高钾血症实验

高钾血症实验
高钾血症实验

机能学实验报告

实验日期:

带教教师:

小组成员:

专业班级:

家兔正常心电图及高钾血症的实验治疗

一、实验目的

1、掌握家兔高钾血症模型的复制方法。

2、探讨家兔高钾血症时ECG变化的特点以及帐篷“T”的机制。

3、比较碳酸氢钠溶液或极化液治疗高钾血症的作用。

二、实验原理

血清钾高于 5.5mmol/L为高钾血症(正常值:3.5~5.5mmol/L)。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位和有效不期缩短,传导性、自律性、收缩降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为:

(1)T波高尖,基底部较窄,形如帐篷。高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏。

(2)P波减低,最后可消失。乃因心房肌麻痹、心房静止所致。如此时窦房结激动尚能通过结间传导束下传至心室,则可形成“窦-室传导”,困此心室律还比较整齐

(3)S-T段压低与T波呈一斜线。或出现由Q R S波与S T-T相融合的双相波。S-T段也可抬高。(4)Q R S时间加宽,R波低小。

(5)严重时可产生传导阻滞、阵发性室性心动过速、心室颤动或心脏停搏。高钾血症的抢救可采用:一侧耳缘静脉注入已预先准备好的抢救药物(10%氯化钙2m1/kg,或4%碳酸氢钠5m1/kg,或葡萄糖—胰岛素溶液7m1/kg)。本实验通过静脉推注氯化钾使血钾浓度短时间内大量升高形成急性高钾血症,观察心电图变化,了解高钾血症对心脏的毒性作用,以及对高钾血症的急救措施。

三、实验仪器设备

生物信号采集整理系统、离子分析仪、大动物手术器械(手术剪、眼科剪、小镊子、止血钳、玻璃分针、动脉夹、注射器等)、气管插管、动脉套管、注射用乌拉坦溶液、3%氯化钾溶液、4%碳酸氢钠溶液、极化液、生理盐水。

四、实验方法与步骤

1.家兔的称重、麻醉和固定:家兔称重后,用注射用乌拉坦溶液,按4ml/kg从耳缘静脉缓慢注入。麻醉时密切注意兔子的状态。麻醉的深浅,可根据兔子呼吸的深度和速度、角膜反射的有无和敏感度,四肢和腹壁肌肉的紧张性,以及趾缝、皮肤夹捏反应等进行判断。当上述活动或反应明显减弱或消失时,立即停止给药。在采用静脉注射时,速度应当缓慢,注射过快,易导致动物死亡。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上。

2.手术与血管插管:颈部剪毛,在喉头下缘沿颈中线切开皮肤4-5cm,分离颈前肌肉暴露气管,做气管插管,并用丝线固定。在右侧按家兔血管常规分离方法分离颈外静脉,插入连接三通管的颈静脉插管以备输液,在左侧肌肉深部分离出颈总动脉,插入连接三通管的总动脉插管。颈动脉导管用于取血,用颈外静脉的三通管连接静脉输液装置,缓慢注入生理盐水(5-10滴/min),以保持管道通畅。

3.测正常血钾浓度:用EP管通过颈总动脉取血0.5ml,用电解质测量仪测量动物给予钾溶液前的血浆钾度。

4.描记心电图:将针形电极分别插入家兔四肢皮下。导联线按右前肢(红),左前肢(黄),左后肢(绿) ,右后肢(黑)的顺序连接,依生物机能实验系统使用方法描记实验前兔子的正常心电图波形。

5.复制高钾血症动物模型:通过输液装置,经颈外静脉从慢到快调滴速滴注3%的KCl溶液6滴/第一个3min,15滴/第二个3min,20滴/min及以后(不超20滴/min),密切观察和记录出现高钾时典型的心电图变化,一旦心电图出现正弦波时或QRS波群与T波发生融合时,立即调慢静脉滴注Kcl的速度,维持在6至10滴/min,等待,当心电图出现典型高钾血症表现是,经颈外动脉取血0.5ml作血钾测定。

6.高钾血症的抢救:在心电图出现典型高钾血症改变,或获取血钾浓度增高的报告后,立即对家兔实施抢救。通过颈外静脉快速滴注抢救药物3滴/min,3分钟后调至20滴/min,待心电图基本恢复正常时,再次记录心电图改变,并由颈总动脉采血0.5ml,测定救治后的血钾浓度。

五、实验结果

实验中家兔不同时期的心电图(电子版实验结果粘贴)

上图为正常时心电图

上图为急性高血钾时的“M”形心电图

上图为高血钾后恢复正常的心电图

家兔高钾血症时ECG、血钾的改变及其实验治疗

六、分析与讨论

1、血钾浓度升高为什么会引起心电图图形发生变化?

答:(1)心肌细胞兴奋性↓:使得P波压低,增宽或消失。

(2)传导性↓:是PR间期延长,QRS复合波增宽。

(3)血钾浓度升高时,0期去极化速度和幅度减小,加之邻近细胞兴奋性降低,使得传导性下降;膜对钾离子通透性升高,使得4期钾离子外流增加,使自动化除极降低,使自律性下降;钙离子内流减少,使收缩性降低。

(4)细胞膜电导性↑,3期钾外流加速:复极化3期的T波高耸,反映动作电位的QT 间期缩短或正常。

(5)自律性降低,传导性降低和心肌兴奋性降低,故心电图上有心率减慢、甚至停止搏动。

2、4%碳酸氢钠溶液治疗高钾血症的机理是什么?

答:(1)造成碱血症,促进钾离子向细胞内转移,有酸中毒效果更明显;

(2)血浆和细胞内钠离子浓度升高有利于激活钠泵,使钾离子向细胞内转移;

(3)高渗作用:血容量增加,使细胞外液容量迅速增加,使血钾浓度暂时下降;

(4)钠离子有直接对抗高钾毒性的作用。

3、极化液治疗高钾血症的机理是什么?

答:(1)心肌细胞在复极过程中的离子交换主要是Na + Ca 2+ 离子的内流、K + 离子的外流,从而使心肌细胞内恢复负压,回“极化状态”,但此时细胞膜内外离子的分布尚未恢复,心肌细胞未达到真正的极化状态,还必须依靠钠-钾泵,由ATP供给能量,排出Na + Ca 2+ ,摄回K + ,使细胞内外离子的分布恢复到静息状态———极化状态。

(2)极化液中胰岛素可以促进多种组织摄取葡萄糖,如骨胳肌、心肌、脑垂体等。可血中K + 、脂肪酸及氨基酸含量降低;缺血损伤的心肌纤维中的钾外逸,且能量不足,而化液在提供糖、氯化钾的同时供给胰岛素,可使细胞外钾转回心肌细胞内,改善缺血心肌的代谢;促进葡萄糖进入心肌细胞内,抑制脂肪酸从脂肪组织释放,从而减少中性脂肪滴在缺血心肌中堆积。

