动物学实验报告

动物学切片制作实验报告

本次实验历史3天，石蜡制片法的主要操作步骤包括：取材、固定、脱水、透明、浸蜡、包埋、切片、贴片、烤片、染色、封片等过程。其中，每一过程又都包括几个不同的操作，如取材包括选取小鼠、处死、解剖取肾、肾脏切割四步；又如染色包括脱蜡、复水、苏木精染色、镜检、伊红染色、镜检、脱水等操作。每一步、每一个操作都会对实验结果产生或多或少的影响，因此对每一步、每一个操作都要仔细，都要进行探讨、试验，整个实验才可能成功。

实验步骤查询网络资料如下，与此次实验有少许出入，但是基本原理是一样的

通过本次实验，总结几点：①任何实验指导都是有时效性和局限性的，因为不同的准备材料和不同仪器设备可能产生不一样的效果；但是基于同样的实验原理，实验者须切实领会实验步骤的原理方可尽可能的避免失误②由于此次实验准备的石蜡熔点和实验指导上的熔点不同，另外烘箱的温度没有精确固定，导致石蜡浸提这一步在第一次制作的时候基本全部失败，由此同学们积极讨论分析问题询问老师，提升了在实践中发现问题解决问题的能力；

③通过此次实验，我深刻的领会到做任何事情都是需要耐心和认真的；因为看似简单机械的事情往往真正着手去做的时候才发现变数重重，困难不断；但是需要耐心和责任心去改善方法提升解决问题的能力。

实验动物学实验报告

实验动物学实验报告一、实验动物：小鼠二、操作流程：抓取，固定，编号，给药，取血，麻醉，绝育，解剖。三、具体操作 1、抓取：抓取小鼠时，右手抓住小鼠尾巴，不要过于用力，以免惊吓小鼠。左手从小鼠身体后部向前抓（以免小鼠向后缩咬伤自己），抓住小鼠颈部。固定住小鼠后，将小鼠皮肤往上抓，尽量将小鼠背部皮肤抓住。左手将小鼠腹部朝向自己，把小鼠尾巴用左手无名指和小指夹住，这时小鼠腹部皮肤紧绷，不能动弹。 2、固定：通常使用固定器进行固定。将固定器拧开后，抓住小鼠尾巴，使其钻入固定器中，再将拧下的固定器部分装好，使小鼠尾部露出，再将可旋转的铁片固定住即可进行后续实验。 3、编号：编号方式有两种：①剪脚趾编号：把小鼠腹面朝上，在下的脚趾从左至右依次编为1~10号，剪10号脚趾加1~9号脚趾依次编为11~19号，在上的脚趾依次编为20,30,40,50,60,70,80,90号，其余编号与11~19号类似。②打耳钉编号：耳钉上均有唯一编号，通过使用耳钉钳将耳钉打在小鼠耳朵上即可。实验时通常使用的是第一种方式进行编号，第二种编号通常用于需要长距离运输的动物。 4、给药：常用的给药方式有： ①口服给药：即灌胃。将注射器装入药物溶液，装上灌胃针（灌胃针有直头和弯头两种，区别不大）。如上所述，抓取小鼠后，使其头部朝上，尽量呈一直线，取灌胃针，从小鼠嘴角一侧缓缓插入（保持刻度在自己能看到的位置），顺着小鼠口腔食道的弧度让小鼠将针咽入，灌胃过程中如果遇到阻碍一定要及时拔出灌胃针，不可强行灌胃以免伤及小鼠食道以及肺部。灌胃针顺利进入后基本与小鼠身体呈一条直线，注入适量体积后再顺着食道缓缓取出灌胃针。 ②静脉注射：小鼠尾部有3条静脉和1条动脉，3条静脉非别位于背部，及两侧。静脉注射时一般选取两侧静脉，因为其相对于背部静脉更为清晰饱满。将小鼠固定后，用酒精擦拭其尾部静脉，使其充血，以便注射。之后使注射器针孔处朝上，针与尾部呈约30°扎入尾部后向上轻挑，再向内扎入部分，此过程应该比较顺畅，没有阻碍，若阻碍较大则有可能扎入到了皮肤中。扎入后将活塞向后回抽一点可见到有血回流，则说明成功扎入静脉当中，注射适当体积后迅速拔针，用酒精进行消毒。 5、取血：有断尾取血法和眼眶取血法两种。本次实验使用的是眼眶取血法。抓取小鼠，固定其头部用手指将其上下眼睑分开，露出其眼球并且不能闭上。用玻璃毛细管从其上眼角处扎入眼球后方毛细血管从，使血液顺着毛细管留下，取血完成后快速将毛细管取下。 6、麻醉：抓取老鼠，使其头部朝下，使其腹部脏器向胸腔靠拢，露出腹部空腔，以免刺伤脏器。将注射器竖直扎入靠近后腿部腹腔，刺入之后稍微向前倾斜但不要向前刺入，一般注入0.5mL麻醉剂即可。随后拔出针，方向小鼠，等待几分钟后即可麻醉。 7、绝育：绝育手术是通过剪除雌鼠卵巢或雄鼠输精管来实现的。将麻醉的雌鼠背面朝上，从其胸腔和尾部之间向下三分之一处剪开一个小口，用镊子将其卵巢取出，上面呈现红色斑点的部分即为卵巢，用剪刀将这一部分剪除，然后用缝合针线将其缝合，缝合方法为将针穿过后，将线缠绕镊子两圈再逆时针缠绕两

动物学实验报告--肖敬旺.

