的动物是动物。 A、普通级; B、清洁动物; C、无特定病原体; D、无菌 5、在解剖学、血液动力学上,的冠状动脉循环与人类相似;对高胆固醇物质的反应与 人类相似,很容易出现动脉粥祥硬化典型病灶。 A、大鼠; B、猪; C、犬; D、猴 6、C57BL/6J小鼠属于动物。 A、无菌; B、杂交群; C、清洁; D、近交系 7、先天性T淋巴细胞功能缺陷的动物是。 A、裸鼠; B、大鼠; C、新西兰兔; D、Beagle犬 8、最适合筛选抗高血压药物的大鼠是品系。 A、SD; B、Wistar; C、ACI; D、SHR大鼠 9、动物实验时对实验动物的基本要求是。 A、个体间的均一性; B、容易获得; C、遗传的稳定性; D、三者均要求 10、因为患红绿色盲,不能以红绿色作为条件刺激物,进行条件反射实验的动物是。 A、大鼠; B、豚鼠; C、兔; D、犬 11、下列描述错误的是。 A、动物的解剖生理特征和反应随年龄增加而有明显变化; B、一般情况幼年动物比成年动物敏感; C、幼年动物较成年动物反应性稳定; D、年龄与体重成一定的正比关系 12、动物实验适宜的环境湿度为。 A、40%-70%; B、小于40%; C、70%-80%; D、30%-40% 13、善待动物不仅仅是考虑动物的福利,也是因受虐待的动物。

实验动物学理论考试题

第一章复习题 1、何谓实验动物?实验动物学的研究内容? 2、3R的含义及拼写? 3、何谓动物福利,动物的五大自由? 4、实验动物在医学生物学中的地位和作用? 5、实验动物科学发展史上的里程碑是什么? 6、我国实验动物法规建设如何? 第二章复习题 实验动物遗传学控制分类 近交系的定义、特点及命名法 亚系、重组近交系、同源突变近交系、同源导入近交系的定义和命名 封闭群动物实验动物的定义、特点及命名法 杂交群动物实验动物的定义、特点及命名法 第三章思考题 1、普通级动物、清洁动物、SPF动物、无菌动物的概念。 2、不同等级的实验动物对实验结果的影响。 2、人兽共患病、动物烈性传染病主要病原体的名称。 3、淋巴细胞脉络丛脑膜炎、鼠痘、狂犬病、流行性出血热等疾病的传染源、传播途径、易感者和症状表现。 第四章复习题 1、实验动物营养学的概念。 2、实验动物饲料含的六大营养成分。 3、体内不能合成维生素C的实验动物有哪些。 4、啮齿类、兔、犬和猴的营养需要。 5、常用的实验动物饲料消毒灭菌方法 第五章复习题 1、实验动物的环境、外环境和内环境的概念? 2、以R=(A+B+C)×D+E说明环境控制的重要性。 3、影响实验动物的环境因素有哪些? 4、国标中对实验动物小鼠动物实验屏障设施的温度、湿度、噪声有哪些要求? 第六章复习题 1、屏障设施的概念? 2、屏障设施运行的四要素有哪些?各有何特点? 3、常用的小型独立实验动物设备有哪些? 4、在无人协助的情况下你如何应用清洁级小鼠在实验动物屏障设施内进行动物试验? 第七章复习题 各种动物的主要生物学特性及在医学生物学中的应用 第八章复习题 1、免疫缺陷动物 2、转基因动物(Transgenic animals) 3、克隆动物(cloning animal) 1、何谓实验动物和实验用动物? 实验动物(Laboratory animals)是指经人工饲育,对其携带的微生物实行控制,遗传背景明确或者来源清楚的,用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的动物。

