SSR标记与扁穗牛鞭草农艺性状关联分析

SSR标记与扁穗牛鞭草农艺性状关联分析
SSR标记与扁穗牛鞭草农艺性状关联分析

SSR标记与扁穗牛鞭草农艺性状关联分析

摘要:利用SSR引物对44份外部形态差异较大的扁穗牛鞭草基因组进行扫描,结合农艺性状,进行性状与标记间的关联分析。结果表明,①扁穗牛鞭草群体的农艺性状存在较大变异,其中分蘖数变异最大,变异系数达34.8%,其次是单株生物量、叶长和茎叶比,变异系数也达20%以上。②扁穗牛鞭草农艺性状间存在显著的相关关系,单株生物量与叶宽、茎直径、茎长呈极显著正相关,茎叶比与节间长、茎长呈极显著正相关,与分蘖数呈极显著负相关。③通过单向分组资料的方差分析,从182条多态性条带中共检测到与扁穗牛鞭草8个农艺性状极显著相关的

SSR标记18个,其中,6个标记分别与2个以上性状关联。标记对性状变异的贡献率为15.1%~32.8%,SG5-160能解释32.8%节间长表型变异,引物SG25的4个标记对茎直径表型变异的总贡献率达91.6%。该研究结果对早期发现优异种质,缩小筛选范围,降低筛选成本和工作量,加快扁穗牛鞭草育种进程有重要意义。

关键词:扁穗牛鞭草;SSR标记;农艺性状;关联分析

中图分类号:S54;Q78文献标识码:A文章编号:0439-8114(2011)07-1494-05

AssociationAnalysisbet

weenSSRMolecularMarkers andAgronomicCharactersof

Hemarthriacompressa

CHENYong-xia1,2,ZHANGXin-quan2,MAXiao2,XIEWen-gang2

(1.DepartmentofAnimalScience,XichangCollege,Xichang615000,Sichuan,China;

2.DepartmentofAnimalScienceandTechnology,SichuanAgriculturalUniversity,Ya’an625000,Sichuan,China)

Abstract:8agronomiccharactersof44Hemarthriaco

mpressamaterialsweremeas

uredand10pairsofSSRpremierswereusedtoamplifythegenomicDNAofthesematerials.SinglefactorvarianceanalysiswasusedtoidentifyassociationbetweenquantitivetraitsandSSRmocularmarkers.Theresultshowedthat:①therewerevariousvariabilityamongH.compressagermplasm.Thevariationcoefficientoftillers

was34.8%.Thevariationcoefficientofindividualbiomass,leafwidthandstem-leafratiowasmorethan20%.②Significantcorrelationwasfoundamongtheseagronomiccharacters.Thereweresignificantlypositivecorrelationbetweenindividualbiomassandleafwidth,stemdi

ameter,branchlength,andsignificantlypositivecorrelationbetweenstem-leafratioandinternodelength,branchlength.However,thecorrelationbetweenstem-leafratioandtillerswassignificantlynegative.③Theresultofone-wayANOVArevealedthat18markers outofthetotal182PCRproducedbandsweresignificantlyassociatedwiththe8agronomiccharacters,amongwhich6markers wereassociatedwithmorethan2traits.Thecontributionratewasfrom15.1%to32.8%,andtheSG5-160markeraccountedfor32.8%ofthephenotypicvariationofinternodelength.Thecontributionrateoffourmarkers ofprem

ierSG25wasaccountfor91.6%ofthephenotypicvariationofstemdiameter.TheresultwasusefultofindexcellentH.compressagermplasmearly,reduceselectionrange,decreasescreeningcostandworkload,andacceleratebreedingprocess.

Keywords:Hemarthriacompressa;SSRmarker;agronomiccharacter;associationanalysis

扁穗牛鞭草(Hemarthriacompressa)为禾本科牛鞭草属多年生牧草,在我国主要分布在长江以南及河北、山东、陕西等地。扁穗牛鞭草生长期长、生长速度快、抗逆性强、产量高,是热带、亚热带建植人工草地和南方草山草坡改良的优良草种。目前对扁穗牛鞭草的遗传多样性[1-3]、生产性能[4]、繁殖特性[5]等方面进行了较为深入的研究,但对多基因控制的数量性状位点(QTL)定位及与扁穗牛鞭草表型变异相关分子标记的研