(3)稀释作用,稀释血清中钾离子的浓度。

七、结论

1.钾离子对维持细胞代谢及调节细胞内外酸碱平衡和渗透压,保持细胞钾平衡电位有重要作用,当血清钾浓度高于5.5mmol/L时,即为高钾血症。

2.碳酸氢钠与极化液可以治疗急性高钾血症。

3.高钾血症时心电图表现为P波低平甚至消失,QRS波增宽幅度减小,ST段抬高延长,T 波高尖。

4.高钾血症严重,治疗不及时可出现心脏震颤甚至心脏停止跳动。

5.试验中我们看到一些数据与理论值有所偏差,这主要是由于以下因素造成的:①兔的机体

生理情况。②实验过程中的人为因素,例如:注射药物的速度及剂量、抢救时机与取血时机的把握等。

此次实验操作失败的分析

此次高钾实验操作过程中,多方面因素导致了实验的失败,我们小组针对此次实验结果进行了深刻的反思。这是一次深刻的教训,让我们认识到了实验中的不足,知识的欠缺,操作的规范,心态的调整,人员的配合等因素在实验研究中的重要,我们想通过这次的失败,暴露了我们的不足,明白了实验的风险,我们要不断学习改正完善自己,正确规避和面对实验风险和结果。以下是造成操作失误的结果分析:

1.没有熟练掌握好家兔颈部手术操作,游离颈总动脉和颈总静脉时,没有分清血管和周围组织,插管时与周围组织混淆,导致插管插到筋膜里。

2.动脉插管中结扎不紧,导致家兔动脉失血,增加了再次插管难度,进行多次动脉插管,耽误了实验进度。

3,家兔复制高钾模型血症模型的阶段,没有严格控制输入KCl的速度,心电图出现M波后,过早停止给KCl,导致第一次测血钾浓度达不到高钾模型,进行第二次滴注时,未能及时停止给KCl,,并且没有采取胸外按压,推注呼吸兴奋剂等抢救措施,导致了家兔最终死亡。

4.实验课前我们没有进行预习,对实验注意事项及突发情况没有及时处理方案也是导致这次实验失败重要原因。

5.最后一点,团队合作没有进行合理分配,操作过程中太过慌乱,没有做到稳,准。为实验失败埋下伏笔。

通过此次实验,我们进行了认真总结并深刻认识到团队合作,实验心态,基本操做技能,实验原理和理论在实验中的重要性,缺一不可,我们发现了自己的不足,并引以为鉴,杜绝此类事故再次发生,最后对死去的兔子感到深深的内疚。最后的最后,感谢老师的耐心指导!

机能实验报告-高血钾

机能学实验报告 实验日期:2015年6月10日 带教教师: 小组成员: 专业班级:预防医学一大班 家兔正常心电图及高钾血症的实验治疗 一、实验目的 1、掌握家兔正常心电图波形的生理意义 2、掌握家兔高钾血症模型的复制方法 3、观察家兔高钾血症心电图波形变化特征 4、掌握高钾血症治疗的方法(4%碳酸氢钠或极化液) 二、实验原理 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症(正常值:3.5~5.5mmol/L)。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位和有效不应期缩短,传导性、自律性、收缩性降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为:①P波和QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深的S波;②T波高尖:高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏;③多种类型的心律失常。高钾血症的抢救可采用:①注射Na+,Ca2+溶液

对抗高血钾的心肌毒性;②注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞。本实验通过静脉滴注氯化钾,使血钾浓度短时间内快速升高造成急性高钾血症,观察心电图变化,测定血钾浓度,了解高钾血症对心脏的毒性作用以及对高钾血症的抢救治疗措施。 三、实验仪器设备 生物信号采集处理系统、离子分析仪、大动物手术器械、气管插管、动脉套管、注射器、头皮针、取血器、电解质测定仪 四、实验方法与步骤 1.称重、麻醉和固定动物:家兔称重后,用3%注射用戊巴比妥钠,按1ml/kg从 耳缘静脉缓慢注入。麻醉时密切注意兔子的状态,当兔子角膜反射敏感度,肌肉紧张性明显降低,立即停止给药。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上, 2手术与血管插管:颈部剪毛,在喉头下缘沿颈中线切开皮肤4-5cm,分离颈前肌肉暴露气管,做气管插管,并用丝线固定。在右侧按家兔血管常规分离方法分离颈外静脉,插入连接三通管的颈静脉插管以备输液,缓慢注入生理盐水(5-10滴/min)以保持管道通畅。在左侧肌肉深部分离出颈总动脉,插入连接三通管的总动脉插管。 3. 测正常血钾浓度:用EP管通过颈总动脉取血0.5ml,用电解质测量仪测量动物给予钾溶液前的血浆钾度。 4.描记心电图:将针型电极分别插入家兔四肢皮下。导联线按右前肢(红),左前肢(黄),左后肢(绿) ,右后肢(黑)的顺序连接,依生物机能实验系统使用方法描记实验前兔子的正常心电图波形。 5.复制高钾血症动物模型:通过输液装置,经颈外动脉从慢到快调滴速滴注3%的KCl溶液6滴/第1min,10滴/第2min,16滴/第3min及以后(不超20滴/min),密切观察和记录出现高钾时典型的心电图变化,一旦心电图出现正弦波时或QRS波群与T波发生融合时,立即调慢静脉滴注Kcl的速度,维持在6滴/minde,等待,当心电图出现典型高钾血症表现是,经颈外动脉取血0.5ml 作血钾测定。 6.高钾血症的抢救:在心电图出现典型高钾血症改变时,立即对家兔实施抢救。通过颈外静脉快速滴注极化液(20—30滴/秒)30min,待心电图基本恢复正常时,再次记录心电图改变,并由颈总动脉采血0.5ml,测定救治后的血钾浓度。 五、实验结果

南华大学医学院机能学实验题集答案(全)