实验动物学实验报告大鼠,小鼠,小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作

实验一小鼠的基本实验操作 一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌 胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。 二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄) 三、实验步骤 1、抓取与固定,标记 2、去毛 3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射 4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法 5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉 6、处死:脊椎脱臼法 7、解剖: 雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明) 雌性:双角子宫、卵巢 肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺 四、实验结果 1、抓取与固定标记: 抓取:抓小鼠的尾根部 固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇 指与食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指与无名指将尾巴固定在手掌面。并标记: 2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0、5ml 3、注射给药: 腹腔注射: 从下腹部的两侧进针 ,进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物 尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指与拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0、5ml生理盐水。注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。 4、采血 从眼角内侧0、5cm处进针 眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。 5、麻醉: 0、5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功 6、处死: 脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死 7、解剖: 雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺 雌性:双角子宫、卵巢 3、7、2 肾上腺:米粒大小 胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状 3、7、4 ,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,

实验动物学模拟试题

模拟试题 一、填空题(本题共10小题,每小题2分,共20分) 1、实验动物指 的动物。 2、按遗传学控制原理,可将实验动物分为、、________和四类。 3、按微生物控制的情况,我国将实验动物分为、、和四级。 4、《实验动物管理条例》是由于年颁布的。 5、实验动物按食性分为、 和三类。 6、实验动物生长发育所需的基本营养物质有、、、、和等几类。 7、“恐伤肾”动物模型可以用吓鼠、吓猫、吓狗等方法制作。 8、人类疾病动物模型根据发生的原因不同,可分为和两大类。 9、小鼠尾部有条静脉,分别位于小鼠尾、和___________。 10、列出三种大鼠常用的采血方法、 和。 二、单项选择题(本题共10小题,每小题2分,共20分) 答题说明:下面三个备选答案中只有一个最佳或最恰当的答案,请用黑色签字笔把正确答案填写在空格处。 1、兔的最大饲养密度是每平方米容纳只。 A、4只 B、6只 C、10只 2、BA LB/c小鼠属于动物。 A、近交系 B、封闭群 C、突变系 3、实验动物脱水达到体重的,将导致实验动物死亡。 A、20% B、30% C、40% 4、皮肤与人非常相似,故常用于实验性烧伤研究。 A、猴 B、猪 C、兔 5、体内不能合成维生素C的动物是:。 A、小鼠和大鼠 B、兔和豚鼠 C、豚鼠和猴 6、屏障系统对空气洁净度的要求是:。 A、100级 B、1000级 C、10000级 7、大多数实验都选择的实验动物。 A、幼年 B、成年 C、老年 8、外界环境因素导致机体发热反应的研究宜选用的实验动物是。 A、小鼠 B、豚鼠 C、兔 9、老年性痴呆大鼠模型的制作方法是。 A、切断其一侧海马伞 B、肌肉注射马桑内酯 C、连续皮下注射链霉素 10、是人兽共患病。 A、鼠肝炎 B、兔出血症 C、流行性出血热 三、判断题(本题共10小题,每小题2分,共20分) ()1、系统杂交(F1代)动物的基因型不一致。 ()2、新药长期毒性研究应用两种以上实验动物。 ()3、SC ID小鼠属于T淋巴细胞免疫缺陷的动物模型。 ()4、实验动物设施环境内的噪声不得超过70分贝。 ()5、犬的视力好,能够看清远距离的物体。 ()6、维生素C又称为抗白血病维生素。 ()7、家兔多次静脉注射高分子右旋糖酐后出现血瘀证。 ()8、给大鼠腹腔注射链霉素可以制作糖尿病模型。 ()9、大鼠肝脏的再生能力强。 ()10、家兔属于胚胎发育完善的动物。 四、名词解释(本题共5小题,每小题3分,共15分)

