凝胶过滤层析gelfiltrationchromatography
凝胶过滤层析gel filtration chromatogra phy
定义
凝胶过滤层析是生化分离常用色谱技术的一种。凝胶过滤层析是生化分离常用色谱技术的一种。利用具有网状结构的凝胶的分子筛作用, 利用具有网状结构的凝胶的分子筛作用,根据被分离物质的分子大小不同来进行分离，也被称为体积排阻物质的分子大小不同来进行分离，也被称为体积排阻层析（size 层析（size exclusion chromatography）、分子筛chromatography）、分子筛层析（Molecular 层析（Molecular Sieve Chromatography）、凝胶渗Chromatography）、凝胶渗透层析（Gel 透层析（Gel Permeation Chromatography）Chromatography）
应用
凝胶层析法适用于分离和提纯蛋白质、酶、多肽、激素、多糖、核酸类等物质。分子大小彼此相差25%的样品，只要通过单一分子大小彼此相差25%的样品，只要通过单一凝胶床就可以完全将它们分开。利用凝胶的分子筛特性，可对这些物质的溶液进行脱盐、去热源和脱色。进行脱盐、去热源和脱色。
原理
凝胶是一类多孔性高分子聚合物，每个颗粒犹如一个筛子。小分子进入当样品溶液通过凝胶柱时，相对分子当样品溶液通过凝胶柱时，相对分
子葡聚糖珠内质量较大的物质沿着凝胶颗粒间的孔质量较大的物质沿着凝胶颗粒间的孔隙，随着溶剂流动，首先流出层析柱；相对分子质量较小的物质可自由地进相对分子质量较小的物质可自由地进大分子不出凝胶颗粒的网孔，使流量增长，移能进入珠内，经珠动速率慢而最后流出层析柱。之间缝隙中等大小的分子在大分子物质与小分中等大小的分子在大分子物质与小分流出子物质之间被洗脱。这样，经过层析柱，混合物中的各物质按其分子大小不同而被分离。
带网孔的葡聚糖珠
固定相（凝胶）固定相（凝胶）
三维空间网状结构
小分子
样品流动相大分子
分子筛效应：分子筛效应：按分子大小不同, 按分子大小不同,在凝胶受到的阻滞作用有差异有差异, 阻滞作用有差异,从而造成各组分在凝胶柱中的迁移速度不同得到分离。胶柱中的迁移速度不同得到分离。
小分子被延滯
固定相
较快流出
基本概念
外水体积(Vo)是指凝胶柱中凝胶颗粒周围空间的体积，外水体积(Vo)是指凝胶柱中凝胶颗粒周围空间的体积，也就是凝胶颗粒(Vo)是指凝胶柱中凝胶颗粒周围空间的体积间液体流动相的体积。间液体流动相的体积。内
水体积(Vi)是指凝胶颗粒中孔穴的体积。内水体积(Vi)是指凝胶颗粒中孔穴的体积。(Vi)是指凝胶颗粒中孔穴的体积基质体积(Vg)是指凝胶颗粒实际骨架体积。基质体积(Vg)是指凝胶颗粒实际骨架体积。(Vg)是指凝胶颗粒实际骨架体积柱床体积
(Vt)就是指凝胶柱所能容纳的总体积。柱床体积(Vt)就是指凝胶柱所能容纳的总体积。(Vt)就是指凝胶柱所能容纳的总体积洗脱体积(Ve) 洗脱体积(Ve)是指将样品中某一组分洗脱下来所需洗脱液的体积(Ve)是指将样品中某一组分洗脱下来所需洗脱液的体积
凝胶层析柱各种体积示意图（阴影部分）凝胶层析柱各种体积示意图（阴影部分）
分配系数（Kd）
每个溶质分子在流动相和固定相之间有一个特定的分配系数
Ve=Vo+Kd Ve=Vo+KdVi KdVi
Vo，(1)Ve = Vo，Kd = 0 分子完全被排阻于凝胶颗粒之外全部分布于流动相里最先流出Vi，(2)Ve = Vo + Vi，Kd = 1 分子完全不被排阻完全向凝胶颗粒内部扩散在两相分配的比值为1, 1,最后流出在两相分配的比值为1,最后流出<1，(3) 0 <Kd <1，Ve = Vo +ViKd 为溶质以某种程度向凝胶颗粒内扩散
特点：特点：与被分离物质分子的大小和凝胶颗粒孔隙的大小有关
Kd=0
大分子量小分子量
0＜0＜Kd<1 Kd=1
洗脱体积
典型的凝胶类型
交联葡聚糖凝胶：Sephadex? 交联葡聚糖凝胶：Sephadex? 聚丙烯酰胺凝胶：Sephacryl ? 聚丙烯酰胺凝胶：琼脂糖凝胶：Sepharose和Bio-Gel? 琼脂糖凝胶：Sepharose和Bio-Gel? 其它：有机凝胶Sepharon Sepharon，其它：有机凝胶Sepharon，交联聚醚Toyopeal，纤维素凝胶，Toyopeal，纤维素凝胶，改性刚性填料等
葡聚糖凝胶
葡聚糖凝胶（Sephadex）葡聚糖凝胶（Sephadex）具有良好的化学稳定性，良好的化学稳定性，是目前生化产品制备中最常用的凝胶。最常用的凝胶化产品制备中最常用的凝胶。基本骨架：葡聚糖（dextran）; 基本骨架：葡聚糖（dextran）交联剂：,2交联剂：3-氯-1 ,2-环氧氯丙烷使葡聚糖之间通过醚键交联聚合而成的三维空间网状结构葡聚糖凝胶网孔大小可通过调节交联剂和葡聚糖的配比及反应条件来控制。交联度越大，应条件来控制。交联度越大，网孔越小，吸水膨胀就越小。网孔越小，吸水膨胀就越小。交联度越小，网孔越大，交联度越小，网孔越大，吸水膨胀就越大
交联葡聚糖凝胶的化学结构
Sephadex G系列凝胶的分级范围G10 <700 D G15 <1,500 G25 1,000 ~