广州大学实习报告项目名称：动物学实习学院：生命科学学院专业年级：13生物技术学号：1314300053 姓名：肖敬旺指导老师：舒琥、易祖盛、吴毅、李海燕胡俊杰、侯丽萍、余文华实习单位：广州大学生命科学学院实习时间：2014.5.26—2014.5.30 广州大学教务处制

正文：一、实习目的(宋体，加粗，四号,左对齐) 动物学是一门内容十分广博的学科，研究对象是动物各类群的形态结构、分类和有关的生命活动、发育规律、以及动物和外界环境之间多种多样关系的科学。人们掌握了这些规律，就可能很好地认识和利用动物，使它能更对课堂知识的理解，做到理论联系实际；学会认识动物的特点，并且通过其特点对动物进行鉴定，了解其用途，以及在农业生产中的预防；掌握动物标本的采集以及制作方法；通过野外实习，提高学习的积极性与主动性对课堂知识的理解，做到理论联系实际；学会认识动物的特点，并且通过其特点对动物进行鉴定，了解其用途；掌握动物标本的采集以及制作方法；通过野外实习，提高学习的积极性与主动性；掌握所采集动物的种类名称、分类地位、分类依据、采集场所、采集方法、标本制作方法和生境描述等。二、实习内容（宋体，加粗，四号、左对齐，） 5月26日至5月30日，在老师们的带领下，我们进行了为期5日的动物学实习。本次实习分为两个部分，分别是广州市内的陆上动物实习和深圳东山珍珠岛的临海动物实习。 5月26日，早上8:30在生化楼下进行了简单而重要的动物学实习动员。老师在动员大会上阐明了本次实习的目的、内容、要求和注意事项。随后我们变出发去中山大学博物馆参观，其中收藏的标本有国家一级保护动物大熊猫、金丝猴等37种，以及护士鲨、豹纹鲨、翻车鱼等百余种珍稀动物标本，此外还有北极熊、企鹅、鸵鸟等国外的珍稀动物标本；古生物化石标本500多件，其中7.8米长萨斯特鱼龙、3. 5米的新中国龙、兴义龙以及鳞齿鱼等具有极高的科研价值和展览价值。说实话这是第一次接触了那么多的动物标本。随后我们便出发去广州动物园，广州动物园于19 58年建成开放，目前饲养和展览着国内外400多种近5000头 (只) 动物，是我国三大城市动物园之一。在布局上，北部的麻鹰岗顶为猩猩馆、狒狒等灵长类兽舍，南坡设置中小型兽笼，西南坡有熊山、狮山、虎山、河马池等。与麻鹰岗隔湖相望的大片山岗地上，分布着猴山、熊猫馆、大象房、长颈鹿馆、犀馆、斑马馆、鹿舍等。 5月27日，早上8:30在生化楼下集中，随后我们去科学中心坐公交车向长洲岛出发。长洲岛的实习主要是捕捉昆虫，由于田野上的昆虫数量多而且种类繁多，所以我们主要在长洲岛附近的田野上进行捉虫活动。刚开始的时候，由于对捕虫网比较陌生，使用起来不太熟练，所以捕获的昆虫数量较少。但经过一个小时后，逐渐能熟练使用捕虫工具，慢慢捕获到一定数量和种类的昆虫。天气比较炎热，但是我们捕捉的非常愉快。下午，我们在生化楼504对捕获回来的昆虫进行处理，为今天捕捉到的标本展翅并制作标本，进行分类。 5月28日，早上8:30在生化楼集合，乘车向深圳东山珍珠岛出发。经过了将近３个小时的路程，我们来到了红树林并在此进行实习。红树以凋落物的方式，通过食物链转换，为海洋动物提供良好的生长发育环境，同时，由于红树林区内潮沟发达，吸引深水区的动物来到红树林区内觅食栖息，生产繁殖。由于红树林生长于亚热带和温带，并拥有丰富的鸟类食物资源，所以红树林区是候鸟的越冬场和迁徙中转站，更是各种海鸟的觅食栖息，生产繁殖的场所。红树林另一重要生态效益是它的防风消浪、促淤保滩、固岸护堤、净化海水和空气的功能。盘根错节的发达根系能有效地滞留陆地来沙，减少近岸海域的含沙量；茂密高大的枝体宛如一道道绿色长城，有效抵御风浪袭击。我们以小组为单位沿着泥沙

动物实验报告

实验动物学实验报告学院：学号：姓名时间：实验一：小鼠实验

一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法； 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法； 3、掌握小鼠的标记方法； 4、掌握小鼠的基本采血技术； 5、掌握小鼠的常用给药方法； 6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置；二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠； 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛；三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠； 3）染色法用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。

4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠，尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血），右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺入深度小鼠2～3mm。当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，由于血压的关系，血液即流人玻璃管中。得到所需的血量后，拨出毛细管。若手法恰当，小鼠约可采血0.2～0.3ml。 3）心脏取血动物仰卧固定在固定板上，剪去心前区部位的被毛，用碘酒酒精消毒皮肤。在左侧第3～4肋间，用左手食指摸到心搏处，右手取连有4～5号针头的注射器，