1、简述家兔颈总动脉插管术的操作步骤? (1)插管前需使家兔肝素化(耳缘静脉入肝素)把动脉插管装满抗凝液体(肝素)以备用。 (2)将分离出来的颈总动脉离心端结扎,近心端用动脉夹住,另一线打一活扣置于动脉夹与离心端结扎线之间。 (3)插管时以左手拇指及中指拉住离心端结扎线头,食指从血管背后轻扶血管,右手持持眼科剪,使这与血管呈45度角,在紧靠离心端结扎处向心一剪,剪开动脉壁的周径1/3左右。 (4)然后持动脉插管,以其尖端斜面与动脉平均地向心插入动脉内,用细线扎紧并在插管分叉处固定。 内容精要:(1)肝素化,(2)结扎,(3)剪血管,(4)插管,固定,2、3、4、(略),考试不作要求。 2、简述家兔气管插管术的操作步骤? (1)暴露气管, (2)在气管中段的两软骨环间剪开气管,大小为其的一半,在向头端作一小纵切口呈倒“T”形。 (3)用镊子夹住T形切口的一角,将气管插管由切口向心端插入管腔内。 (4)用粗线扎紧插入端,再将结扎固定于“Y”形气管分叉处,以防止气管插管脱出。 3、简述怎样复制争性代谢性酸中毒的动物模型并进行疗? (1)经耳缘静脉注入12%的磷酸二氢钠溶液,剂量为5ml/kg体重。 (2)给药后10分钟,经三通管取血,检测各项血气和酸碱指标, (3)根据注入酸性液后测得BE值,按下式进行补碱治疗。所需补充5%NaHCO3的ML数=BE绝对值×体重(kg)×0.5 (4)经5%碳酸氢钠治疗后10min,取血并检测各项指标,观察是否恢复到接近正常水平。 4、简述怎样复制家兔急性中毒肾功能衰竭模型? 答:取一正常家兔,在实验前24小时称重,按1ml/kg肌肉注身1%HgCb。 5、机能学实验中使用哪几种麻醉方法对动物进行麻醉? (1)注射麻醉,又分为静脉注射,肌肉注射;皮下注射,淋巴囊注射五种 (2)吸入麻醉,多采用开放式。 (3)局部麻醉,常用1%盐酸普鲁卡因液体作皮下浸润麻醉。 6、简述家兔输尿管插管的操作步骤? (1)从耻骨联合向上沿腹中线作5cm长的切口,没腹白线打开腹腔。 (2)将膀胱轻拉到腹壁外,暴露膀胱三角,仔细辩认输尿管。 (3)分离输尿管周围组织,分别用线在两侧输尿管近膀胱处结扎。 (4)在结扎上方剪一斜口,向肾脏分别插入充满生理盐水的塑料管,用线结扎固定。 7、简述家兔膀胱插管的操作步骤? 答:(1)从耻骨联合向上沿中线作4-5cm长的切口,沿腹白线打开腹腔。 (2)将膀胱轻拉出腹外,于双侧输尿管(靠近膀胱处)下方穿一线,轻轻将膀胱向上翻起,将线绕向下方结扎尿道,以防止尿液从尿道口流出。 (3)用两个止血钳对称提起膀胱顶部的无血管区,在两钳之间的膀胱顶部无血管处剪一小切口,切口大小以刚插入插管为宜。 (4)在确认插管经切口民通向膀胱内时,再插入插管约0.5cm深. (5)然后将切口旁的膀胱和插管一同用双粗线扎紧,用线因定在插管侧钩上。 8、简述制备蟾蜍坐骨神经干标本的操作步骤? 答:取出蟾蜍一只,破坏脊髓,剪除躯干部位内脏,去除背部及大、小腿的全部皮肤,沿正中线将脊柱剪分为两半,并从耻骨联合中央剪开两则大腿,使两腿完全分离,取一后肢,腹面上认清坐骨神经及其走向,在靠近脊柱外穿线结扎,并且结扎线上剪断神经,线头保留约1cm。用镊子夹住线头,提起坐骨神经进行分离,沿坐骨神经沟分离出大腿部的坐骨神经并用玻璃分针轻轻勾起坐骨神经干,剪断所有分支,分离至胭窝处可见有两条分支,即胫神和腓神经,剪去任一分支,继续分离留下的另一分支,直至腿趾端。且线结扎,在结扎线的远端,剪断腓神经,也保留一小段线头(约1cm)全长须在8cm以上。 9、简述制备蟾蜍离体工作心的操作步骤? 答:取蟾蜍一只,破坏脑和脊髓后,仰卧固定在蛙板上,从剑突下将胸部肤向上剪开,然后剪开胸骨,打开胸包,暴露心脏,在主动脉干下方引两根线,一条在主动脉上端结扎作插管的牵引用,另一根则在动脉圆锥上方,系一松结用于结扎固定蛙心插管,左手持左主A上方的结扎线,用眼科剪在松结上方左主A根部剪一小斜口,百手将盛有少许任氏液,大小适宜的蛙心插管由剪口处插入动脉圆锥,当插管头到达动脉圆锥时,再将插管稍向后退。并转向凡室中央方向,在心室收缩期插入心室,蛙心插管插入心室后,插客内的任氏兴面随心室的舒缩而上下波动。如蛙心行管已进入心室,则将邓先准备好的结扎线扎紧,关固定有蛙心插管的侧钩上以免蛙心插管滑出心室,剪断主A左右分支,轻提蛙心插管以抬高心脏,用一线在V窦与腔V交界处作一结扎,结所线应尽量下压,以免伤V窦,在结扎线外侧剪断所有组织,将蛙心游离,用新鲜任氏液反复换洗蛙心插管内含血的任氏液,直至蛙心插管内无血液残留为止。 14、15气胸、胸腔积液模型的复制及其针对性的救治: 气胸息制:将与水检压计相连的粗注射头在家兔右胸第4或5肋间锁骨中线处,沿肋骨上缘垂直插入胸腔,当看到水检压计内红色水柱上焉波动时,说明针头已进入胸膜腔内,应停止进针。观察记录胸内压。找开三通开关,使胸膜腔与大氯相通而形成气胸。 救治:注射器上述通开关相连接,抽出胸腔的气体,恢复初始胸内压。 胸腔积极液复制:用注射器将生理盐水注入胸腔。 救治:将胸腔内生理盐水抽出,恢复胸内压。 17、怎样对实验性有机磷酸酯类中毒动的进行解救。 耳缘V注射0.2%硫酸阿托品溶1.0ml/kg+2.5%PAM,2.0ml/kg,PAM应缓慢推论,前者为M受阻断药,拮抗Ach过高的M样作用,后者可恢复AchE的活性。 18、复制实验性肝功能受损的方法有哪些? 答:在实验前48h先取小鼠称重,皮下注射5%四氯化碳油溶液0.1ml/10g,模拟肝功能受损的实验模型。 19、有哪些方法能复制动物实难性肾功能衰竭? (1)在实验前24h先取小鼠称重,腹腔注射0.04%氯化汞溶液0.2ml/10g体重,模拟肾衰模型。 (2)开胸,钳夹肾动脉,使肾休克。 29、对动物实验性高钾血症应如何救治? 补充:高血钾症模型复制的方法: A:耳缘静脉推注2%KCL溶液1lm/kg,以0.5ml/min. B:用4%氯化钾(15-20滴/min)耳缘静脉滴入. 救治(1)由耳缘静脉注入10%氯化钙2ml/kg

疾病学基础 实验六 高钾血症

实验六家兔高钾血症 一、实验目的 1.复制家兔高钾血症的动物模型。 2.了解动物高钾血症时心电图变化的特征,并设计抢救和治疗方案。 二、实验内容 1.家兔高钾血症动物模型的复制。 2.观察动物高钾血症时心电图变化的特征, 3.设计动物高钾血症的抢救和治疗方案。 三、实验准备 【实验动物】家兔 【仪器设备】计算机生物信号采集处理系统、心电电极输入线、兔手术台、哺乳类动物手术器械、三通管、双凹夹、铁支架、注射器(1ml,5ml,10ml)、输液装置、小儿头皮针等。 【药品试剂】1.5%戊巴比妥钠溶液、2%、5%、10%氯化钾生理盐水溶液、10%氯化钙溶液、5%碳酸氢钠溶液、葡萄糖-胰岛素溶液(50%葡萄糖4ml加1单位胰岛素)、生理盐水。 四、实验方法 1.动物称重、麻醉和固定家兔称重后,用1.5%戊巴比妥钠溶液(2ml/kg)从耳缘静脉缓慢注入。待动物自然倒下,将动物仰卧固定在实验台上,并保持耳缘静脉通畅。 2.心电图描记 (1)将心电电极输入端插头插入计算机生物信号处理系统插口。 (2)将针型电极分别插入动物四肢踝部皮下,心电导联线按右前支(红)、左前支(黄)、右后支(黑)、左后支(绿)的顺序联接。或变换心电输入线的三个端点可以测出标准I、II、III导联心电信号。 (3)用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形,方法是选择心电图的I导联,将右前肢电极插在下颏部皮下,左前肢的电极插在胸壁,相当于心尖部位的皮下。这样高血钾的异常波形出现早而清楚。 (4)开机启动计算机生物信号采集处理系统,设置心电图描记参数:低通滤波:上限频率40HZ。在MedLab中依次选择“实验/常用生理学实验”→“心电图测量”。MedLab放大器和采样参数设置如下:

《机能实验学》教学大纲

《机能实验学》教学大纲 课程编码:03230010。 学分:4.5。 总学时:80学时。 先修课程:人体解剖学、生物化学、生理学、病理学、病理生理学、药理学。 适应专业:临床医学、口腔医学、预防医学。 教材: 1、《生理科学实验教程》,丁报春主编,2006年版,人民卫生出版社. 参考教材: 2、胡还忠. 医学机能学实验教程,北京:科学出出版社,2007年, 3、秦晓群,邓汉武,邓恭华等. 机能实验学.北京:世界图书出版公司,2002. 4、郑恒. 医学机能实验学. 北京:中国医药科技出版社,2003. 5、尢家騄,朱新裘,马建中. 机能实验学.长沙:湖南科技出版,2004. 一、课程地位、目的和任务 (一)课程的地位机能学科包括生理学、病理生理学及药理学,将此三门学科的实验内容有机融合起来形成的一门综合实验学科——机能实验学,是我校教学改革的重要成果。机能实验学包括三部分:机能学基础实验、机能学综合实验和学生创新性实验。机能学基础实验是通过经典的生理学、病理生理学及药理学实验,培养学生掌握基本实验技术和方法,熟悉和掌握各种实验仪器和手术器械的使用,独立完成实验操作、结果分析、实验报告等,为学习机能综合实验打下坚实的基础;机能学综合实验是以消化系统、循环系统、呼吸系统和泌尿系统为主线,将每一系统的生理、药理、病理生理的内容有机融合成为综合性实验,通过观察动物在正常状态下其功能活动规律、复制某些疾病的急性动物模型后观察其病理状态下功能活动的改变并探讨分析疾病发生发展过程和机制、自行选择和利用某些药物及手段进行治疗并分析其药物学作用原理及其作用机制等,这一贴近临床和理论联系实际的实验模式,以达到培养和提高学生综合全面分析解决问题的能力,求实、严谨的科学作风和基本科研素质,及协作、互助的团队精神。 (二)课程的目的 1.人体机能学是研究人体机能活动规律的科学,机能实验学的主要目的是通过了解机能实验学的任务、内容、研究方法与发展,加强学生对机能实验学基本知识的认识,重点培养学生基本技术和基本技能,增加学生自己动脑、动手的机会,培养学生基本科研素

家兔高钾血症实验报告

家兔高钾血症实验报告 正常家兔瞳孔大小 高钾血症时,心电图可见家兔心律失常,并且T波高耸,Q—T间期缩短;并且可见家兔呼吸缓慢,瞳孔放大,眼球突出,紫绀等现象。用葡萄糖、NaHCO3均抢救成功,而用胰岛素+葡萄糖、NaCL均抢救失败。 急性低钾血症和急性重度高钾血症时均可出现肌肉无力,其发生机制有何异同? 相同:骨骼肌兴奋性降低。 不同:低钾血症时出现超极化阻滞:即血清钾↓→细胞内外浓度差↑→静息电位负值增大→与阈电位差距增大→兴奋性降低。 严重高钾血症时出现除极化阻滞,即血清钾↑→细胞内外[K+]比值↓→静息电位太小(负值小)→钠通道失活→动作电位形成障碍→兴奋性降低。 高钾血症和低钾血症对心肌兴奋性各有何影响?阐明其机理? 钾对心肌是麻痹性离子。高钾血症时心肌的兴奋性先升高后降低,低钾血症时心肌的兴奋性升高。急性低钾血症时,尽管细胞内外液中钾离子浓度差变大,但由于此时心肌细胞膜的钾电导降低,细胞内钾外流反而减少,导致静息电位负值变小,静息电位与阈电位的距离亦变小,兴奋所需的阈刺激也变小,故心肌兴奋性增强。高钾血症时,虽然心肌细胞膜对钾的通透性增高,但细胞内外液中钾离子浓度差变小,细胞内钾外流减少而导致静息电位负值变小,静息电位与阈电位的距离变小,使心肌兴奋性增强;但当严重高钾血症时,由于静息电位太小,钠通道失活,发生去极化阻滞,导致心肌兴奋性降低或消失。 急性肾衰引起高钾血症的机制 急性肾衰竭时,肾小球滤过率的迅速下降导致钾离子的排泄减少 急性肾衰出现高钾血症应如何处理

钠型离子交换树脂15~30g口服,每日3~4次。此外,高钾血症病人禁用库存血,限制摄入含钾高的食物,停用含钾药物,并及时纠正酸中毒。 试述创伤性休克引起高钾血症的机制。 ⑴创伤性休克可引起急性肾功能衰竭,肾脏排钾障碍是引起高钾血症的主要原因。 ⑵休克时可发生乳酸性酸中毒及急性肾功能不全所致的酸中毒。酸中毒时,细胞外液 中的H+和细胞内液中的K+交换,同时肾小管泌H+增加而排K+减少。 ⑶休克时组织因血液灌流量严重而缺氧,细胞内ATP合成不足,细胞膜钠泵失灵,细胞外液中的K+不易进入缺氧严重不足引起细胞坏死时,细胞内K+释出。 急性轻度高钾血症时患者为什么会出现手足感觉异常? 急性轻度高钾血症时,由于细胞内外K+浓度差减少,细胞内K+外流减少,导致静息电位负值变小,与阈电位的距离变小而使神经肌肉兴奋性升高,故患者出现手足感觉异常或疼痛等神经肌肉兴奋性升高的表现。

实验性高钾血症及其治疗 实验报告 (2)