5,000 G-50 1,500~30,000 G-75 3,000~70,000 G100 4,000 ~150,000 G150 5,000 ~400,000 G200 5,000 ~800,000
葡聚糖凝胶
1．理化性质．葡聚糖凝胶的外观为白色珠状颗粒。它带有大量的羟基，亲水性好，因此在水溶液或电解质溶液中极易膨胀。由于各种型号的葡聚糖凝胶的交联度不同，致使如下理化性质理化性质在理化性质水中的有明显的差异：膨胀度(床体积) 膨胀度吸水量(每克干凝胶在水中充分膨胀时所需的水量) 吸水量筛孔的大小分级范围葡聚糖凝胶的型号不同，其
性质亦不一样
分类
以G型葡聚糖凝胶(经水溶液膨胀)作为固定相，以水溶液作为流动相，对水溶性物质水溶性物质水溶性物质进行分离的层析方法称为葡聚糖凝胶过滤层析葡聚糖凝胶过滤层析。葡聚糖凝胶过滤层析以LH型葡聚糖凝胶(经乙醇或二甲亚砜甲酰胺或N、N二甲基甲酰胺等有机溶剂膨胀)作为固定相，以有机有机溶剂为流动相，对脂溶性物质脂溶性物质溶剂脂溶性物质进行分离的层析方法称为葡聚糖凝胶渗透层析葡聚糖凝胶渗透层析。葡聚糖凝胶渗透层析
2．稳定性．
葡聚糖凝胶在水溶液、盐溶液、碱溶液、弱酸溶液和有机溶剂中是稳定的、不溶解的，而且很少产生化学降解。在中性条件下，葡聚糖凝胶悬浮液可置高温(120℃)消毒0.5h，其性质并不改变。在0.1mol／L HCl溶液中浸泡1~2h，甚至在0.02mol／L HCI溶液中浸泡6个月以上，对分离效果无明显的影响。当暴露于强酸或氧化剂溶液时，则容易使糖苷键水解断裂，因此，要避免与其接触。葡聚糖凝胶欲在室温下长期保存时，应加入适量的防腐剂如氯仿、0.05％NaN3或20％乙醇等，不然微生物将生长。
3．吸附性．
葡聚糖凝胶系弱酸性物质，葡聚糖凝胶系弱酸性物质，这是由于其每克干胶中含10-20μg当量的羧基基团所致。10-20μg当量的羧基基团所致。羧基基团能与分离物中电荷基团尤其是碱性蛋白质) 羧基基团能与分离物中电荷基团(尤其是碱性蛋白质) 发生吸附作用。发生吸附作用。这种吸附作用可以借助提高洗脱液的离子强度得以克这种吸附作用可以借助提高洗脱液的离子强度得以克服。当离子强度大于0 05时一般对弱碱性蛋白质就无当离子强度大于0.05时，一般对弱碱性蛋白质就无吸附力了吸附力了。因此，常用含有NaCl的缓冲液作洗脱液。因此，常用含有NaCl的缓冲液作洗脱液。
琼脂糖凝胶（商品名为Sepharose)
琼脂糖是从琼脂中分离出来的。琼脂糖是从琼脂中分离出来的。在制备过程要将其中含硫酸根和羧基基团的琼脂胶除在制备过程要将其中含硫酸根和羧基基团的琼脂胶除去，得到不带电荷基团的琼脂糖。得到不带
电荷基团的琼脂糖。琼脂糖是由D 半乳糖和琼脂糖是由D-半乳糖和3、6脱水的L-半乳糖连接构成脱水的L 半乳糖连接构成的多糖链。多糖链。这种多糖链在100℃左右时呈液态，这种多糖链在100℃左右时呈液态，当温度下降到45℃以下时呈固态。45℃以下时呈固态。它们之间以氢键方式相互连接就成了线性的双链单环它们之间以氢键方式相互连接就成了线性的双链单环的琼脂糖，经凝聚即呈束状的琼脂糖凝胶。的琼脂糖，经凝聚即
呈束状的琼脂糖凝胶。
该物质对尿素和盐酸胍等破坏氢键的试剂有较强的抵该物质对尿素和盐酸胍等破坏氢键的试剂有较强的抵抗力，pH4 抗力，在pH4.0-9.0的缓冲液中是稳定的。的缓冲液中是稳定的。琼脂糖凝胶室温保存，琼脂糖凝胶室温保存，其物理稳定性超过了聚丙烯酰胺和葡聚糖凝胶。胺和葡聚糖凝胶。琼脂糖凝胶在干燥状态下保存时易破裂，琼脂糖凝胶在干燥状态下保存时易破裂，故一般存放在含防腐剂的水溶液中，同时还要避免剧烈的搅动。含防腐剂的水溶液中同时还要避免剧烈的搅动。琼脂糖凝胶按其浓度来分有Sepharose 2B(2 ％) 、B(2 4B(4％)和6B(6％)。B(4 B(6 Sepharose 6B 的机械强度大于2B ，但是筛孔小于的机械强度大于2 2B。
琼脂糖凝胶的机械强度和筛孔的稳定性都比葡聚糖凝胶好。用琼脂糖凝
胶进行柱层析时，流速可以快些流速可以快些。流速可以快些大孔凝胶，Sephadex的上限大孔凝胶，工作范围的下限几乎是Sephadex的上限可分离MW40万以上MW40万以上的物质可分离MW40万以上的物质可用来分离核酸及病毒
三、聚丙烯酰胺凝胶
聚丙烯酰胺凝胶的商品名称为Bio-gel。它是以甲撑双丙烯酰胺甲撑双丙烯酰胺(双体)作交联剂交联剂，以过甲撑双丙烯酰胺交联剂硫酸铵作催化剂，硫酸铵在N,N,N’,N’,-四甲基乙二胺(TEMED TEMED)加速剂TEMED 的作用下，丙烯酰胺(单体)聚合而成的。将丙烯酰胺丙烯酰胺当改变单体浓度时，就可得到吸水率不同的产物。
凝胶过滤层析实验技术
1、凝胶的选择
2、凝胶的预处理
3、装柱
4、样品的准备
5、上样
6、洗脱和收集
7、凝胶的再生及保存
凝胶过滤层析实验技术
1、凝胶的选择
选择适宜的凝胶是取得良好分离效果的最根本的保证。选择适宜的凝胶是取得良好分离效果的最根本的保证。选取何种凝胶及其型号、粒度，一方面要考虑凝胶的性质，何种凝胶及其型号、粒度，一方面要考虑凝胶的性质，包括凝胶的分离范围渗入限与排阻限）、理化稳定性、强度、分离范围（）、理化稳定性凝胶的分离范围（渗入限与排阻限）、理化稳定性、强度、非特异吸附性质等非特异吸附性质等。对生物样品来说，经常遇到的是两种分离形式。一种是只将对生物样品来说，经常遇到的