(完整word版)2015 动物细胞培养技术实验报告

一、实验目的 1、学习并掌握动物细胞培养的无菌操作技术。 2、学习并掌握细胞传代培养的方法。 3、学习并掌握用倒置荧光显微镜观察细胞细胞形态。二、实验原理细胞培养（cell culture）：细胞在体外条件下生长，细胞不再形成组织。动物细胞培养（animal cell culture）就是从动物机体中取出相关的组织，将它分散成单个细胞（使用胰蛋白酶或胶原蛋白酶）然后，放在适宜的培养基中，让这些细胞生长和增殖。由于细胞具有生长和自我复制的能力，为细胞体外培养和研究提供可能。动物细胞培养可分为原代培养和传代培养。原代培养（primary culture）即直接从动物机体分离、获得组织细胞，在无菌条件下，用胰蛋白酶消化或机械分散等方法，将动物组织分散成单个细胞开始首次培养长出单层细胞的方法。传代培养（subculture）当细胞生长增值达到一定密度，用胰蛋白酶将细胞消化分散成单细胞，将细胞转移到新的培养皿中扩大培养的方法。高等生物是由多细胞构成的整体，在整体条件下要研究单个细胞或某一群细胞在体内的功能活动是十分困难的，但如果把或细胞拿到体外培养、增殖并进行观察和研究，则方便简单的多。被培养的动物细胞是非常好的实验对象和实验研究材料，对体外培养的活细胞进行研究可以帮助人类探索防治各种疾病途径和机制，也可以人为地诱导和改变细胞的遗传性状和特性，因此，动物细胞体外培养技术是研究细胞分子机制非常重要的实验手段，被广泛应用于医学、生物技术、基因工程等研究领域。三、细胞培养相关设施及材料 1、细胞培养室无菌操作区：只限于细胞培养及其它无菌操作，与外界隔离。孵育区：培养箱设定的条件为37℃，5%CO2。制备区：培养液及有关培养用液体的制备，液体制备后应该在净化工作台进行过滤除菌。储藏区：包括冰箱、干燥箱、液氮罐等。清洗区和消毒灭菌区：清洗区为相对污染区，消毒灭菌区与清洗区分开。 2、细胞培养常用基本设施：荧光显微镜、超净工作台、孵箱、电热鼓风干燥箱、冰箱、液氮罐、消毒器、恒温水浴槽、滤器等。细胞培养常用器皿：培养瓶、培养板、培养皿，玻璃瓶、吸管，离心管、冻存管，注射器，烧杯、量筒等。 3、细胞培养用品的清洗、消毒新玻璃器皿要用5%稀盐酸浸泡，以中和其表面碱性物质：刷洗：硫酸清洁液浸泡：浓硫酸+重铬酸钾+蒸馏水；冲洗：流水冲洗15-20次，蒸馏水冲洗3次，三蒸水漂洗1-3次。所有需灭菌的器械、物品灭菌前均需包装，防止灭菌后污染。使用时放入超净工

动物实验报告

动物实验（小鼠）的一般操作技术实习日期：2007—11—13 一目的和要求：通过实际操作，使学生掌握实验的一般操作方法，包括动物的抓去和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。二实习内容： 1 实验动物的抓取 2 实验动物性别的鉴定 3 实验动物编号的标记方法 4实验动物被毛的去除 5 实验动物的给药途径和方法 6 实验动物的麻醉 7实验动物的采血 8 实验动物的处死方法 9 解剖三实验的方法 1 小鼠的抓取：抓取时先用手将鼠尾提起，放在实验台上，轻轻拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和头颈部皮肤，将鼠置于左手中心，用左手无名指和小指按住尾巴和后肢，即可做其他实验操作作用。 2 小鼠性别的鉴定：抓取小鼠后，观察动物肛门与生殖器之间的距离。距离远的为雄性，距离近的为雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睾丸的轮廓。 3 小鼠编号的标记方法：用被毛染色法做小鼠编号。用苦味酸（黄色），一般左前肢为1，左侧腹部为2，左后肢为3，头颈部为4，背部为5，尾根部为6，右前肢为7，右腹部为8，右后肢为9。用两种颜色可以染到99。 4 小鼠被毛去除：有剪毛法，拔毛法，剃毛法，用硫化钠脱毛法。 5 给药途径和方法：给药途径有经口灌胃法，经呼吸道吸入，经皮肤吸入和注射给药法。用一支特制的灌胃针进行灌胃，小鼠一般给1.5ml以下。用注射器抽好液体，然后抓取小鼠，针头延侧角通过食管进入胃内，然后将液体注入。 6 小鼠的麻醉：麻药有挥发性的和非挥发性两种。给药途径有吸入性麻醉，注射给药。小鼠一般用腹部麻醉的方法。用水合氯醛300ml／kg，根据小鼠的体重给药0.25ml。抓取小鼠后，使针头和腹部成30度的角，刺入腹腔，回抽若无回血或者肠内容物可以注入。注入麻药5分钟后，小鼠失去知觉。 7 小鼠的采血的方法：有静脉采血法，尾部采血法，眼眶静脉采血法和心脏采血法。将小鼠装入固定盒中，露出尾部，用二甲苯图擦，使尾静脉充盈。用锋利的刀片切断一根尾静脉即可用毛细管采血，也可用细注射器从尾静脉采血。 8 小鼠的处死方法：用颈椎脱臼的方法或者注射过量的麻药使小鼠死亡。 9 解剖：从腹部开始，查看腹部脏器，以肝脏胃脾肾输尿管姨小肠大肠膀胱前列腺性腺顺序。然后再看胸部，看到肺脏心脏胸腺等器官，并在直视的情况下进行了心脏的采血。然后再看颈部的解剖。最后解剖头部。四讨论和结论：通过此次实验，我们学到了实验动物的一般操作技术，如抓取和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。为以后进入临床进行实验研究做好了初步的准备。