最新《实验动物学》试卷电子教案

江西中医药大学2014秋季学期 《实验动物学》考试试卷 姓名学号分数 一、选择题(每题1分,共10分) 1、《实验动物质量管理办法》是_________年由国家科技部、国家技术监督局制 定颁布的。 A、1988年 B、1997 年 C、20XX年 D、20XX年 2.影响动物实验结果的动物因素有_________。 A、年龄与体重; B、实验技巧; C、麻醉深度; D、实验药物 3、下列叙述中,违背《实验动物管理条例》精神的是 _________ 。 A、实验动物繁育室和动物实验室应设在同一区域,按同样的要求进行管理; B、对不同等级的实验动物,应当按照相应的微生物控制标准进行管理; C、实验动物的保种、饲育应采用国内或国外公认的品种、品系; D、应用实验动物应当根据不同的实验目的,选用相应的合格实验动物 4、下列_________品系动物属于近交系动物。 A、Km小鼠 B、SD大鼠 C、新西兰兔 D、C3H小鼠 5、以下小鼠_________是封闭群动物、_________是近交系动物、_________是F1代动物、_________是突变系动物。 A、N:NIH B、BALB-nu/nu C 、B6D2F1 D 、C57BL/6 6、国家标准中小鼠房的湿度是40~70%,这指的是小鼠的_________。 A、绝对湿度 B、相对湿度 C、饱和湿度 D、不饱和湿度 7、因为患红绿色盲,不能以红绿色作为条件刺激物,进行条件反射实验的动物 是________ 。 A、大鼠 B、豚鼠 C、兔 D、犬 8、引自美国Jackson实验室的C57BL/6J小鼠,在中科院上海实验动物中心繁殖了10年,这群小鼠是美国Jackson实验室的C57BL/6J小鼠的_________。 A、品系 B、亚系 C、支系 D、重组近交系

青蛙解剖实验报告

2012 级应心班《人体解剖生理学》实验内容 一、人体基本组织的观察 (一)实验目的观察并掌握人体四大基本组织的结构特点及功能。 (二)实验材料四大基本组织的永久装片;显微镜 (三)实验要求正确使用显微镜,观察各种组织的基本特征。注:实验前请复习四大基本组织的结构特点和功能。 二、人神经系统的形态观察 (一)实验目的 1. 观察脊髓的形态结,了解脊神经的组成。 2. 观察脑干的的形态结构和脑神经进出脑干的部位,了解脑干中的主要神经核团和纤维束的位置。 3. 观察间脑、小脑和大脑的形态结构,辨认大脑半球的主要沟、回和分叶。 (二)实验材料脊髓模型;脑干模型;人脑模型;脊髓横切片;显微镜 (三)实验要求观察各模型加深对神经系统的认识;正确使用显微镜,观察脊髓横切片。注:实验前请复习神经系统的结构组成和功能。 三、反射弧的分析和脊髓反射的观察 (一)实验目的 1. 通过用脊蛙(去除脑保留脊髓的蛙,成为脊蛙)分析屈肌反射的反射弧的组成部分,探讨反射弧的完整性与反射活动的关系。 2. 观察脊髓的反射活动并研究脊髓反射中枢活动的若干特征。 (二)实验原理 (三)材料与方法 1 材料 1.1 实验动物青蛙 1.2 器材蛙类手术器械 1 套,铁支架,电刺激器,刺激电极,秒表,棉球,纱布,培 养皿 2 个,烧杯 1.3 药品 0.5% 硫酸, 1%硫酸 2 试验方法与步骤 2.1 制备脊髓动物:取青蛙一只,用剪刀横向插入口腔,从鼓膜后缘处剪去颅脑部,保留下颌部分。以棉球压迫创口止血,然后用止血钳夹住下颌,悬挂在铁支架上。 2.2 正常脊髓反射的观察 2.3 搔扒反射:将浸以 0.5%硫酸的小滤纸片一块,贴在青蛙腹部下段的皮肤上,可见四肢向此处搔扒,直到去掉滤纸片为止,之后用清水冲洗皮肤。 2.4 反射时的测定:用培养皿分别盛 0.5%和 1%硫酸溶液,将青蛙左后肢的脚趾尖浸于硫酸溶液中,同时用秒表记录从浸入时起到发生屈腿发射所需的时间,即反射时。观察后立即将该足趾浸入清水中浸洗几次,然后用纱布拭干。按上法重复三次,求其平均值,此值即为反射时。 2.5 将两对电极连接到刺激器 2.6 反射弧的分析 2.6.1 剥去左肢皮肤:在左侧后肢趾关节上方,将皮肤作一环状切口,将足部皮肤剥掉。 2.6.2 1% 硫酸刺激左趾尖,观察腿部活动情况。 2.6.3 1% 硫酸刺激右趾尖,观察腿部活动情况。 2.6.4 1% 硫酸滤纸片贴在左小腿切口上面的皮肤上,观察活动情况。 2.6.5 分离右侧大腿背侧坐骨神经干,两侧结扎,中间剪断,1%硫酸刺激右趾尖,观察腿部活动。 2.6.6 刺激神经两端:以连续方式分别刺激右侧坐骨神经中枢端和外周端,观察腿部反应。 2.6.7 破坏脊髓:以探针捣毁青蛙脊髓后,以连续方式分别刺激右侧坐骨神经中枢端和 外周端,观察腿部反应。 2.6.8 刺激腓肠肌:直接刺激右侧腓肠肌,观察有何反应。