是两种分离形式。分子量极为悬殊的两类物质分开，如蛋白质与盐类，称作类分子量极为悬殊的两类物质分开，如蛋白质与盐类，称作类分子量相差不很大的物质加分离或组分离。另一类则是要将分子量相差不很大的物质分离或组分离。另一类则是要将分子量相差不很大的物质加以分离，
如分离血清球蛋白与白蛋白，这叫做分级分离分级分离。以分离，如分离血清球蛋白与白蛋白，这叫做分级分离。后者对实验条件和操作要求都比较高。者对实验条件和操作要求都比较高。类分离
目的是分开样品中分子量悬殊的“较大分子组”和“较小分子组”目的是分开样品中分子量悬殊的“较大分子组”较小分子组”两类物质，两类物质，并不要求分离分子量相近的组分选择凝胶时，应使样品中大分子组的分子量大于其排阻限，选择凝胶时，应使样品中大分子组的分子量大于其排阻限，而小大分子组的分子量大于其排阻限Kd=0，分子组的分子量小于渗入限。也就是说大分子的分配系数Kd=0 分子组的分子量小于渗入限。也就是说大分子的分配系数Kd=0，小分子的Kd Kd＝这样能取得最好的分离效果。小分子的Kd＝1。这样能取得最好的分离效果。例题：从某蛋白质溶液（例题：从某蛋白质溶液（MW=5500D）中除去无机盐，应选择下）中除去无机盐，列哪种凝胶最合适？列哪种凝胶最
合适？
A. Sephadex G-15（分级范围，<1,500 D）（分级范围，）
B. Sephadex G-25（分级范围，1000-5000 D）（分级范围，）
C. Sephadex G-150（分级范围，5,000-400,000 D）（分级范围，）
凝胶粒度的影响
凝胶粒度的大小对分离效果有直接的影响。一般来说，细粒凝胶柱凝胶粒度的大小对分离效果有直接的影响。一般来说，细粒凝胶柱对分离效果有直接的影响流速低，但洗脱峰窄，分辨率高，多用于精制分离或分析精制分离或分析等流速低，但洗脱峰窄，分辨率高，多用于精制分离或分析等。粗粒凝胶柱流速高，但洗脱峰平坦，分辨率低，多用于粗制分离粗制分离，凝胶柱流速高，但洗脱峰平坦，分辨率低，多用于粗制分离，脱盐等。在一般柱层析中，使用干颗粒直径在70μm左右较合适。在一般柱层析中，使用干颗粒直径在70μm左右较合适。对于在水中70μm左右较合适保存的凝胶如琼脂粉凝胶颗粒直径应在150μm左右。150μm左右保存的凝胶如琼脂粉凝胶颗粒直径应在150μm左右。凝胶颗粒大小要均匀，这样流速稳定，要均匀，这样流速稳定，效果较好
同一流速下不同粒度的Sephadex G-25柱的洗脱效果同一流速下不同粒度的Sephadex G-25柱的洗脱效果
2、凝胶的预处理
溶胀：称取适量凝胶干粉，用约10倍蒸馏水浸泡24 小时以上或将干胶加入水里，边加边搅，然后放到沸水浴中加热接近100℃，保持数个小时。根据干凝胶的填充体积计算所需的干凝胶量平衡：用起始缓冲液浸泡凝
胶，直至凝胶液pH与起始缓冲液相同（使凝胶溶胀状态稳定）
3、装柱
一般选
用细长的层析柱作凝胶过滤。进行类分离（如脱盐）时，柱高一般选用细长的层析柱作凝胶过滤。进行类分离（如脱盐）50cm比较合适分级分离时，100cm较为合适比较合适；50cm比较合适；分级分离时，100cm较为合适具体步骤为：具体步骤为：将层析柱垂直固定一般是先在柱内装入约1/3高度的水或缓冲液排走空垂直固定，1/3高度的水或缓冲液将层析柱垂直固定，一般是先在柱内装入约
1/3高度的水或缓冲液排走空气；将平衡好的凝胶搅匀，连续倾入柱中，待其自然沉降至1/4 1/3高时打开1/4将平衡好的凝胶搅匀，连续倾入柱中，待其自然沉降至1/4-1/3高时打开下端出口，让溶剂慢慢流出，继续倒入凝胶至沉降到所需高度。下端出口，让溶剂慢慢流出，继续倒入凝胶至沉降到所需高度。倍柱床体积的起始缓冲液走柱，使凝胶介质充分平衡起始缓冲液走柱平衡，用3-5倍柱床体积的起始缓冲液走柱，使凝胶介质充分平衡，柱床稳定若第一步采用起始缓冲液排空气则该步骤略）。（若第一步采用起始缓冲液排空气则该步骤略）。
层析柱自制简易层祈柱（（ a ）自制简易层祈柱（ 1 ．玻璃橡皮塞；尼龙网）管；2.橡皮塞；3．尼龙网）；普通商品柱；（b）普通商
品柱；双底板层析柱（（c）双底板层析柱（1.洗脱液进出口； 2. 多孔底板；3 ．柱床；恒温水进口；恒温水出口；4 ．恒温水进口；
5 ．恒温水出口；6．可调节的塞子）可调节的塞子）
4、样品的准备
样品的粘度：样品的粘度：粘度大产生介质吸粘度一般要求样品粘度小于附，一般要求样品粘度小于0.01Pa·s 0.01Pa s 样品的浓度：样品浓度以不大于4 样品的浓度：样品浓度以不大于4 浓度不大于为宜，％为宜，样品浓度过大往往导致粘度增大。如果样品浑浊，应先粘度增大。如果样品浑浊，过滤或离心除去颗粒后上柱样品的体积：分析用量一般应低样品的体积：分析用量一般应低体积于总柱体积的5% 5%，于总柱体积的5%，制备用量一般15%或更多20-30%）或更多（为15%或更多（20-30%）。
样品黏度对洗脱曲线的影响
5%，（1）加葡萄糖2 000，使终浓度为5%，相对粘度加葡萄糖2 000，使终浓度为5% 2.5%，11.8;（加葡萄糖2 000，使终浓度为2.5% 11.8;（2）加葡萄糖2 000，使终浓度为2.5%，相对粘度4.2; 加葡萄糖2 000，使终浓度为1%. 粘度4.2; （3）加葡萄糖2 000，使终浓度为1%.