实验动物学实验报告大鼠,小鼠,小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作

实验一小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄) 三、实验步骤 1、抓取与固定,标记 2、去毛 3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射 4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法 5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉 6、处死:脊椎脱臼法 7、解剖: 雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明) 雌性:双角子宫、卵巢肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺四、实验结果 1、抓取与固定标记: 抓取:抓小鼠的尾根部固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指与食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指与无名指将尾巴固定在手掌面。并标记: 2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0、5ml 3、注射给药: 腹腔注射: 从下腹部的两侧进针 ,进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指与拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0、5ml生理盐水。注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。 4、采血从眼角内侧0、5cm处进针眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。 5、麻醉: 0、5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功 6、处死: 脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死 7、解剖: 雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺雌性:双角子宫、卵巢 3、7、2 肾上腺:米粒大小胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状 3、7、4 ,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,

青蛙解剖实验报告

2012 级应心班《人体解剖生理学》实验内容一、人体基本组织的观察（一）实验目的观察并掌握人体四大基本组织的结构特点及功能。（二）实验材料四大基本组织的永久装片；显微镜（三）实验要求正确使用显微镜，观察各种组织的基本特征。注：实验前请复习四大基本组织的结构特点和功能。二、人神经系统的形态观察（一）实验目的 1. 观察脊髓的形态结，了解脊神经的组成。 2. 观察脑干的的形态结构和脑神经进出脑干的部位，了解脑干中的主要神经核团和纤维束的位置。 3. 观察间脑、小脑和大脑的形态结构，辨认大脑半球的主要沟、回和分叶。（二）实验材料脊髓模型；脑干模型；人脑模型；脊髓横切片；显微镜（三）实验要求观察各模型加深对神经系统的认识；正确使用显微镜，观察脊髓横切片。注：实验前请复习神经系统的结构组成和功能。三、反射弧的分析和脊髓反射的观察（一）实验目的 1. 通过用脊蛙（去除脑保留脊髓的蛙，成为脊蛙）分析屈肌反射的反射弧的组成部分，探讨反射弧的完整性与反射活动的关系。 2. 观察脊髓的反射活动并研究脊髓反射中枢活动的若干特征。（二）实验原理（三）材料与方法 1 材料 1.1 实验动物青蛙 1.2 器材蛙类手术器械 1 套，铁支架，电刺激器，刺激电极，秒表，棉球，纱布，培养皿 2 个，烧杯 1.3 药品 0.5% 硫酸， 1%硫酸 2 试验方法与步骤 2.1 制备脊髓动物：取青蛙一只，用剪刀横向插入口腔，从鼓膜后缘处剪去颅脑部，保留下颌部分。以棉球压迫创口止血，然后用止血钳夹住下颌，悬挂在铁支架上。 2.2 正常脊髓反射的观察 2.3 搔扒反射：将浸以 0.5%硫酸的小滤纸片一块，贴在青蛙腹部下段的皮肤上，可见四肢向此处搔扒，直到去掉滤纸片为止，之后用清水冲洗皮肤。 2.4 反射时的测定：用培养皿分别盛 0.5%和 1%硫酸溶液，将青蛙左后肢的脚趾尖浸于硫酸溶液中，同时用秒表记录从浸入时起到发生屈腿发射所需的时间，即反射时。观察后立即将该足趾浸入清水中浸洗几次，然后用纱布拭干。按上法重复三次，求其平均值，此值即为反射时。 2.5 将两对电极连接到刺激器 2.6 反射弧的分析 2.6.1 剥去左肢皮肤：在左侧后肢趾关节上方，将皮肤作一环状切口，将足部皮肤剥掉。 2.6.2 1% 硫酸刺激左趾尖，观察腿部活动情况。 2.6.3 1% 硫酸刺激右趾尖，观察腿部活动情况。 2.6.4 1% 硫酸滤纸片贴在左小腿切口上面的皮肤上，观察活动情况。 2.6.5 分离右侧大腿背侧坐骨神经干，两侧结扎，中间剪断，1%硫酸刺激右趾尖，观察腿部活动。 2.6.6 刺激神经两端：以连续方式分别刺激右侧坐骨神经中枢端和外周端，观察腿部反应。 2.6.7 破坏脊髓：以探针捣毁青蛙脊髓后，以连续方式分别刺激右侧坐骨神经中枢端和外周端，观察腿部反应。 2.6.8 刺激腓肠肌：直接刺激右侧腓肠肌，观察有何反应。

动物标本实验报告

动物标本实验报告篇一：动物剥制标本的制作动物剥制标本的制作一、实验目的动物剥制标本是一种利用动物皮张制成的标本，适用于大部分脊椎动物，尤其是鸟类和哺乳类，在动物学教学和科研中有着广泛的应用。剥制标本分为真剥制和假剥制两类。真剥制就是将动物皮张还原为生活姿态加以展示。所谓假剥制就是不再将皮张还原为原来动物的姿态，而是简单的展示皮张上体现的特征。本实验为动物剥制实验中的真剥制。二、实验用品 1. 工具：解剖刀，镊子，棉花，铁丝，剪刀，针线，解剖盘等。 2. 材料：家兔 3. 药品：樟脑粉三、实验方法 1. 杀死家兔：利用折颈法 2. 清洁标本：如有血污沾染，用棉花醮少许冷水，细心将血污擦拭干净。 3. 剥皮：将家兔头朝左侧腹面向上放在实验台上，自胸部中线处将毛分开，向后到肛门处纵向切开皮肤，切时不