究,尚未见报道。

关联分析是一种把候选基因的遗传变异与目标性状联系起来的技术,其理论依据是遗传标记与性状的连锁分析[6]。Virk等[7]对40份具代表性的东南亚水稻种质进行RAPD标记与农艺性状间的关联分析,检测到与水稻的分蘖数、株高、开花期、穗长、叶长和粒宽相关的RAPD标记,其中OPC-08-340可以解释49.84%分蘖数变异。后来,在燕麦[8]、大麦[9-11]、小麦[12]、马铃薯[13]、桑树[14-16]、杨树[17,18]等植物上,也找到一些与重要性状紧密相关的标记。但是,在牧草作物上,关联分析仅见于紫花苜蓿[19,20]和早熟禾[21]。

扁穗牛鞭草结实率相当低,主要采用无性繁殖,关联分析无需构建专门的作图群体,为扁穗牛鞭草的QTL定位提供了方向。扁穗牛鞭草主要采用传统育种方法,对表型进行选择,需要进行多年多点观测,耗时长效率低。本研究在扁穗牛鞭草表型研究的基础上,进行SSR标记与农艺性状的关联分析,筛选与重要农艺性状紧密关联的SSR分子标记,以期从分子水平解释扁穗牛鞭草遗传变异规律和机制,为筛选优异种质、加快育种进程奠定基础。

1材料与方法

1.1材料

1.1.1扁穗牛鞭草材料采自四川、重庆、云南、贵州等地不同生境、野生状态下,外部形态差异明显的扁穗牛鞭草无性系41份,及人工草地种植的国审品种“广益”、“重高”、“雅安”(表1),每个无性系取具2~3个节的茎段种植于直径为30cm的塑料盆内,每盆1株,5个重复。

1.1.2试剂近缘植物高粱的SSR引物,由上海生工生物工程技术服务有限公司合成;植物DNA提取试剂盒、Taq酶、100bpDNALadder、Mg2+、dNTPs购自天根生化科技(北京)有限公司;其他化学试剂购自成都博瑞克生物技术有限公司。

1.2方法

1.2.1SSR分子标记取幼嫩扁穗牛鞭草叶片,按植物DNA提取试剂盒步骤提取DNA。用0.8%的琼脂糖凝胶检测DNA质量。从50对SSR引物中筛选出条带清晰、多态性好的10对引物(表2)进行PCR扩增。PCR体系及程序按照WANG的方法[22]。用6%的变性聚丙烯酰胺凝胶进行电泳分离检测,照相观察并记录结果。

1.2.2农艺性状测定测定单株生物量、茎叶比、分蘖数、叶长、叶宽、节间长、节直径、茎长,其中单株生物量、茎叶比、分蘖数为5次重复结果,其他为15次重复结果。

1.3数据统计分析

对扩增条带进行统计,在相同的迁移位置,有带记为“1”,无带记为“0”,仅记录清晰强带和重复性好的弱带。根据标记带型的有无将群体划分为2个亚群体:组1和组0,对农艺性状进行单因素方差分析和相关分析[23],分析软件为SPSS15.0。用组间方差与总方差的比值求得标记产生的性状变异占性状总变异的百分率,即标记对该性状变异的贡献率[18]。

2结果与分析

2.1农艺性状的表型变异

研究结果表明,所选择扁穗牛鞭草群体的农艺性状存在较大变异(表3),其中分蘖数变异最大,变异系数达34.8%,其次是单株生物量、叶长和茎叶比,变异系数也达20%以上,叶宽、节间长、茎直径、茎长也存在不同程度的变异,变异系数分别为14.4%、17.3%、16.3%、16.2%。扁穗牛鞭草叶片最长为28.9cm,最短为10.4cm;叶片宽度最大值为0.976cm,最小值为0.475cm;节间最长为10.1cm,最短为5.1cm;茎直径最大为0.571cm,最小为0.278cm;茎最长为124.2cm,茎最短为63.1cm;单株分蘖数最多达227.3个,最少达45.3个;单株生物量最高达913.36g,最少仅为281.34g;