5、上样
具体步骤为：打开层析柱下端出口，使缓冲液流出至刚好达到凝胶胶面沿柱壁缓慢加入样品，打开下端出口，使样品溶液流出至刚好达到凝胶胶面，再取少量起始缓冲液洗涤柱壁加样时
应尽量减少凝胶床面的搅动。加样的方法可以是直接将样品加到层析床表面，或可用微量泵控制
6、洗脱和收集
打开起始缓冲液阀门，连续洗脱。打开起始缓冲液阀门，连续洗脱。用自动部分收集器自动或手动收集，合并同一高峰各管。用自动部分收集器自动或手动收集，合并同一高峰各管
洗脱时应注意的问题：
流速不宜过快且要稳定凝胶溶胀程度）洗脱液的成分也不应改变（凝胶溶胀程度）整个洗脱过程中始终保持一定的操作压可以用水或缓冲液作洗脱液
常用恒流泵控制
流速对洗脱曲线的影响
流速较低，流速较低，分辨率较高
7、凝胶的再生及保存
再生用过的凝胶经0.5M的NaOH和HCl溶液分别处理后可以恢复其性能，或参照凝胶产品说明书凝胶的保存方法0.02%叠氮钠或0.002%双氯苯双胍己烷
应用：测定相对分子质量
标准曲线法对于特定的测定系统，先以3个以上（越多越好）对于特定的测定系统，先以3个以上（越多越好）的已知分子量的标准蛋白特定
的测定系统Ve值Ve作（目前已有配套标准蛋白系列产品出售）过柱，测取各自的Ve值。以Ve作目前已有配套标准蛋白系列产品出售）过柱，测取各自的Ve 纵坐标，LogM作横坐标制做标准曲线。纵坐标，LogM作横坐标制做标准曲线。作横坐标制做标准曲线在同一测定系统中测出未知物质的Ve值便可由标准曲线求得分子量。分子同一测定系统中测出未知物质的Ve值便可由标准曲线求得分子量。中测出未知物质的Ve值便可由标准曲线求得分子量量在10 000～000之间的球形蛋白用此法测出的分子量误差在10％之间的球形蛋白用此法测出的分子量误差在10 量在10 000～150 000之间的球形蛋白用此法测出的分子量误差在10％左右标准曲线
Ve
log M
凝胶过滤层析的特点
优点：操作条件温和，样品回收率可接近100％，并且重复性高。作为脱盐手段，与透析法相比速度快、精度高；与超滤法相比，蛋白活性收率高；分离机理简单，操作参数少，容易规模放大缺点：分辨率不高，对于分子量相差不多的物质难以达到很好的分离料液处理量小，并且样品粘度不宜太高分离操作较慢，由于凝胶层析是以物质分子量的不同作为分离依据的，分子量的差异仅表现在流速的差异上，流速过快会降低分辨率
凝胶过滤层析的基本操作
凝胶过滤层析的基本操 作 Company Document number：WTUT-WT88Y-W8BBGB-BWYTT-19998
凝胶过滤层析的基本操作 ①凝胶介质的选择 根据待分离蛋白质的分子量选择具有相应分离范围的凝胶。对于未知蛋白，应选用分离范围较宽的凝胶，如用Sephacryl S-300。对于分子量在3~5kDa的蛋白质，脱盐时应选用Sephadex G 50或G 25；而对于小分子量多肽物质（1~5kDa），脱盐则应选用Sephadex G 10或Sephadex G 15。 ②凝胶介质的处理和装柱 商品凝胶一般是干粉，使用前应用水溶胀。一般情况下，1份凝胶加十份水，自然溶胀至少24小时。溶胀后，将上清中细小的凝胶碎块弃除，重新搅拌悬起，待凝胶沉淀后，再次弃去凝胶碎块，重复数次，直到液相澄清为止。为加速溶胀，可将凝胶煮沸一小时，该法同时具有灭菌的作用。 凝胶过滤层析柱的长与直径的比例应为50~100:1。装柱时柱体要垂直，先在柱内加入约 1/3柱床体积的水或缓冲液，然后沿柱一侧将缓冲液中的凝胶（凝胶：缓冲液=3：1）搅拌均匀，缓慢并连续地一次性注入柱内。装柱过程中，要避免柱内缓冲液流干，注意保持柱体凝胶均匀无气泡和裂缝。装完后，可用2 ml蓝色葡聚糖溶液检查柱体的均匀性。如柱体均匀，可见蓝色区带均匀平稳地通过凝胶，不留任何条纹。要保持凝胶和缓冲液温度一致，以减少气泡的产生。 ③上样 凝胶过滤柱层析对于样品的体积有严格的要求。样品体积不应超过柱床体积的1~5 %，如超过5 %，则会导致分离效率降低，低于1 %则分离效率也不会提高，所以蛋白质样品应尽可能浓缩至10~20 mg/ml。样品本身对洗脱液的相对粘度不能超过2，样品粘度过高，会使层析区带不稳定，或流速不规律，区带变宽或扭曲。上样前样品应经μm孔径滤膜过滤或10， 000 g离心5 min，去除残渣，加样时避免破坏柱体表面，保持其表面均匀平整。 ④洗脱 洗脱液应保持一定的离子强度以消除凝胶中含有的游离羧基和硫酸根等与蛋白质的结合作用。Sephadex和Sepharose CL凝胶层析所用的洗脱液的离子强度至少应为 mol/L；Sephacryl凝胶应为 mol/L。有时洗脱溶液的离子强度甚至可达 mol/L，以保证蛋白质不与凝胶介质结合。 在凝胶过滤层析过程中，洗脱速度要恒定。流速不应过高，一般在 1ml/min左右，低流速可提高分辨率。可以用恒流泵控制流速。 ⑤分离蛋白的监测和收集 凝胶过滤层析中，分离蛋白的监测和搜集与离子交换层析相同。