能过深，以见到肌肉为止，不要割开肌肉或腹腔，以防内脏和血污染毛皮。再继续将腹部两侧，背部及后腿部的肌肉与皮肤分离，并从股骨近端处剪断，再将生殖器、直肠与皮肤连接处剪断，清除尾基部的结缔组织，用手轻轻捻搓尾部，使皮与肌肉松动，然后一手握住尾根，另一手用拇指和食指卡住尾根，然后用力拉出尾椎骨。剥头部时，需特别注意，将毛皮继续上剥，用解剖刀边划割边上拉毛皮。眼耳处要翻剥，千万不能割破皮肤，耳朵的软骨小心剪断，否则兔子的耳朵竖不起来。沿着眼睑边缘细心地剖割，切勿割破眼睑和眼球。眼球剥离后，继续剥到上下嘴唇的前端为止，保留少许上、下唇皮跟头骨相连。随后用骨剪截断颈椎，使躯干和头骨分离。前后肢要小心翻剥，后肢翻剥到脚踝处，留腓骨，剥净趾骨基部的肌肉(留下趾骨，便于生态整形)，将皮上附着的脂肪和肌肉除净。头骨放入水中煮熟，仔细的将脑髓，肉等都清理干净。剥皮要特别小心，总体上是先剥身体再剥四肢，头部要特别小心。 4. 涂防腐剂：涂时要均匀，特别是颅腔内要多涂些，涂时要注意尽量勿碰脏毛皮，要都涂遍不能有漏除的地方。 5. 做支架：取三根合适长度的铁丝，头部脊柱、四肢共用三根铁丝（左前肢与右前肢，左后肢与右后肢，头部脊柱连通尾各一根)，要设计好各部分的长短比例，三者拧在一起。

动物学实验报告

广州大学实习报告项目名称：动物学实习学院：生命科学学院专业年级：学号：姓名：肖敬旺指导老师：实习单位：广州大学生命科学学院实习时间： 13生物技术 1314300053 舒琥、易祖盛、吴毅、李海燕胡俊杰、侯丽萍、余文华 2014.5.26—2014.5.30 广州大学教务处制正文：一、实习目的 (宋体，加粗，四号,左对齐) 二、实习内容（宋体，加粗，四号、左对齐，） 5月26日至5月30日，在老师们的带领下，我们进行了为期5日的动物学实习。本次实习分为两个部分，分别是广州市内的陆上动物实习和深圳东山珍珠岛的临海动物实习。 5月27日，早上8:30在生化楼下集中，随后我们去科学中心坐公交车向长洲岛出发。长洲岛的实习主要是捕捉昆虫，由于田野上的昆虫数量多而且种类繁多，所以我们主要在长洲岛附近的田野上进行捉虫活动。刚开始的时候，由于对捕虫网比较陌生，使用起来不太熟练，所以捕获的昆虫数量较少。但经过一个小时后，逐渐能熟练使用捕虫工具，慢慢捕获到一定数量和种类的昆虫。天气比较炎热，但是我们捕捉的非常愉快。下午，我们在生化楼504 对捕获回来的昆虫进行处理，为今天捕捉到的标本展翅并制作标本，进行分类。 5月28日，早上8:30在生化楼集合，乘车向深圳东山珍珠岛出发。经过了将近３个小时的路程，我们来到了红树林并在此进行实习。红树以凋落物的方式，通过食物链转换，为海洋动物提供良好的生长发育环境，同时，由于红树林区内潮沟发达，吸引深水区的动物来到红树林区内觅食栖息，生产繁殖。由于红树林生长于亚热带和温带，并拥有丰富的鸟类食物资源，所以红树林区是候鸟的越冬场和迁徙中转站，更是各种海鸟的觅食栖息，生产繁殖的场所。红树林另一重要生态效益是它的防风消浪、促淤保滩、固岸护堤、净化海水和空气的功能。盘根错节的发达根系能有效地滞留陆地来沙，减少近岸海域的含沙量；茂密高大的枝体宛如一道道绿色长城，有效抵御风浪袭击。我们以小组为单位沿着泥沙滩采集贝壳，因为路不好走，所以走得时候很小心翼翼。虽然鞋子都沾满了泥，不过非常开心。随后我们坐车去我们住宿的地方，吃过晚饭后我们便在篮球场上对我们今天的贝壳之类的进行分类。 5月29日，早上9点钟我们出发去南澳岛参观了卖鱼的市场，认识了许多之前未见过的种类，随后我们便去买东西吃了，哈哈蹭吃，非常开心。下午我们便出发去小岛收集贝壳，最爽的事情莫过于坐飞艇了，那速度就是快，特别是在超越别人的那一刻，内心不免有一丝自豪感，在到达岛屿后我们便分工合作，去海边，沙滩等地方寻找我们所期望的东西，我们发现了许多海胆海参之类的东西，甚至有些东西开始把海胆直接弄到就吃，太厉害了，持续了将近3个小时的海边收集工作我们坐船回去了，还是那种感觉，坐船非常爽。晚上我们便又是在球场上面开始工作了，一起工作的时光总是那么美好，但是又是那么短暂的。 5月30日，上午，我们在珍珠岛上观看工人植珠过程操作，并去了标本室看标本，大家也购买了一些珍珠粉之类的。中午吃完饭后，大家整理个人内务后乘车返回大学城。至此，整个动物学实习过程结束。 ……… 三、实习总结或体会（宋体，加粗，四号、左对齐，）

动物实验报告修订稿

动物实验报告集团文件发布号：（9816-UATWW-MWUB-WUNN-INNUL-DQQTY-

实验动物学实验报告学院：学号：姓名时间：实验一：小鼠实验一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法； 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法； 3、掌握小鼠的标记方法； 4、掌握小鼠的基本采血技术； 5、掌握小鼠的常用给药方法； 6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置；二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠； 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛；三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠

尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠； 3）染色法用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。 4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml 血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血