实验性高钾血症及其治疗 【实验目的】 1. 观察高钾血症时家兔心电图变化的特征。 2. 了解血钾进行性升高的不同阶段,高血钾对心肌细胞的毒性作用。 3. 了解高钾血症的基本治疗方法和抢救。 【实验原理】 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症(正常值:3.5~5.5mmol/L)。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位和有效不应期缩短,传导性、自律性、收缩性降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为:①P波和QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深的S波;②T波高尖:高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏;③多种类型的心律失常。高钾血症的抢救可采用:①注射Na+,Ca2+溶液对抗高血钾的心肌毒性;②注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞。 本实验通过静脉滴注氯化钾,使血钾浓度短时间内快速升高造成急性高钾血症,观察心电图变化,测定 血钾浓度,了解高钾血症对心脏的毒性作用以及对高钾血症的抢救治疗措施。 【实验对象】 家兔,体重2~3kg,雌雄不限。 【实验药品与器材】 20%氨基甲酸乙酯(或3%戊巴比妥钠),2%、10%氯化钾溶液、10%氯化钙溶液、4%碳酸氢钠溶液,葡萄糖-胰岛素溶液(50%葡萄糖4ml加1U胰岛素),肝素生理盐水溶液(125单位肝素/ml生理盐水),手术器械、注射器、头皮针、取血器、生物信号采集处理仪、电解质测定仪。 【实验观察指标】 血钾浓度、心电图变化、呼吸频率、幅度和节律。 【实验方法与步骤】 1. 称重、麻醉和固定动物家兔称重后,用20%氨基甲酸乙酯5ml/kg或3%戊巴比妥钠溶液1ml/kg 从耳缘静脉缓慢注入。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上,颈前部备皮。 2. 分离颈总动脉按家兔血管常规分离方法分离颈总动脉,插入导管取血0.5~1ml测定实验前的血钾浓度。 3. 心电描记将针型电极分别插入家兔四肢皮下。导联线按左前肢(黄),右前肢(红),左后肢(绿) ,右后肢(黑)的顺序连接,依生物信号记录仪使用方法描记实验前的心电图波形存盘,待实验结束后打印分析。 用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。方法是将右前肢电极插在下颏部皮下,左前肢的电极插在胸壁上相当于心尖部位的皮下。这样可较早发现高血钾家兔的心电图异常波形。 4. 氯化钾溶液注入方法从耳缘静脉滴入2%氯化钾(15~20滴/min)。 5. 观察记录心电图在静脉滴注氯化钾的过程中,观察生物信号采集处理仪显示器上心电图波形的变化。出现P波低压增宽、QRS 波群低压变宽和高尖T波时,描记存盘。同时取血0.5~1ml测定血钾浓度。 6. 实施抢救当出现心室扑动或颤动波形后,立即停止滴注氯化钾,并迅速准确地由另外一侧耳缘静脉注入已预先准备好的抢救药物(10%氯化钙2m1/kg,或4%碳酸氢钠5m1/kg,或葡萄糖-胰岛素溶液7m1/kg)。如果短时间内无法快速输入抢救的药物,救治效果不佳。 待心室扑动或颤动波消失,心电图基本恢复正常时,再由颈总动脉采血测定救治后的血钾浓度。 7. 注入致死剂量的l0%氯化钾(8m1/kg),开胸观察心肌纤颤及心脏停搏时的状态。 【实验结果】

机能实验报告 高血钾

机能学实验报告 实验日期:2015年6月10日 带教教师: 小组成员: 专业班级:预防医学一大班 家兔正常心电图及高钾血症得实验治疗Array 一、实验目得 1、掌握家兔正常心电图波形得生理意义 2、掌握家兔高钾血症模型得复制方法 3、观察家兔高钾血症心电图波形变化特征 4、掌握高钾血症治疗得方法(4%碳酸氢钠或极化液) 二、实验原理 血清钾高于5、5mmol/L为高钾血症(正常值:3、5~5、5mmol/L)。高钾血症对机体得危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位与有效不应期缩短,传导性、自律性、收缩性降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时得心电图表现为:①P波与QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深得S波;②T波高尖:高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏;③多种类型得心律失常。高钾血症得抢救可采用:①注射Na+,Ca2+溶液对抗高血钾得心肌毒性;②注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞。本实验通过静脉滴注氯化钾,使血钾浓度短时间内快速升高造成急性高钾血症,观察心电图变化,测定血钾浓度,了解高钾血症对心脏得毒性作用以及对高钾血症得抢救治疗措施。三、实验仪器设备 生物信号采集处理系统、离子分析仪、大动物手术器械、气管插管、动脉套管、注射器、头皮针、取血器、电解质测定仪 四、实验方法与步骤

1、称重、麻醉与固定动物:家兔称重后,用3%注射用戊巴比妥钠,按1ml/kg从耳 缘静脉缓慢注入。麻醉时密切注意兔子得状态,当兔子角膜反射敏感度,肌肉紧张性明显降低,立即停止给药。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上, 2手术与血管插管:颈部剪毛,在喉头下缘沿颈中线切开皮肤4-5cm,分离颈前肌肉暴露气管,做气管插管,并用丝线固定。在右侧按家兔血管常规分离方法分离颈外静脉,插入连接三通管得颈静脉插管以备输液,缓慢注入生理盐水(5-10 滴/min)以保持管道通畅。在左侧肌肉深部分离出颈总动脉,插入连接三通管得总动脉插管。 3、测正常血钾浓度:用EP管通过颈总动脉取血0、5ml,用电解质测量仪测量动物给予钾溶液前得血浆钾度。 4、描记心电图:将针型电极分别插入家兔四肢皮下。导联线按右前肢(红),左前肢(黄),左后肢(绿) ,右后肢(黑)得顺序连接,依生物机能实验系统使用方法描记实验前兔子得正常心电图波形。 5、复制高钾血症动物模型:通过输液装置,经颈外动脉从慢到快调滴速滴注3%得KCl溶液6滴/第1min,10滴/第2min,16滴/第3min及以后(不超20滴/min),密切观察与记录出现高钾时典型得心电图变化,一旦心电图出现正弦波时或QRS波群与T波发生融合时,立即调慢静脉滴注Kcl得速度,维持在6滴/minde,等待,当心电图出现典型高钾血症表现就是,经颈外动脉取血0、5ml作血钾测定。 6、高钾血症得抢救:在心电图出现典型高钾血症改变时,立即对家兔实施抢救。通过颈外静脉快速滴注极化液(20—30滴/秒)30min,待心电图基本恢复正常时,再次记录心电图改变,并由颈总动脉采血0、5ml,测定救治后得血钾浓度。 五、实验结果 实验中家兔不同时期得心电图(电子版实验结果粘贴) 极化液—实验前

病理生理学基础实验-急性高钾血症

病理生理学基础实验 急性高钾血症 [目的] 1.复制高血钾症,观察高血钾对心脏的毒性作用; 2.掌握心电图的主要改变及其与血钾浓度的关系; 3.掌握高钾血症的抢救方法。 [动物]豚鼠,体重300g左右,性别不拘。 [药品]20%乌拉坦、10%氯化钾溶液,5%氯化钾溶液、4%NaHCO3 溶液、10%氯化钙溶液。 [器材] 注射器(2ml、5ml)、试管、离心管、头皮针、手术器械、动脉导管、兔手术台、RM6240多道生理信号采集处理系统。 [方法] 1.操作及心电图观察 1)豚鼠称重,腹腔注射20%乌拉坦0.5ml/100g体重,待豚鼠麻醉后将其于仰卧位固定在兔手术台上。 2)开启RM6240多道生理信号采集处理系统,在右侧栏“通道模式”中选出“常用项目”→“心电”。 3)心电描记:将针形电极分别插入四肢踝部皮下。导联线按右前肢(绿)、左后肢(红)、右后肢(黑)的顺序连接。观察波形,调节右侧“扫描速度”、“灵敏度”、“时间常数”、“滤波频率”,至波形最恰当值,点击“开始记录”。记录一段正常的心电图波形。 5)模型组:分3次腹腔注射氯化钾,建立高钾模型,每次间隔10min:腹腔注射10%氯化钾0.2ml/100g;腹腔注射5%氯化钾0.4ml/100g;腹腔注射10%氯化钾0.2ml/100g。密切观察心电图变化及豚鼠的活动状态。当出现高尖T波时,记录时间。 6)治疗组:腹腔注射10%氯化钾0.2ml/100g后,给予4%NaHCO3 溶液(20ml/kg)或10%氯化钙溶液(2ml/Kg),而后继续给予氯化钾同模型组,密切观察心电图变化及豚鼠的活动状态。 7)当心电图明显异常,心率减慢几近停止或出现心室纤颤时,开胸观察室颤。 8)实验数据存盘。 [思考题] 1)高钾血症时,动物心电图的变化特征是什么?并用相关理论加以说明。 2)低血钠、低血钙和酸中毒加速钾中毒的机制是什么? 1