凝胶过滤层析gelfiltrationchromatography
凝胶过滤层析gel filtration chromatogra phy 定义 凝胶过滤层析是生化分离常用色谱技术的一种。凝胶过滤层析是生化分离常用色谱技术的一种。利用具有网状结构的凝胶的分子筛作用, 利用具有网状结构的凝胶的分子筛作用,根据被分离物质的分子大小不同来进行分离，也被称为体积排阻物质的分子大小不同来进行分离，也被称为体积排阻层析（size 层析（size exclusion chromatography）、分子筛chromatography）、分子筛层析（Molecular 层析（Molecular Sieve Chromatography）、凝胶渗Chromatography）、凝胶渗透层析（Gel 透层析（Gel Permeation Chromatography）Chromatography） 应用 凝胶层析法适用于分离和提纯蛋白质、酶、多肽、激素、多糖、核酸类等物质。分子大小彼此相差25%的样品，只要通过单一分子大小彼此相差25%的样品，只要通过单一凝胶床就可以完全将它们分开。利用凝胶的分子筛特性，可对这些物质的溶液进行脱盐、去热源和脱色。进行脱盐、去热源和脱色。 原理 凝胶是一类多孔性高分子聚合物，每个颗粒犹如一个筛子。小分子进入当样品溶液通过凝胶柱时，相对分子当样品溶液通过凝胶柱时，相对分
子葡聚糖珠内质量较大的物质沿着凝胶颗粒间的孔质量较大的物质沿着凝胶颗粒间的孔隙，随着溶剂流动，首先流出层析柱；相对分子质量较小的物质可自由地进相对分子质量较小的物质可自由地进大分子不出凝胶颗粒的网孔，使流量增长，移能进入珠内，经珠动速率慢而最后流出层析柱。之间缝隙中等大小的分子在大分子物质与小分中等大小的分子在大分子物质与小分流出子物质之间被洗脱。这样，经过层析柱，混合物中的各物质按其分子大小不同而被分离。 带网孔的葡聚糖珠 固定相（凝胶）固定相（凝胶） 三维空间网状结构 小分子 样品流动相大分子 分子筛效应：分子筛效应：按分子大小不同, 按分子大小不同,在凝胶受到的阻滞作用有差异有差异, 阻滞作用有差异,从而造成各组分在凝胶柱中的迁移速度不同得到分离。胶柱中的迁移速度不同得到分离。 小分子被延滯 固定相 较快流出 基本概念 外水体积(Vo)是指凝胶柱中凝胶颗粒周围空间的体积，外水体积(Vo)是指凝胶柱中凝胶颗粒周围空间的体积，也就是凝胶颗粒(Vo)是指凝胶柱中凝胶颗粒周围空间的体积间液体流动相的体积。间液体流动相的体积。内
凝胶过滤层析分离纯化蛋白质
凝胶过滤层析法分离纯化蛋白质 一、实验目的 1. 了解凝胶层析的原理及其应用。 2. 掌握利用凝胶层析法分离纯化蛋白质的实验技能 二、实验原理 凝胶层析又称凝胶过滤，是一种按分子量大小分离物质的层析方法。该方法是把样品加到充满着凝胶颗粒的层析柱中，然后用缓冲液洗脱。大分子不能进入凝胶颗粒中的静止相中，只留在凝胶颗粒之间的流动相中，因此以较快的速度首先流出层析柱，而小分子则能自由出入凝胶颗粒中，并很快在流动相和静止相之间形成动态平衡，因此就要花费较长的时间流经柱床，从而使不同大小的分子得以分离。 凝胶过滤柱层析所用的基质是具有立体网状结构、筛孔直径一致，且呈珠状颗粒的物质。这种物质可以完全或部分排阻某些大分子化合物于筛孔之外，而对某些小分子化合物则不能排阻，但可让其在筛孔中自由扩散、渗透。任何一种被分离的化合物被凝胶筛孔排阻的程度可用分配系数Kav（被分离化合物在内水和外水体积中的比例关系）表示。Kav值的大小与凝胶床的总体积（Vt）、外水体积（Vo）及分离物本身的洗脱体积（Ve）有关，即：Kav= (Ve-Vo)/(Vt-Vo) 在限定的层析条件下，Vt和Vo都是恒定值，而Ve值却是随着分离物分子量的变化而变化的。分离物分子量大，Kav值小；反之，则Kav值增大。 Ve（洗脱体积）为某一成分从加入样品算起，到组分的最大浓度（峰）出现时所流出的体积。Ve随溶质的相对分子质量的大小和对凝胶的吸附等因素而不同。一般相对分子质量较小的溶质，它的Ve值比相对分子量较大的溶质要大。通常选用蓝色葡聚糖2000作为测定外水体积的物质。该物质分子量大（为200万），呈蓝色，它在各种型号的葡聚糖凝胶中都被完全排阻，并可借助其本身颜色，采用肉眼或分光光度仪检测（210nm或260nm或620nm）洗脱体积（即Vo）。但是，在测定激酶等蛋白质的分子量时，不宜用蓝色葡聚糖2000测定外水体积，因为它对激酶有吸附作用，所以有时用巨球蛋白代替。Vo为层析柱内凝胶颗粒之间隙的总容积，称外水体积。Vi为层析柱内凝胶内部微孔的总容积，称内水体积，Vi=Vt-Vo。