动物生理学实验报告

专业班级：学号：姓名：同组人：实验日期：年月日室温：大气压：实验序号：一实验名称：动物生理学实验基础知识介绍一、实验目的掌握生理学实验的基本方法和技术，了解是生理学实验设计的基本原则，培养科学的思维方法、实事求是的科学态度和严谨的学风，通过书写实验报告，提高分析、归纳问题及文字表达能力。二、实验原理生理学是建立在实验和观察基础上的学科，生理学实验是生理学理论知识的依据与来源。生理学实验方法一般可分为离体实验法和在体实验法两类。在体实验法又可分为急性实验和慢性实验两种。生理学实验仪器一般由刺激系统、探测系统、信号调节系统和记录系统四大部分组成。三、主要仪器、试剂、材料及装置图 1、手术器械：手术刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、毁髓针、止血钳、玻璃分针等 2、生理仪器：生物信息采集系统、刺激器、示波器、传感器、肌槽、蛙心夹等 3、试剂：任氏液、台氏液、乙酰胆碱、肾上腺素等四、实验步骤、现象及记录 1、教师提出生理学实验的要求 2、讲解生理学的常规实验方法 3、展示生理学仪器和器械，并简单讲解用途五、实验结果及数据处理六、实验讨论及思考题解答 1、生理学实验的重要性在于何地生理学实验有什么具体的要求和规则答：生理学实验的重要性在于学习生理学的实验方法及科学的思维方法，有助于提高学生的实验能力、分析能力、创新能力和科学素养。生理学实验要求：实验前认真预习实验指导，复习相关理论知识；实验中，认真听讲，按要求进行各项实验操作，仔细认真求实的记录实验数据；实验后，整理实验台面，处理实验废弃物和实验动物，检查实验设备及器械，认真分析实验数据，撰写实验报告。 2、生理学实验报告的一般格式、内容和要求是什么答：格式与内容参照楚雄师院化生系化学与生命科学实验室实验报告的标准格式内容。填写实验报告要求数据真实，不允许编造数据，认真分析总结实验中的问题。 3、举例5种常用手术器械的名称、持握方法和用途。 4、举例3种生理学实验常用仪器设备的性能和主要用途。

实验动物学实验报告

实验动物学实验报告 Document number：NOCG-YUNOO-BUYTT-UU986-1986UT

实验一大、小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。三、实验步骤 1、抓取和固定抓取：左手抓小鼠的尾根部固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。同样操作将大鼠抓取和固定 2、性别鉴定：抓取和固定小鼠观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。 3. 给药灌胃法按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。

固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。用大鼠重复同样操作注射给药皮下注射用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤，右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无牵阻，推送药液时注射部位隆起。拨针时，以手指捏住针刺部位用大鼠重复同样操作腹腔注射以左手固定小鼠，使腹部向上，右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。用大鼠重复同样操作尾静脉注射先将动物固定在暴露尾部的固定器内，用75％酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张，

动物实验报告

实验动物学实验报告学院: 学号: 姓名时间: 实验一:小鼠实验一、实验目得 1、掌握小鼠抓取、固定得基本方法; ２、掌握小鼠得雌雄鉴别方法; 3、掌握小鼠得标记方法; ４、掌握小鼠得基本采血技术; ５、掌握小鼠得常用给药方法; ６、掌握小鼠得解剖方法,熟悉内部脏器得自然位置; 二、实验材料 1、实验动物:每组两只雌鼠,两只雄鼠; 2、实验器械及试剂:鼠笼;小鼠固定器与小鼠固定板;眼科剪;眼科镊;解剖刀;1ml 注射器;毛细玻璃管;灌胃针;苦味酸染料;葡萄糖液;2%水合氯醛; 三、实验内容及方法 1、小鼠得抓取与固定抓取时先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指与食指抓住小鼠得两耳与颈部皮肤,将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可、这种在手中固定方式,能进行实验动物得灌胃、皮下、肌肉与腹腔注射以及其她实验操作。 2、小鼠得雌雄鉴别雄鼠得阴囊明显,雄鼠可见阴道开口与五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门得距离判定,近者为雌,远者为雄、另外,雌鼠肛门与生殖器之间有一无毛小沟,而雄鼠则在肛门与生殖器之间长毛。

3、小鼠得标记方法１)耳孔法用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口,左耳为十位,右耳为个位。２)剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠; 3)染色法用毛笔将苦味酸涂在动物得不同部位,注意逆着毛发生长方向刷。４、小鼠得基本采血１)剪尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾,将鼠尾在４5℃温水中浸泡数分钟,也可用酒精棉球涂擦,使局新血管扩张。将鼠尾擦干,再用刀片剪去1—2ｍm,让血液滴入盛器或直接用移液器吸取,同时自尾根部向尾尖按摩。取血后,先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处,使伤口外结一层火棉胶薄膜,保护伤口、也可采用切割尾静脉得方法采血,三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0、2~0、3ｍl血,切割后用棉球压迫止血、这种采血方法在大鼠进行较好,可以较长得间隔时间连续取血,进行血常规检查。 2)眼眶后静脉丛取血当需中等量得血液,而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠,尽量捏紧头部皮肤,使头固定,并轻轻向下压迫颈部两侧,引起头部静脉血液回流困难,使眼球充分外突(示眼眶后静脉丛充血),右手持毛细玻璃管,沿内眦眼眶后壁向喉头方