动物实验报告修订稿

动物实验报告 集团文件发布号:(9816-UATWW-MWUB-WUNN-INNUL-DQQTY-

实验动物学实验报告学院: 学号: 姓名 时间: 实验一:小鼠实验 一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法; 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法; 3、掌握小鼠的标记方法; 4、掌握小鼠的基本采血技术; 5、掌握小鼠的常用给药方法; 6、掌握小鼠的解剖方法,熟悉内部脏器的自然位置; 二、实验材料 1、实验动物:每组两只雌鼠,两只雄鼠; 2、实验器械及试剂:鼠笼;小鼠固定器和小鼠固定板;眼科剪;眼科镊;解剖刀;1ml注射器;毛细玻璃管;灌胃针;苦味酸染料;葡萄糖液;2%水合氯醛; 三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤,将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠

尾,小指按住后腿即可。这种在手中固定方式,能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显,雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定,近者为雌,远者为雄。另外,雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟,而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1)耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口,左耳为十位,右耳为个位。 2)剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠; 3)染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位,注意逆着毛发生长方向刷。 4、小鼠的基本采血 1)剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾,将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟,也可用酒精棉球涂擦,使局新血管扩张。将鼠尾擦干,再用刀片剪去1-2mm,让血液滴入盛器或直接用吸取,同时自尾根部向尾尖按摩。取血后,先用棉球压迫止血并立即用6%液体火棉胶涂于尾巴伤口处,使伤口外结一层火棉胶薄膜,保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血,三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0.2~0.3ml 血,切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好,可以较长的间隔时间连续取血,进行血常规检查。 2)眼眶后静脉丛取血

实验动物学思考题

一、医学实验动物学20160913 1. laboratory animal,LA:实验动物,经人工培育,来源清楚遗传背景明确,对其携带的微生物和寄生虫和健康状态进行监控,用于生命科学研究、药品与生物制品生产和检定以及其他科学研究的动物。 2. animals for research:实验用动物,一切可用于实验的动物,包括野生动物、经济动物、警卫动物、观赏动物和实验动物。 3. laboratory animalization:实验动物化,将野生动物或经济、观赏动物驯化、培育成实验动物的过程。 4. animal experiment:动物实验,为了可接受的目的而使用实验动物进行的实验,实验过程可能造成动物的疼痛、痛苦、苦恼、持久性损伤、受孕、生育等,包括实验的前、中、后过程。 5. Euthanasia:安死术,以迅速造成动物意识丧失而至身体、心理最小伤害的处死动物的方法。 6. humane endpoint:人道终止点,考虑到对待动物的要求和实验要求,合理终止动物用于实验的时间。 7. 3R:替代replacement原则,要求尽可能采用低等实验动物或非实验动物,以替代高等实验动物进行实验;减少reduction原则:要求尽可能减少实验动物的用量,甚至可以降低统计学要求;优化refinement原则:要求优化实验设计和操作,避免或减轻与实验目的无关的疼痛和紧张。 8. 实验动物生物安全:对实验动物可能产生的潜在风险或现实危害的防范和控制。 9. 国家标准规定的实验动物品种是哪些? 大鼠、小鼠、豚鼠、地鼠、兔、犬、猴、鸡 10. 实验动物福利(lab welfare)的五大自由 生理福利:免于饥渴;环境福利:免于不适,适当居所;卫生福利:免于痛苦伤病;行为福利:表达正常行为;心理福利:免于恐惧与焦虑。 11. 实验动物福利与动物实验伦理审查的关系 实验动物福利并不意味着就绝对的保护实验动物不受到任何伤害,而是在兼顾科学问题探索和在可能的基础上最大限度地满足实验动物维持生命、维持健康和提高舒适程度的需要; 实验动物福利贯穿实验动物整个生命过程,应考虑到实验动物的需要,尤其心理需要; 动物实验伦理审查局限于涉及实验动物的课题,在课题执行过程善待动物。 12. 动物实验伦理审查中涉及的三证;不予通过的情况;与医学伦理审查的区别(?) 动物质量合格证;设施许可证复印件及使用证明;从业人员考核合格证书。 1、抵触、逃避,迫不得已; 2、描述不清、证据不足、材料不全; 3、无道理的动物实验,不必要的动物伤害; 4、人员未经专业培训或明显违反动物伦理原则; 5、实验动物生产、运输、实验环境不符合要求; 6、无福利操作规程或不按规程办理,虐待动物; 7、动物实验设计不合理; 8、实施时不能体现善待动物、关注生命; 9、活体解剖不麻醉等极端操作。 动物实验伦理审查:参照国际上通行的伦理基本原则,对医学科学研究项目中涉及动物的课题进行审查,并做出结论性意见。 13. 动物实验生物危害的三大重要因素 动物性气溶胶;人兽共患病;实验室相关疾病感染。 14. 实验动物废弃物类别;处理原则 分类:感染性废弃物,病理性废弃物,损伤性废弃物,药物性废弃物,化学性废弃物。原则:无害化、分类处理、专用包装。 15. 我国对实验动物实施许可证制度,包括管理环节 年检,质量抽检,现场检查等环节。 16. AAALAC的含义及认证目的 国际实验动物评估和认可委员会Association for Asscssment and Accreditation of Laboratory Animal Care。