高钾血症实验

机能学实验报告 实验日期: 带教教师: 小组成员: 专业班级: 家兔正常心电图及高钾血症的实验治疗 一、实验目的 1、掌握家兔高钾血症模型的复制方法。 2、探讨家兔高钾血症时ECG变化的特点以及帐篷“T”的机制。 3、比较碳酸氢钠溶液或极化液治疗高钾血症的作用。 二、实验原理 血清钾高于 5.5mmol/L为高钾血症(正常值:3.5~5.5mmol/L)。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位和有效不期缩短,传导性、自律性、收缩降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为: (1)T波高尖,基底部较窄,形如帐篷。高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏。 (2)P波减低,最后可消失。乃因心房肌麻痹、心房静止所致。如此时窦房结激动尚能通过结间传导束下传至心室,则可形成“窦-室传导”,困此心室律还比较整齐 (3)S-T段压低与T波呈一斜线。或出现由Q R S波与S T-T相融合的双相波。S-T段也可抬高。(4)Q R S时间加宽,R波低小。 (5)严重时可产生传导阻滞、阵发性室性心动过速、心室颤动或心脏停搏。高钾血症的抢救可采用:一侧耳缘静脉注入已预先准备好的抢救药物(10%氯化钙2m1/kg,或4%碳酸氢钠5m1/kg,或葡萄糖—胰岛素溶液7m1/kg)。本实验通过静脉推注氯化钾使血钾浓度短时间内大量升高形成急性高钾血症,观察心电图变化,了解高钾血症对心脏的毒性作用,以及对高钾血症的急救措施。 三、实验仪器设备 生物信号采集整理系统、离子分析仪、大动物手术器械(手术剪、眼科剪、小镊子、止血钳、玻璃分针、动脉夹、注射器等)、气管插管、动脉套管、注射用乌拉坦溶液、3%氯化钾溶液、4%碳酸氢钠溶液、极化液、生理盐水。 四、实验方法与步骤

机能学实验高钾血症

实验性高钾血症 【实验目的】 1.观察高钾血症对机体的影响,特别是对心脏的毒性作用。 2.了解高钾血症的抢救措施。 3.掌握高钾血症时心电图改变的特征,深入理解电解质代谢紊乱的基本理论。 【实验材料】 实验动物:家兔 实验仪器:Bl-420生物机能实验系统、兔台、输液架 实验器材:手术剪、止血钳、10ml注射器、头皮针、针头、动脉夹 实验药品:25%氨基甲酸乙酯,5%、10%氯化钾溶液,10%葡萄糖酸钙溶液,肝素生理盐水溶液(125单位肝素/ml生理盐水) 【实验方法与步骤】 1. 称重、麻醉和固定动物家兔称重后,用25%氨基甲酸乙酯4ml/kg从耳缘静脉缓慢注入。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上,颈前部备皮。 2. 分离颈外静脉按家兔血管常规分离方法分离颈外静脉,插入静脉导管以备输液。(插管前将动物进行全身肝素化)。 3. 心电描记将针型电极分别插入家 兔四肢皮下。导联线按左前肢(黄),右前肢 (红),左后肢(绿) ,右后肢(黑)的顺序连接, 依生物机能实验系统使用方法描记实验前的 心电图波形。 4. 氯化钾溶液注入方法通过颈外静 脉输液装置,从慢到快调滴速静脉滴注5%的 KCl溶液6滴/第1min, 9滴/第2min, 20 滴/第3min及以后,密切观察和记录出现高钾 时典型的心电图变化,一旦心电图出现正弦波 时或QRS波群与T波发生融合时,立即停止滴 注。(注意:停止滴注时,动作要快。因为 ECG出现正弦波时心室颤动已迫在眼前。) 5. 观察记录心电图在静脉滴注氯化 钾的过程中,观察生物机能实验系统显示器上 心电图波形的变化。出现P波低压增宽、QRS 波群低压变宽和高尖T波时,记录心电图波形 变化。 6. 实施抢救当出现心律失常波形后, 立即停止滴注氯化钾,并迅速准确地由静脉注 入已预先准备好的抢救药物--10%葡萄糖酸 钙溶液4m1/kg进行抢救。(如果短时间内无 法及时输入抢救的药物,救治效果不佳)待心 室扑动或颤动波消失,心电图基本恢复正常时 记录心电图波形。 7.开胸观察心脏搏动的状态,通过颈外 静脉输液装置,快速输入l0%氯化钾溶液 (10m1/kg),观察心肌纤颤及心脏停搏时的状 态。

高钾血症实验

机能学实验报告 实验日期带教教师小组成员专业班级 家兔正常心电图及高钾血症的实验治疗 」、实验目的 1掌握家兔高钾血症模型的复制方法。 2、探讨家兔高钾血症时ECG变化的特点以及帐篷“ T”的机制。 3、比较碳酸氢钠溶液或极化液治疗高钾血症的作用。 二、实验原理 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症(正常值: 3. 5?5.5mmol/L )。高钾血症对机体 的危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位和有效不期缩短,传导性、自律性、收缩降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为: (1 )T波高尖,基底部较窄,形如帐篷。高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出 现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏。 (2) P波减低,最后可消失。乃因心房肌麻痹、心房静止所致。如此时窦房结激动尚能 通过结间传导束下传至心室,则可形成“窦-室传导”,困此心室律还比较整齐 (3) ST段压低与T波呈一斜线。或出现由QS波与STT相融合的双相波。ST段也可抬高。 (4 ) QS时间加宽,R波低小。 (5)严重时可产生传导阻滞、阵发性室性心动过速、心室颤动或心脏停搏。高钾血症的 抢救可采用:一侧耳缘静脉注入已预先准备好的抢救药物(10 %氯化钙2m1/kg,或4%碳 酸氢钠5m1/kg,或葡萄糖一胰岛素溶液7m1/kg)。本实验通过静脉推注氯化钾使血钾浓度短时间内大量升高形成急性高钾血症,观察心电图变化,了解高钾血症对心脏的毒性作用, 以及对高钾血症的急救措施。 三、实验仪器设备 生物信号采集整理系统、离子分析仪、大动物手术器械(手术剪、眼科剪、小镊子、止血钳、玻璃分针、动脉夹、注射器等)、气管插管、动脉套管、注射用乌拉坦溶液、3%!化钾溶液4滅酸氢钠溶液、极化液、生理盐水。 四、实验方法与步骤 1. 家兔的称重、麻醉和固定:家兔称重后,用注射用乌拉坦溶液[,按4ml/kg从耳缘静脉缓慢 注入。麻醉时密切注意兔子的状态。麻醉的深浅,可根据兔子呼吸的深度和速度、角膜反射