测定内水体积（Vi）的物质，可选用硫酸铵、N-乙酰酪氨酸乙酯，或者其它与凝胶无吸附力的小分子物质。 K av是判断分离效果的一个重要参数。当某种成分的K av=0时，意味着这一成分完全被排阻于凝胶颗粒的微孔之外而最先被洗脱出来，即Ve=Vo。当某种成分的K av=1时，意味着这一成分完全不被排阻，它可以自由地扩散进入凝胶颗粒内部的微孔中，而最后被洗脱出来，即Ve=Vt。介于两者分子量之间的物质，其0﹤K av﹤1，在中间位置被洗脱。可见，K av 的大小顺序决定了被分离物质流出层析柱的顺序。 本实验采用葡聚糖凝胶G－75作固相载体，可分离分子量范围在2000～70000之间的多肽与蛋白质。上样样品为牛血清蛋白（M.W.=67000）和溶菌酶(M.W.=14300)的混合溶液。当混合液流经层析柱时，两种物质因K av值不同而被分离。 三、仪器与试剂 1.器材：层析柱、恒流泵、自动部分收集器、紫外检测器、记录仪、量筒、烧杯、试管、吸管、玻璃棒等。 2.试剂 （1）标准蛋白 a.牛血清白蛋白：Mw=67,000（上海生化所） b.溶菌酶：Mw =14,300 （2）洗脱液：0.9% NaCl溶液
凝胶过滤层析常见问题解析
凝胶过滤层析常见问题解析 1. 色谱峰对称性差 出峰上升时，上升缓慢是填料装填过紧，而拖尾是因为装填的太松，此时对称因子及 柱效都很差，出现这种情况就要重现装柱。装柱前要了解填料的压缩系数（压缩因子）如Focurose FF系列的填料的压缩系数是1.15，且装完后要测柱效。 2. 柱床有裂缝或干涸等塌柱现象 检测管路及柱床体系是否有泄露或气泡，必要时重现装柱。 3. 分离度差 (1) 样品和选择的填料不匹配 待分离的样品中目标物质和其它杂质的分子量小于2倍且都在选择的填料的排阻极限 之外或者之内。若样品中目标物质的分子量和其它杂质的分子量小于2倍时，建议尝 试其它方法分离，反之选择凝胶过滤层析时，填料的选择应根据样品中目标分子的大 小选择最接近（大或小都可以）目标分子排阻极限的填料进行分离。 (2) 柱床装填的效果差 通过测柱效等方式确保柱床装填的满足凝胶过滤层析的过程。 (3) 上样量过大 根据样品中目标物质和杂质的分子差异优化上样量，如脱盐等样品中目标分子和杂质 的分子量大于50倍时，上样量可以达到柱床体积的25%，最高不超过30%，若样品 中目标分子和杂质的分子量差异在2-5倍时，通常上样量控制在柱床体积的5%以内。 (4) 流速过快 凝胶过滤的过程流速不宜过快，降低流速在一定程度上可以提高分离度。 (5) 层析填料被污染或老化 随着填料的使用，一些杂质的积累会使层析填料的孔径发生变化（如堵塞，非特异性 吸附积累，微生物污染，破碎等），导致其排阻能力发生偏差而影响分离度。此时可 对填料进行CIP清洗，若清洗后还不能达到分离要求，就要更换新的填料。 (6) 样品自身的问题
凝胶过滤层析的基本操作
凝胶过滤层析的基本操作 ①凝胶介质的选择 根据待分离蛋白质的分子量选择具有相应分离范围的凝胶。对于未知蛋白，应选用分离范围较宽的凝胶，如用Sephacryl S-300。对于分子量在3~5kDa的蛋白质，脱盐时应选用Sephadex G 50或G 25；而对于小分子量多肽物质（1~5kDa），脱盐则应选用Sephadex G 10或Sephadex G 15。 ②凝胶介质的处理和装柱 商品凝胶一般是干粉，使用前应用水溶胀。一般情况下，1份凝胶加十份水，自然溶胀至少24小时。溶胀后，将上清中细小的凝胶碎块弃除，重新搅拌悬起，待凝胶沉淀后，再次弃去凝胶碎块，重复数次，直到液相澄清为止。为加速溶胀，可将凝胶煮沸一小时，该法同时具有灭菌的作用。 凝胶过滤层析柱的长与直径的比例应为50~100:1。装柱时柱体要垂直，先在柱内加入约1/3柱床体积的水或缓冲液，然后沿柱一侧将缓冲液中的凝胶（凝胶：缓冲液=3：1）搅拌均匀，缓慢并连续地一次性注入柱内。装柱过程中，要避免柱内缓冲液流干，注意保持柱体凝胶均匀无气泡和裂缝。装完后，可用2 ml蓝色葡聚糖溶液检查柱体的均匀性。如柱体均匀，可见蓝色区带均匀平稳地通过凝胶，不留任何条纹。要保持凝胶和缓冲液温度一致，以减少气泡的产生。 ③上样 凝胶过滤柱层析对于样品的体积有严格的要求。样品体积不应超过柱床体积的1~5 %，如超过5 %，则会导致分离效率降低，低于1 %则分离效率也不会提高，所以蛋白质样品应尽可能浓缩至10~20 mg/ml。样品本身对洗脱液的相对粘度不能超过2，样品粘度过高，会使层析区带不稳定，或流速不规律，区带变宽或扭曲。上样前样品应经0.2 μm 孔径滤膜过滤或10，000 g离心5 min，去除残渣，加样时避免破坏柱体表面，保持其表面均匀平整。 ④洗脱 洗脱液应保持一定的离子强度以消除凝胶中含有的游离羧基和硫酸根等与蛋白质的结合作用。Sephadex和Sepharose CL凝胶层析所用的洗脱液的离子强度至少应为0.02 mol/L；Sephacryl凝胶应为0.05 mol/L。有时洗脱溶液的离子强度甚至可达0.2 mol/L，以保证蛋白质不与凝胶介质结合。 在凝胶过滤层析过程中，洗脱速度要恒定。流速不应过高，一般在1ml/min左右，低流速可提高分辨率。可以用恒流泵控制流速。 ⑤分离蛋白的监测和收集 凝胶过滤层析中，分离蛋白的监测和搜集与离子交换层析相同。 ⑥层析柱的再生与保存