实验动物学实验报告

实验动物学实验报告 Document number:NOCG-YUNOO-BUYTT-UU986-1986UT

实验一大、小鼠的基本实验操作 一、实验目的:通过实际操作,掌握大、小鼠的一般操作方法,包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。 二、实验动物:昆明小鼠4只(2雌2雄)、大鼠4只(2雌2雄)、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。 三、实验步骤 1、抓取和固定 抓取:左手抓小鼠的尾根部 固定:左手抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。 同样操作将大鼠抓取和固定 2、性别鉴定: 抓取和固定小鼠 观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。雄性:距离长,毛发密(和其他部位一样);雌性:距离短,毛发稀疏。 同样鉴别方法,重复鉴别大鼠。 3. 给药 灌胃法 按正确方法用左手抓取和固定小鼠,使腹部朝上,颈部拉直。

固定后,右手持持接灌胃针的注射器吸取药液(或事先将药液吸好),将针头从口角插入口腔内,然后用灌胃针头压其头部,使口腔与食管成一直线,再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入,转动针头刺激动物吞咽,然后沿咽后壁慢慢插入食道。 当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内,向外抽动注射器活塞,感觉有负压,此时可将药液灌入。 用大鼠重复同样操作 注射给药 皮下注射 用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤, 右手持注射器,使针头水平刺入皮下,针头能自由拨动无牵阻,推送药液时注射部位隆起。拨针时,以手指捏住针刺部位 用大鼠重复同样操作 腹腔注射 以左手固定小鼠,使腹部向上, 右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下,针头稍向前,再将注射器沿45 角斜向穿过腹肌进入腹腔,此时有落空感,回抽无回血或尿液,即可注入药液。 用大鼠重复同样操作 尾静脉注射 先将动物固定在暴露尾部的固定器内, 用75%酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张,