仓鼠科学实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除仓鼠科学实验报告篇一：生物实验报告探究小鼠走迷宫获取食物的学习行为实验报告提出问题：小鼠是否能经过训练，在很短的时间内形成一种新的行为？作出假设：仓鼠能够在短时间内形成一种新的行为。制定计划：1.准备硬纸板、剪刀、透明胶、铅笔等工具用来制作迷宫。 2.准备坚果、花生等食物放在迷宫的尽头。 3.准备一只仓鼠从固定地点放好食物，让仓鼠在迷宫中自由活动，必要时可引一下。若仓鼠去到食物存放地点，让其进食一段时间后放回饲养笼中。4、数次训练，直至仓鼠可以进入迷宫就直奔食物存放点为止。实验过程：结论：仓鼠在经过训练后能在短时间内形成一种新的行为。

篇二：探究仓鼠学习行为教学设计探究仓鼠的学习行为 ——实验课教学设计实验介绍本实验课可以在学生学习完济南版七年级上第二章第三节《动物的行为》之后安排，以仓鼠为实验动物，鼓励学生小组互助合作，自行选择实验器材，自主拟定实验方案，兼顾科学性与可行性，多角度探究“仓鼠的学习行为”，共同体验生物科学探究的六大环节：提出问题→作出假设→制定计划→实施计划→得出结论→表达交流。实验目标 1.观察仓鼠的形态特征，了解仓鼠的动物行为及原因。 2.学会对照、测量等研究方法，尝试独立设计探究方案。 3.认同生物与环境相适应的观点，在认同生物多样性的基础上，爱护动物，保护环境。学情分析初一的学生具有强烈的求知欲，喜欢操作一些趣味性的实验，因此给学生提供在花鸟鱼虫市场上常见的仓鼠作为实验动物，能提高学生积极探索的欲望，主动进行探究活动。抓住这些特点，活动始终将“疑”作为一条主线贯穿全程，引导学生不断寻求、探究解决问题的新方法，拓宽学生思维的领域，逐步培养学生形成立体思维空间。实验的重、难点

昆虫学的实验报告

昆虫学的实验报告篇一：昆虫学实习报告一、实习目的通过到野外采集昆虫并制成标本，掌握野外采集昆虫的方法、了解不同昆虫的生存环境。掌握昆虫的形态特征，学习昆虫的识别方法和种类、了解昆虫与植物病虫害的关系。二、实习地点白羊沟、流村、北农校园三、实习时间 201x年9月24号、25号四、实习内容采集昆虫 1.使用工具捕虫网、毒瓶、镊子、手套、采集管等。 2.采集昆虫的方法网捕：网捕主要用来捕捉会飞的昆虫，或停在植物上的昆虫。网捕的方法如下：当昆虫飞来，迎面用网捕捉，当虫子入网后，使网底向上甩，连虫子同网底一齐翻到上面来，然后再用手或试管伸入网内将虫子取出来。扫捕：此法主要用在大片的草丛和茂密的灌木中。当采集者走到茂密的藏有虫子的草丛中时，用扫网在上面左右摆动，一面扫一面前进，将有许多小虫子集中到网底，或者被甩入网底，连接着胶管中。尤其

在途中采集而时间仓促的时候，边扫边走也可以得到许多标本。震落法：在黄昏或中午炎热时，可用震落法采到金龟子、锹形虫、象甲、叶甲、蝽象等种类。对于蚜虫、蓟马等小型昆虫，可以直接击落到网中或硬纸片上，也可用小毛笔收集到酒精中。观察和搜索法：要采到需要的标本，必须了解昆虫的生活习性及活动场所。有许多昆虫营隐蔽生活，在树皮下和树干内可采到天牛、吉丁虫、小蠹虫、木蠹蛾、透翅蛾、象甲和扁甲、郭公虫的幼虫或其它虫期。蚜虫、木虱或某些蚧虫的分泌物常可为人发觉，也可根据爱食其分泌物的蚂蚁、蝇或天敌瓢虫的存在来采集蚜虫及蚧虫，同时也常可采到其天敌草蛉、蝎蛉、瘿蚊等；沫蝉幼虫的分泌物常在枝上形成泡沫，其自身躲在里面。由植物的被害状发现昆虫，如咀嚼式口器昆虫为害后的植物叶片，常留下啃食过的痕迹和留下的粪便。 3、捕捉昆虫的时间及地点昆虫种类繁多，生活习性各异，一般来说，一年四季均可采集，但由于昆虫的发生期和植物生长季节大致是相符的，每年晚春至秋末，是昆虫活动的适宜季节，也是一年中采集昆虫的最好时期。对于一年发生一代的昆虫，应在发生期采集。采集的季节，主要根据自己的目的和需要来决定。一天之间采集的时间也要根据不同的昆虫种类而定。日出性的昆虫，多自上午10时至下午3时活动最盛。夜出性昆虫在日落前后及夜间才能采到。温暖晴朗的天气采集收获较大，而阴冷有风的天气，昆虫大多蜇伏不动，不易采到。采集地点也要依据采集目的而定，根据不同种所处生态环境而选择

实验动物学实验报告

实验一大、小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。三、实验步骤 1、抓取和固定 1.1抓取：左手抓小鼠的尾根部 1.2固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。 1.3同样操作将大鼠抓取和固定 2、性别鉴定： 2.1抓取和固定小鼠 2.2观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。 2.3同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。 3. 给药 3.1 灌胃法 3.1.1按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。 3.1.2固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液

吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。 3.1.3当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。 3.1.3用大鼠重复同样操作 3.2 注射给药 3.2.1皮下注射 3.2.1.1用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤， 3.2.1.2右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无牵阻，推送药液时注射部位隆起。拨针时，以手指捏住针刺部位 3.2.1.3用大鼠重复同样操作 3.2.2腹腔注射 3.2.2.1以左手固定小鼠，使腹部向上， 3.2.2.2右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。 3.2.2.3用大鼠重复同样操作 3.2.3尾静脉注射 3.2.3.1先将动物固定在暴露尾部的固定器内， 3.2.3.2用75％酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张， 3.2.3.3以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，用中指从下面托起鼠，右手

动物学草履虫实验报告doc

动物学草履虫实验报告篇一：草履虫的系列实验草履虫的系列实验纪星宇（XX4）一、目的与内容 1.学习原生动物的采集、单克隆培养和鉴种 2.探究原生动物的应激性，理解原生动物应激性的原始性 3.观察原生动物的无性生殖过程和规律 4.观察草履虫食物泡的变化，研究食物泡中的PH变化 5.比较原生动物和后生动物组织细胞对刺激反应的异同 6.学习常用试剂的配制和使用 *7.了解原生动物有性生殖的方式和决定因素，研究接合生殖前后大核系的变化内容：草履虫的采集与鉴种草履虫横二分裂的观察草履虫食物泡的观察草履虫趋性的实质后生动物激素对原生动物的影响常用生物学试剂对原生动物的作用草履虫相对接合型的鉴定光线对接合生殖的影响草履虫接合生殖前后接合型的变化二、材料与用品新鲜稻草、烧杯、滤纸、酒精灯、玻璃棒、过滤漏斗、玻璃导管、广口瓶、标签纸、台灯、表面皿、

微吸管、试管、PH试纸、镜台尺、载玻片、盖玻片、培养皿、离心机、棉球、恒温箱、托盘天平、量筒、温度计、中性红纯乙醇溶液、2%秋水仙素溶液、1%乙醚溶液、0.02%詹纳斯绿B染液、20%丙酮溶液、碳酸氢钠、蒸馏水、0.01%肾上腺素、0.01%胰岛素、碘液三、操作与观察（一）草履虫的采集与鉴种 1.配制稻草培养液取新鲜稻草（注意清洗以除去肥料和农药）10g和碳酸氢钠1g，加入1L 清水于烧杯中煮沸10~15min，直至液体成为清亮的黄褐色。趁热过滤后煮沸10min，在烧杯上蒙上双层洁净纱布，保温在20~30℃，培养3d 直至液面出现灰白色薄膜。通入充足空气备用。 2.采集自然水体中的草履虫在水流缓慢，有机质丰富的水体中取带有微小白色浮渣的自然水。取池塘、下水道、水田、湖沼各一处，分别采水250ml（注意水样不要混入泥沙渣滓，运输时不要封口）。依次编号为A、B、C、D。水面上20cm处施加垂直光照24h。 3.草履虫的单克隆培养在表面皿中放适量蒸馏水，在体视显微镜下吸取单个草履虫（可利用其趋电性分离以

原生动物实验报告

动物实验（小鼠）的一般操作技术一目的和要求：通过实际操作，使学生掌握实验的一般操作方法，包括动物的抓去和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。二实验内容： 1 实验动物的抓取 2 实验动物性别、发情和配种的鉴定 3 实验动物编号的标记方法 4实验动物被毛的去除术 5 实验动物的给药途径和方法 6 实验动物的麻醉 7实验动物的采血 8 实验动物的处死方法 9 雄性不育小鼠的制备三实验的方法 1 小鼠的抓取：抓取时先用手将鼠尾提起，放在实验台上，轻轻拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和头颈部皮肤，将鼠置于左手中心，用左手无名指和小指按住尾巴和后肢，即可做其他实验操作作用。 2 实验动物性别、发情和配种的鉴定： 1抓取小鼠后，观察动物肛门与生殖器之间的距离。距离远的为雄性，距离性别鉴定： ○ 近的为雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睾丸的轮廓, 雌性肛门与生殖器之间有一无毛 2 动物仰卧保定，观察乳头。雄性乳头不能明显，雌性乳头明显。小沟。○ 发情鉴定（阴道分泌物检查）材料：生理盐水，蒸馏水，显微镜，载玻片，细棉签，性成熟小鼠原理：哺乳类雌性动物性成熟后出现情动周期，啮齿类动物在动情周期不同阶段，阴道膜发生典型的变化。操作: . 用左手拇指和食指固定小鼠的颈部，将小鼠倒放在手掌上，用左手小指固定小鼠尾巴，然后用适宜大小的移液器吸取20至30ul生理盐水于小鼠阴道内反复抽吸5次。 2. 将抽吸得到的液体滴在用多聚赖氨酸预先处理过（防止脱片）的载玻片上，用移液器吸头将其均匀涂抹开。 3. 涂片自然干燥后，用甲醇固定3分钟。 4. 待其干燥后，先用瑞氏染液染色5至8分钟，冲洗后立即吉姆萨染液染色5至8分钟，用水漂洗后自然干燥，待检。 5. 显微镜下观察阴道涂片的变化，见下图。附：小鼠发情周期阴道细胞的变化小白鼠性周期4～5天，发情持续时间大约9～12小时或20小时，排卵是在发情开始后 2～3小时。配种鉴定：○1 阴道栓法 ○2 涂片检查法。 3 小鼠编号的标记方法：用被毛染色法做小鼠编号。用苦味酸（黄色），一般左前肢为1，左侧腹部为2，左后肢为3，头颈部为4，背部为5，尾根部为6，右前肢为7，右腹部为8，右后肢为9。用两种颜色可以染到99。 4 小鼠被毛去除：给药途径和方法：有剪毛法，拔毛法，剃毛法，用硫化钠脱毛法。 5