实验性高钾血症及其抢救

实验性高钾血症及其抢救 【实验目的】 1、学习家兔高钾血症模型的复制方法,了解钾离子的生理意义; 2、掌握高钾血症的概念及其对心肌电生理影响的病理生理机制; 3、观察高钾血症时心电图的变化特征; 4、进一步了解高钾血症产生的原因、机制和抢救措施。 【实验原理】 (一)、高钾血症定义 血清钾浓度高于5.5mmol/L为高钾血症。 (二)、高钾血症对心肌电生理影响的病理生理机制 (三)、高钾血症时心电图的变化特征 ① 0期除极速度与幅度降低,心肌动作电位传导性降低,心电图出现P波低平,QRS波增宽,P-R间期延长; ②高钾血症可激活延时整流钾通道,2期和3期钾外流加速,电位变化不大,心电图表现为T波高尖,Q-T间期缩短,同时,T波与QRS波融合成正弦波; ③心肌传导减慢,3期复极加速造成有效不应期缩短形成兴奋折返等因素可引起心室纤颤; ④严重传导阻滞或兴奋性消失可导致心脏停搏。 (四)、高钾血症的抢救措施 ①静脉输入钙盐;②静脉输入碱性溶液(如NaHCO3);③静脉输入葡萄糖-胰岛素溶液。

【实验步骤】 1、麻醉、固定:耳缘静脉注射1.5%戊巴比妥钠2ml/kg。 2、心电图描记。观察正常心电图,记录并存盘。 3、高钾血症模型复制。由耳缘静脉缓慢推注4%KCL。密切观察心电图变化及家兔的活动状态。当家兔出现P波低平增宽,QRS波群低压变宽和高尖T波时,记录心电图并存盘。 4、维持原速继续缓慢推注4%KCL。 5、当心电图出现心室扑动或颤动后立即停止注射KCL,同时,由耳缘静脉推注10%CaCL2(2ml/kg),观察并记录心电图变化,存盘。 【实验结果】 1、耳缘静脉缓慢输入4%KCL后,家兔心电图表现为:P波低平或消失,P-R间期延长,QRS波增宽,T波高耸,甚至QRS波和T波融合成正弦波。 2、若抢救及时,静脉输入10%CaCL2后,家兔心电图可逐渐恢复。 【实验讨论】 高钾血症时,虽然内向整流钾通道激活,但在静息状态时该通道已处于最大通透状态,不能是更多的钾离子有细胞内向细胞外流出以提高静息电位的绝对值,反而因细胞内外钾浓度梯度减少致细胞的静息电位绝对值减少,当静息电位与阈电位差值过小时,钠通道活性降低,动作电位0期钠内流减少,除极速度与幅度降低,心电图变现为P波低平甚至消失。因0期除极速度与幅度降低,心肌动作电位传导性降低,心电图可出现P波、QRS波群增宽,P-R间期延长。高钾还可激活延时整流钾通道,2期和3期钾离子外流加速,电位变化加大,心电图可表现为T波高尖,Q-T间期缩短。由于2期和3期钾外流加速,T波高尖和上述QRS波群增宽,因此心电图可出现QRS波和T波融合成的正弦波。心肌传导减慢,3期复极加速造成有效不应期缩短形成兴奋折返等因素可引起心室纤颤。严重的传导阻滞或兴奋性消失可导致心脏停搏。此为高钾血症时心电图变化的简要解释。 若抢救及时,静脉输入10%CaCL2后,家兔心电图可逐渐恢复。在于静脉输入钙盐,以对抗高钾对心肌的损害。钙可使Et绝对值变小,由于心肌细胞膜的Em与Et距离接近正常,故兴奋性可恢复正常;此外,钙还可使收缩性增强。 【实验结论】 静脉输入4%KCL可导致高钾血症,而钙盐可对抗钾离子对心肌的毒性。

实验性高钾血症及其治疗 实验报告 (2)(精编文档).doc

【最新整理,下载后即可编辑】 实验性高钾血症及其治疗 【实验目的】 1. 观察高钾血症时家兔心电图变化的特征。 2. 了解血钾进行性升高的不同阶段,高血钾对心肌细胞的毒性作用。 3. 了解高钾血症的基本治疗方法和抢救。 【实验原理】 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症(正常值:3.5~5.5mmol/L)。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位和有效不应期缩短,传导性、自律性、收缩性降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为:①P波和QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深的S波;②T波高尖:高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏;③多种类型的心律失常。高钾血症的抢救可采用:①注射Na+,Ca2+溶液对抗高血钾的心肌毒性;②注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞。 本实验通过静脉滴注氯化钾,使血钾浓度短时间内快速升高造成急性高钾血症,观察心电图变化,测定血钾浓度,了解高钾血症对心脏的毒性作用以及对高钾血症的抢救治疗措施。 【实验对象】 家兔,体重2~3kg,雌雄不限。 【实验药品与器材】 20%氨基甲酸乙酯(或3%戊巴比妥钠),2%、10%氯化钾溶液、10%氯化钙溶液、4%碳酸氢钠溶液,葡萄糖-胰岛素溶液(5 0%葡萄糖4ml加1U胰岛素),肝素生理盐水溶液(125单位肝素/ ml生理盐水),手术器械、注射器、头皮针、取血器、生物信号采集处理仪、电解质测定仪。 【实验观察指标】

血钾浓度、心电图变化、呼吸频率、幅度和节律。 【实验方法与步骤】 1. 称重、麻醉和固定动物家兔称重后,用20%氨基甲酸乙酯5ml/kg或3%戊巴比妥钠溶液1ml/kg从耳缘静脉缓慢注入。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上,颈前部备皮。 2. 分离颈总动脉按家兔血管常规分离方法分离颈总动脉,插入导管取血0.5~1ml测定实验前的血钾浓度。 3. 心电描记将针型电极分别插入家兔四肢皮下。导联线按左前肢(黄),右前肢(红),左后肢(绿) ,右后肢(黑)的顺序连接,依生物信号记录仪使用方法描记实验前的心电图波形存盘,待实验结束后打印分析。 用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。方法是将右前肢电极插在下颏部皮下,左前肢的电极插在胸壁上相当于心尖部位的皮下。这样可较早发现高血钾家兔的心电图异常波形。 4. 氯化钾溶液注入方法从耳缘静脉滴入2%氯化钾(15~20滴/min)。 5. 观察记录心电图在静脉滴注氯化钾的过程中,观察生物信号采集处理仪显示器上心电图波形的变化。出现P波低压增宽、QRS 波群低压变宽和高尖T波时,描记存盘。同时取血0. 5~1ml测定血钾浓度。 6. 实施抢救当出现心室扑动或颤动波形后,立即停止滴注氯化钾,并迅速准确地由另外一侧耳缘静脉注入已预先准备好的抢救药物(10%氯化钙2m1/kg,或4%碳酸氢钠5m1/kg,或葡萄糖-胰岛素溶液7m1/kg)。如果短时间内无法快速输入抢救的药物,救治效果不佳。 待心室扑动或颤动波消失,心电图基本恢复正常时,再由颈总动脉采血测定救治后的血钾浓度。 7. 注入致死剂量的l0%氯化钾(8m1/kg),开胸观察心肌纤颤及心脏停搏时的状态。 【实验结果】