不同分子量蛋白质的分离—凝胶过滤层析法
不同分子量蛋白质的分离—凝胶过滤层析法 一、实验目的 1. 了解凝胶柱层析的原理及应用。 2. 掌握凝胶柱层析的基本操作技术。 二、实验原理 凝胶层析又称凝胶过滤，是一种按分子量大小分离物质的层析方法。该方法是把样品加到充满着凝胶颗粒的层析柱中，然后用缓冲液洗脱。大分子不能进入凝胶颗粒中的静止相中，只留在凝胶颗粒之间的流动相中，因此以较快的速度首先流出层析柱，而小分子则能自由出入凝胶颗粒中，并很快在流动相和静止相之间形成动态平衡，因此就要花费较长的时间流经柱床，从而使不同大小的分子得以分离。 凝胶过滤柱层析所用的基质是具有立体网状结构、筛孔直径一致，且呈珠状颗粒的物质。这种物质可以完全或部分排阻某些大分子化合物于筛孔之外，而对某些小分子化合物则不能排阻，但可让其在筛孔中自由扩散、渗透。任何一种被分离的化合物被凝胶筛孔排阻的程度可用分配系数Kav（被分离化合物在内水和外水体积中的比例关系）表示。Kav值的大小与凝胶床的总体积（Vt）、外水体积（Vo）及分离物本身的洗脱体积（Ve）有关，即： Kav= (Ve-Vo)/(Vt-Vo) 在限定的层析条件下，Vt和Vo都是恒定值，而Ve值却是随着分离物分子量的变化而变化的。分离物分子量大，Kav值小；反之，则Kav 值增大。 通常选用蓝色葡聚糖2000作为测定外水体积的物质。该物质分子量大（为200万），呈蓝色，它在各种型号的葡聚糖凝胶中都被完全排阻，并可借助其本身颜色，采用肉眼或分光光度仪检测（210nm或
260nm或620nm）洗脱体积（即Vo）。但是，在测定激酶等蛋白质的分子量时，宜用蓝色葡聚糖2000测定外水体积，因为它对激酶有吸附作用，所以有时用巨球蛋白代替。测定内水体积（Vi）的物质，可选用硫酸铵、N-乙酰酪氨酸乙酯，或者其它与凝胶无吸附力的小分子物质。 本实验使用血红蛋白（分子量64,500左右）和二硝基氟苯－鱼精蛋白（DNP－鱼精蛋白分子量12,000左右）的混合物，通过Sephadex G－25层析后达到分离。 三、试剂和器材 1. 材料 血红蛋白溶液（Hb）：取抗凝血（肝素）2mL，离心弃去上层血浆。用0.9％NaCl洗血细胞数次（颠倒混匀，离心，弃去上清液），使离心后上清液几乎无淡黄色为止。于洗净的红细胞中加入5倍体积的蒸馏水摇匀，离心去沉淀（破碎的细胞膜等）即为Hb稀释液备用。 DNP－鱼精蛋白溶液：取鱼精蛋白0.15g溶于10％NaHCO3溶液1.5mL中（此时该蛋白质溶液pH应在8.5～9.0左右）。另取二硝基氟苯0.15g，溶于微热的95％乙醇3mL中，待其充分溶解后立即倾入上述蛋白质溶液中。将此管置于沸水浴中煮沸5分钟，注意防止乙醇沸腾溢出。冷却后加2倍体积的95％乙醇，可见黄色的DNP－鱼精蛋白沉淀。离心（300r/m）5分钟，弃去上清液，沉淀用95％乙醇洗2次，所得沉淀用1mL蒸馏水溶解，即为DNP－鱼精蛋白溶液，备用。 2. 试剂 0.9％ NaCl；10％ NaHCO3）；95％乙醇。 pH 7.0凝酸缓冲液（20mM磷酸二氢钠：20mM磷酸氢二钠＝31mL：69mL） 3. 器材 层析柱（1′15cm）；吸管1mL(′1)；滴管；搅棒试管
凝胶过滤层析法分离纯化蛋白质
实验六凝胶过滤层析法分离纯化蛋白质 一、实验目的 1. 了解凝胶层析的原理及其应用。 2. 掌握利用凝胶层析法分离纯化蛋白质的实验技能 二、实验原理 凝胶层析又称凝胶过滤，是一种按分子量大小分离物质的层析方法。该方法是把样品加到充满着凝胶颗粒的层析柱中，然后用缓冲液洗脱。大分子不能进入凝胶颗粒中的静止相中，只留在凝胶颗粒之间的流动相中，因此以较快的速度首先流出层析柱，而小分子则能自由出入凝胶颗粒中，并很快在流动相和静止相之间形成动态平衡，因此就要花费较长的时间流经柱床，从而使不同大小的分子得以分离。 凝胶过滤柱层析所用的基质是具有立体网状结构、筛孔直径一致，且呈珠状颗粒的物质。这种物质可以完全或部分排阻某些大分子化合物于筛孔之外，而对某些小分子化合物则不能排阻，但可让其在筛孔中自由扩散、渗透。任何一种被分离的化合物被凝胶筛孔排阻的程度可用分配系数Kav（被分离化合物在内水和外水体积中的比例关系）表示。