实验动物学试题及答案精编版

实验动物学试题及答案 精编版 MQS system office room 【MQS16H-TTMS2A-MQSS8Q8-MQSH16898】

《实验动物学》复习题及答案 1、小鼠的给药途径有那些?请演示一下 答:灌胃(ig):左手将动物固定后,右手持装有灌胃针头的注射器,自口角进针,沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射(sc):常在背部皮下注射。一手固定动物,另一只手注射给药。 腹腔注射(ip):左手固定动物,右手持注射器,从下腹部外侧,呈45度角刺入腹腔,进针约3~5mm。 肌内注射(im):多注射后肢股部肌肉,如一人单独操作,以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤,小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢,右手持注射器刺入后肢肌肉给药 尾静脉注射(iv):将动物固定,鼠尾巴露在外面,用70%~75%的酒精棉球擦尾部,或将鼠尾浸入45~50℃温水中。待尾部左右静脉扩张后,左手拉着尾,右手进针 2、请演示一下大鼠、小鼠的捉持、固定及灌胃给药 答:(1)小鼠的捉持:捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾,置于实验台或鼠笼上,并稍向后拉;用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤,将鼠置于左手心中,拉直后肢,以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。 (2)大鼠的捉持:大鼠的捉拿时,可戴上手套。实验者可用右手捉住鼠尾,放在实验台或鼠笼上,并稍向后拉;左手掌面向鼠背,食指和中指压住鼠的头顶,拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入,将鼠的两前肢卡住;或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。 (3)灌胃(ig):左手将动物固定后,右手持装有灌胃针头的注射器,自口角进针,沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 3、大鼠的给药方法有那些?请演示一下常用的给药方法 答:灌胃(ig):左手将动物固定后,右手持装有灌胃针头的注射器,自口角进针,沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射(sc):常在背部皮下注射。一手固定动物,另一只手注射给药。 腹腔注射(ip):左手固定动物,右手持注射器,从下腹部外侧,呈45度角刺入腹腔,进针约3~5mm。

动物实验报告

实验动物学实验报告 学院: 学号: 姓名 时间: 实验一:小鼠实验 一、实验目得 1、掌握小鼠抓取、固定得基本方法; 2、掌握小鼠得雌雄鉴别方法; 3、掌握小鼠得标记方法; 4、掌握小鼠得基本采血技术; 5、掌握小鼠得常用给药方法; 6、掌握小鼠得解剖方法,熟悉内部脏器得自然位置; 二、实验材料 1、实验动物:每组两只雌鼠,两只雄鼠; 2、实验器械及试剂:鼠笼;小鼠固定器与小鼠固定板;眼科剪;眼科镊;解剖刀;1ml 注射器;毛细玻璃管;灌胃针;苦味酸染料;葡萄糖液;2%水合氯醛; 三、实验内容及方法 1、小鼠得抓取与固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指与食指抓住小鼠得两耳与颈部皮肤,将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可、这种在手中固定方式,能进行实验动物得灌胃、皮下、肌肉与腹腔注射以及其她实验操作。 2、小鼠得雌雄鉴别 雄鼠得阴囊明显,雄鼠可见阴道开口与五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门得距离判定,近者为雌,远者为雄、另外,雌鼠肛门与生殖器之间有一无毛小沟,而雄鼠则在肛门与生殖器之间长毛。

3、小鼠得标记方法 1)耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口,左耳为十位,右耳为个位。 2)剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠; 3)染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物得不同部位,注意逆着毛发生长方向刷。 4、小鼠得基本采血 1)剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾,将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟,也可用酒精棉球涂擦,使局新血管扩张。将鼠尾擦干,再用刀片剪去1—2mm,让血液滴入盛器或直接用移液器吸取,同时自尾根部向尾尖按摩。取血后,先用棉球压迫止血并立即用6%液体火棉胶涂于尾巴伤口处,使伤口外结一层火棉胶薄膜,保护伤口、也可采用切割尾静脉得方法采血,三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0、2~0、3ml血,切割后用棉球压迫止血、这种采血方法在大鼠进行较好,可以较长得间隔时间连续取血,进行血常规检查。 2)眼眶后静脉丛取血 当需中等量得血液,而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠,尽量捏紧头部皮肤,使头固定,并轻轻向下压迫颈部两侧,引起头部静脉血液回流困难,使眼球充分外突(示眼眶后静脉丛充血),右手持毛细玻璃管,沿内眦眼眶后壁向喉头方