高钾血症实验报告

高钾血症实验报告 高血钾症是一种潜在威胁生命的疾病,可很难诊断,因为缺乏鲜明的症状和体征。医生必须迅速考虑处于高钾血症危险之中患者的这一疾病的进程。因为高血钾可导致猝死型心律失常,故建议高血钾者需要立即心电图,以确定是否存在电解质不平衡的心电图迹象。 病理生理 钾离子是体内一种主要的离子。近98 %的钾离子在细胞内,其浓度梯度的维持依赖于由钠和钾激活的三磷酸腺苷酶(的Na + / K + - ATP酶)泵功能。细胞内外钾离子的比率是决定细胞膜电位的重要决定因素。细胞外钾水平小的变化即对心血管和神经系统的功能有很大影响,。正常钾水平是3.5-5.0毫克当量/ L,全身钾储存大约50毫克当量/千克(3500毫克当量在70公斤的人)。 即刻钾水平受细胞内外交换的控制。这种交换主要有Na-K泵控制,而该泵受胰岛素和β2受体控制。GI摄入和肾钾排泌的平衡导致长期的钾平衡 高钾血症定义为钾水平≧5.5 mEq/L 5.5- 6.0 mEq/L:轻度高钾 6.1- 7.0 mEq/L:中度高钾 ≧7.0 mEq/L:重度高钾 高钾血症的原因 ?钾排泄减少或受损-由于急性或慢性肾功能衰竭(最常见),排钾利尿剂,尿路梗阻,镰状细胞病,艾迪森氏疾病,系统性红斑狼疮(SLE) ?钾离子额外进入细胞外外空间-正如钾补充时所观察到的那样(例如,口服/静脉钾,盐替代品),横纹肌溶解和溶血(如静脉穿刺,输血,烧伤,肿瘤溶解) ?跨膜转移(即从细胞内转移到细胞外空间)-如酸中毒和药物效应(例如,急性洋地黄中毒,β-阻断剂,琥珀胆碱) ?人为或假性高钾血症-如血液采集不当(例如,缺血性血液抽取的静脉穿刺技术),实验室的错误,白血球增多和血小板增多 发生率 美国 住院病人诊断率上限8% 死亡率/发病率 ?发病率和死亡的主要原因是钾对心脏功能的影响。 ?如果严重高钾血症没有快速治疗,死亡率可高达67%。 性别:男:女1:1 临床 病史 ?高血钾的临床诊断可能很难,因为主诉可能是模糊的。病史在提示引发高钾血症的状态方面非常有价值。 ?高血钾往往是实验室的偶然发现。 ?心脏和神经系统症状为主。 ?病人可能无症状或报告如下: 广义疲劳

功能学实验-家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症实验报告 一.实验目的 学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。二.实验动物 未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为2.00 kg。 三.实验过程 1. 取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重 2.00 kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。 2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。 3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。分离3-4cm长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。 4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。 5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。 6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。 7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。 8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。从心室第四次抽取血液。 9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min,取血清100ul,混合蒸馏水9.9 ml 稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。 四.实验器材及注意事项 实验器材: 肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极 注意事项: 1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。插入位点应尽量选择耳缘静脉远心端,防止因先前的注射失败而导致无合适的再次进针位点。 2. 心电图电极插入应严格的插入四肢皮下,切勿插入肌肉组织中,测量心电图时应关闭附近的电灯,防止肌电和其他外部电场对心电图测量造成影响,产生误差。 3. 蠕动泵的滴速应严格调整好,滴速会影响心电图的变化时间以及抢救成功率。使用生理盐水调整时使用的EP管之后应进行蒸馏水的清洗,以免对之后血清的测量产生误差。 4. 血液样本应避免放置过久,若其中的血细胞因放置过久而破裂,细胞内的K离子溢出会使得之后血清K离子浓度测量出现较大误差。 五.实验结果 1. 家兔在KCl溶液滴注前后心电图的变化:

实验性高钾血症及其治疗-实验报告-(2)

实验性高钾血症及其治疗-实验报告-(2)

实验性高钾血症及其治疗 【实验目的】 1. 观察高钾血症时家兔心电图变化的特征。 2. 了解血钾进行性升高的不同阶段,高血钾对心肌细胞的毒性作用。 3. 了解高钾血症的基本治疗方法和抢救。 【实验原理】 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症(正常值:3.5~5.5mmol/L)。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位和有效不应期缩短,传导性、自律性、收缩性降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为:①P波和QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深的S波;②T波高尖:高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏;③多种类型的心律失常。高钾血症的抢救可采用:①注射Na+,Ca2+溶液对抗高血钾的心肌毒性;②注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞。 本实验通过静脉滴注氯化钾,使血钾浓度短时间内快速升高造成急性高钾血症,观察心电图变化,测定 血钾浓度,了解高钾血症对心脏的毒性作用以及对高钾血症的抢救治疗措施。 【实验对象】 家兔,体重2~3kg,雌雄不限。 【实验药品与器材】 20%氨基甲酸乙酯(或3%戊巴比妥钠),2%、10%氯化钾溶液、10%氯化钙溶液、4%碳酸氢钠溶液,葡萄糖-胰岛素溶液(50%葡萄糖4ml加1U胰岛素),肝素生理盐水溶液(125单位肝素/ml生理盐水),手术器械、注射器、头皮针、取血器、生物信号采集处理仪、电解质测定仪。 【实验观察指标】 血钾浓度、心电图变化、呼吸频率、幅度和节律。 【实验方法与步骤】 1. 称重、麻醉和固定动物家兔称重后,用20%氨基甲酸乙酯5ml/kg或3%戊巴比妥钠溶液1ml/kg 从耳缘静脉缓慢注入。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上,颈前部备皮。 2. 分离颈总动脉按家兔血管常规分离方法分离颈总动脉,插入导管取血0.5~1ml测定实验前的血钾浓度。 3. 心电描记将针型电极分别插入家兔四肢皮下。导联线按左前肢(黄),右前肢(红),左后肢(绿) ,右后肢(黑)的顺序连接,依生物信号记录仪使用方法描记实验前的心电图波形存盘,待实验结束后打印分析。 用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。方法是将右前肢电极插在下颏部皮下,左前肢的电极插在胸壁上相当于心尖部位的皮下。这样可较早发现高血钾家兔的心电图异常波形。 4. 氯化钾溶液注入方法从耳缘静脉滴入2%氯化钾(15~20滴/min)。 5. 观察记录心电图在静脉滴注氯化钾的过程中,观察生物信号采集处理仪显示器上心电图波形的变化。出现P波低压增宽、QRS 波群低压变宽和高尖T波时,描记存盘。同时取血0.5~1ml测定血钾浓度。 6. 实施抢救当出现心室扑动或颤动波形后,立即停止滴注氯化钾,并迅速准确地由另外一侧耳缘静脉注入已预先准备好的抢救药物(10%氯化钙2m1/kg,或4%碳酸氢钠5m1/kg,或葡萄糖-胰岛素溶液7m1/kg)。如果短时间内无法快速输入抢救的药物,救治效果不佳。 待心室扑动或颤动波消失,心电图基本恢复正常时,再由颈总动脉采血测定救治后的血钾浓度。 7. 注入致死剂量的l0%氯化钾(8m1/kg),开胸观察心肌纤颤及心脏停搏时的状态。

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