Kav值的大小与凝胶床的总体积（Vt）、外水体积（Vo）及分离物本身的洗脱体积（Ve）有关，即：Kav= (Ve-Vo)/(Vt-Vo) 在限定的层析条件下，Vt和Vo都是恒定值，而Ve值却是随着分离物分子量的变化而变化的。分离物分子量大，Kav值小；反之，则Kav值增大。 Ve（洗脱体积）为某一成分从加入样品算起，到组分的最大浓度（峰）出现时所流出的体积。Ve随溶质的相对分子质量的大小和对凝胶的吸附等因素而不同。一般相对分子质量较小的溶质，它的Ve值比相对分子量较大的溶质要大。通常选用蓝色葡聚糖2000作为测定外水体积的物质。该物质分子量大（为200万），呈蓝色，它在各种型号的葡聚糖凝胶中都被完全排阻，并可借助其本身颜色，采用肉眼或分光光度仪检测（210nm或260nm或620nm）洗脱体积（即Vo）。但是，在测定激酶等蛋白质的分子量时，不宜用蓝色葡聚糖2000测定外水体积，因为它对激酶有吸附作用，所以有时用巨球蛋白代替。Vo为层析柱内凝胶颗粒之间隙的总容积，称外水体积。Vi为层析柱内凝胶内部微孔的总容积，称内水体积，Vi=Vt-Vo。测定内水体积（Vi）的物质，可选用硫酸铵、N-乙酰酪氨酸乙酯，或者其它与凝胶无吸附力的小分子物质。 K av是判断分离效果的一个重要参数。当某种成分的K av=0时，意味着这一成分完全被排阻于凝胶颗粒的微孔之外而最先被洗脱出来，即Ve=Vo。当某种成分的K av=1时，意味着这一成分完全不被排阻，它可以自由地扩散进入凝胶颗粒内部的微孔中，而最后被洗脱出来，即Ve=Vt。介于两者分子量之间的物质，其0﹤K av﹤1，在中间位置被洗脱。可见，K av 的大小顺序决定了被分离物质流出层析柱的顺序。 本实验采用葡聚糖凝胶G－75作固相载体，可分离分子量范围在2000～70000之间的多肽与蛋白质。上样样品为牛血清蛋白（M.W.=67000）和溶菌酶(M.W.=14300)的混合溶液。当混合液流经层析柱时，两种物质因K av值不同而被分离。 三、仪器与试剂 1.器材：层析柱、恒流泵、自动部分收集器、紫外检测器、记录仪、量筒、烧杯、试管、吸管、玻璃棒等。 2.试剂 （1）标准蛋白 a.牛血清白蛋白：Mw=67,000（上海生化所） b.溶菌酶：Mw =14,300 （2）洗脱液：0.9% NaCl溶液
层析柱装填及柱效测定及凝胶过滤层析基础知识
层析柱装填及柱效测定及凝胶过滤层析基础知识 一、实验目的和内容 目的：1. 掌握凝胶过滤层析的原理，掌握凝胶柱柱效测定方法； 2. 熟悉凝胶层析的一般过程； 3. 了解凝胶介质的选择原则和应用领域。 内容：1. Sephadex G-50凝胶柱的装填； 2. 凝胶柱柱效测定； 3．凝胶再生的方法。 二、实验仪器和试剂 1. 实验仪器 层析柱（1×40 cm），砝码天平，玻璃棒，分部收集器，核酸蛋白质检测仪，记录仪，滴头吸管 2. 实验材料和试剂 Sephadex G-50，0.02mol/L pH8.0的PBS缓冲液，5％丙酮（PBS缓冲液作为溶剂） 三、实验步骤 清洗层析柱 测定层析柱的内径、高度，计算所需凝胶的体积 根据Sephadex G-50的膨胀体积，计算所需干凝胶的质量 称取相应质量的干凝胶，加入其总吸液量10倍的0.02 mol/L PBS 在100℃水浴中加热溶胀1小时以上，溶胀之后将极细的小颗粒倾泻出去 用真空干燥器抽尽凝胶中空气，并将凝胶上面过多的溶液倾出 关闭层析柱出水口，向柱管内加入约1/4柱容积的洗脱液 （重复使用的填料，从此步开始） 边搅拌，边将薄浆状的凝胶液连续倾入柱中，使其自然沉降 等凝胶沉降约2-3cm后，打开柱的出口，调节合适的流速，使凝胶继续沉积 待沉积的胶面上升到离柱的顶端约5cm处时停止装柱，关闭出水口 通过2-3倍柱床体积的洗脱液使柱床稳定(流速0.5～1 mL/min) 始终保护凝胶上端有一段液体 准备好恒流泵、分部收集器、核酸蛋白检测仪及记录仪 打开柱上端的螺丝帽塞子，吸出层析柱中多余液体直至与胶面相切 沿管壁将5%丙酮溶液0.6 mL小心加到凝胶床面上，应避免 将床面凝胶冲起（参考完成时间11：30） 打开下口夹子，使样品溶液流入柱内，同时收集流出液，当样品溶液流至与胶面相切时，夹紧下口夹子 按加样操作，用1 mL洗脱液冲洗管壁2次 加入3－4 mL洗脱液于凝胶上，旋紧上口螺丝帽 将层析柱进水口连通恒流泵，柱出水口与核酸蛋白质检测仪比色池进液口相连，比色池出液口再与自动部分收集器相连，用两根导线将检测仪与记录仪连接起来，设置好基线的位置 洗脱时，打开上、下进出口夹子，用0.02mol/LpH8.0的PBS，以0.5～1 mL/min流速洗脱，记录t r(记录仪纸速设为12cm/h，电压200mv；核酸蛋白监测仪检测波长254nm，灵敏度为0.1A)，计算单位高度的柱效（参考完成时间16：00）