实验动物学试题及答案

实验动物学试题及答案 一、填空题 1、实验动物学研究的对象实验动物、动物实验。 2、根据我国实际,实验动物被分为四级,分别是一级为普通动物、二级为清洁动物、三级为SPF动物、四级为无菌动物(包括悉生动物)。国际上公认的标准实验动物是SPF 动物,我国公认的标准实验动物是清洁动物。 3、通常称近交系动物为品系,称封闭群动物为品种。 4、实验动物的年龄通常根据体重来判断。 5、裸鼠除全身无毛外,还有裸体和无胸腺,并随年龄增加皮肤变薄,头颈部皮肤皱褶,发育迟缓等特征。 6、药物筛选实验首选动物为小鼠;过敏实验首选动物为豚鼠;发热研究首选动物为家兔;实验外科学首选动物为犬;人类脊髓灰质炎等病的研究最理想的实验动物是非人灵长类动物;做反射弧分析实验常用实验动物是青蛙。 7、实验动物常用给药途径有经口给药、注射给药等。 二、名词解释 1.实验动物:是指经人工饲养、对其携带的微生物、寄生虫实行控制,遗传背景明确或来源清楚的,用于科学研究、教学、生产、鉴定、及其他科学研究的动物。 2.近交系动物:是指至少经过20以上连续全同胞或亲子交配,品系内所有个体都可追溯到其源于第20代或以后代鼠的一对共同祖先的动物群。 3.杂交优势:杂种一代具有较强的生命力,对疾病的抵抗力强,寿命较长,容易饲养,在很大程度上克服了近交衰退现象的优越性。 4.封闭群动物:不以近交形式进行交配,也不引入任何外来血缘,在封闭条件下交配繁殖,从而保持群体的一般遗传特性,又具有杂合性的一个实验动物种群。我国制定的标准作如下定义:以非近亲交配方式进行繁殖生产的一个实验动物种群,在不从其外部引入新个体的条件下,至少连续繁殖4代以上,称为一个封闭群,或叫远交群。 5.诱发性动物模型:是指使用物理、化学、生物等致病因素作用于动物,造成动物组织、器官或全身一定的损害,出现某些类似人类疾病的功能、代谢或形态性结构方面的病变,即人为地诱发动物产生类似人类疾病的动物模型。

仓鼠科学实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除 仓鼠科学实验报告 篇一:生物实验报告 探究小鼠走迷宫获取食物的学习行为 实验报告 提出问题:小鼠是否能经过训练,在很短的时间内形成一种新的行为?作出假设:仓鼠能够在短时间内形成一种新的行为。 制定计划:1.准备硬纸板、剪刀、透明胶、铅笔等工具用来制作迷宫。 2.准备坚果、花生等食物放在迷宫的尽头。 3.准备一只仓鼠从固定地点放好食物,让仓鼠在迷宫中自由活动,必要时可引一下。若仓鼠去到食物存放地点,让其进食一段时间后放回饲养笼中。4、数次训练,直至仓鼠可以进入迷宫就直奔食物存放点为止。 实验过程: 结论:仓鼠在经过训练后能在短时间内形成一种新的行为。

篇二:探究仓鼠学习行为教学设计 探究仓鼠的学习行为 ——实验课教学设计 实验介绍 本实验课可以在学生学习完济南版七年级上第二章第 三节《动物的行为》之后安排,以仓鼠为实验动物,鼓励学生小组互助合作,自行选择实验器材,自主拟定实验方案,兼顾科学性与可行性,多角度探究“仓鼠的学习行为”,共同体验生物科学探究的六大环节:提出问题→作出假设→制定计划→实施计划→得出结论→表达交流。 实验目标 1.观察仓鼠的形态特征,了解仓鼠的动物行为及原因。 2.学会对照、测量等研究方法,尝试独立设计探究方案。 3.认同生物与环境相适应的观点,在认同生物多样性的基础上,爱护动物,保护环境。学情分析 初一的学生具有强烈的求知欲,喜欢操作一些趣味性的实验,因此给学生提供在花鸟鱼虫市场上常见的仓鼠作为实验动物,能提高学生积极探索的欲望,主动进行探究活动。抓住这些特点,活动始终将“疑”作为一条主线贯穿全程,引导学生不断寻求、探究解决问题的新方法,拓宽学生思维的领域,逐步培养学生形成立体思维空间。 实验的重、难点

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