茎叶比最高为5.1,最低为2.3。

2.2农艺性状表型相关

对农艺性状进行相关分析,结果表明,扁穗牛鞭草的农艺性状间均存在显著或极显著相关。对牧草育种来说,单株生物量和茎叶比是最重要的两个指标。从表4可知,扁穗牛鞭草单株生物量与叶宽、茎直径、茎长呈极显著正相关,茎叶比与节间长、茎长呈极显著正相关,与分蘖数呈极显著负相关。利用单株生物量和茎叶比与形态指标的相关关系,可对扁穗牛鞭草种质进行初步筛选,选择符合育种目标的种质作为进一步育种的材料。

2.3SSR标记与性状的关联分析

采用10对SSR引物,共扩增出220条清晰、重复性好的条带,片段大小为50~400bp,其中多态性条带为182条,多态率为82.7%,如SG5引物对的扩增结果,见图1。标记位点与数量性状的关联分析采用单向分组资料的方差分析方法,即根据标记带型的有无将群体划分为两个亚群体――组1和组0,然后进行单因素方差分析,获得与数量性状相关联的标记位点。通过单向分组资料的方差分析(表5),共检测到与扁穗牛鞭草农艺性状极显著相关的SSR标记18个,其中有6个标记分别与2个以上性状关联,分别是SG5-160(叶长、节间长、茎长)、SG15-127(叶宽、节间长、茎直径)、SG2

5-157(叶长、叶宽、茎直径)、SG7-220(分蘖数、单株生物量)、SG25-136(叶宽和茎直径)、SG26-167(节间长、茎长)。单个性状关联的标记在1~7个之间,茎直径和单株分蘖数关联的标记最多,分别为7个和6个;其次,叶宽、节间长、茎长、叶长关联的标记分别是4个、3个、3个和2个,单株生物量和茎叶比关联的标记均为1个。每个标记对性状变异的贡献率为15.1%~32.8%,SG5-160能解释32.8%节间长表型变异,引物SG25的SG25-157、SG25-136、SG25-125和SG25-1184个标记对茎直径表型变异的总贡献率达91.6%。

3结论与讨论

目前,对多基因控制的数量性状位点(QTL)的研究均是利用两个具有多态性的种源(或家系)构建分离群体进行研究,但是这种人工创造的作图群体所含的优良目标基因有限,构建群体耗时,效率低[6],而且对于无性繁殖的扁穗牛鞭草等植物,几乎不可能得到这样的分离群体。本研究采用野生扁穗牛鞭草无性系进行分子标记与数量性状间的关联分析,不仅避免了单一分离群体不易获得的局限性,而且由于野生扁穗牛鞭草无性系来源广泛、遗传背景复杂,可能聚集较多的性状基因,从而有望全面而系统地揭示出与扁穗牛鞭草农艺性状相关的QTL。本研究中,某些标记同

时与多个性状相关联,如SG5-160与叶长、节间长、茎长关联,SG15-127与叶宽、节间长、茎直径关联,且各农艺性状间也彼此相关。性状的相互关联可能是由于控制该性状的QTL相互连锁或是某个QTL的一因多效造

成的,同一标记与多个相关性状的关联可能是数量性状间在遗传上相关造成的[24]。

连锁不平衡(Linkagedisquilibrium,LD)程度决定关联分析的精度和所需标记的数量、密度。通常异花授粉植物重组率高,LD衰减较快,需要较多的标记;而自花授粉植物,特别是闭花授粉植物,DNA多态性偏低,重组率低,LD衰减距离大,关联分析所需要的标记少[25]。本研究从220个SSR标记中找到18个标记与农艺性状极显著相关,这与扁穗牛鞭草依靠无性繁殖、LD衰减慢、LD程度较高、所采用的SSR标记可能覆盖了大部分基因组有关。

农艺性状是受多基因控制的数量性状,且各性状间均有一定的关联,通过常规育种技术对农艺性状进行改良往往效果不显著,且周期长。在DNA水平上利用分子标记辅助选择育种对农艺性状、抗性等重要性状进行早期选择是很有前景的领域。本研究采用SSR分子标记对扁穗牛鞭草材料进行扫描,发现18个与扁穗牛鞭草农艺性状关联的标记,其中SG5-160对节间长变异的贡献率达32.8%,引

物SG25的4个标记(SG25-157、SG25-136、SG25-125和SG25-118)对茎直径表型变异的总贡献率达91.6%。利用与主要农艺性状关联的标记可对大量扁穗牛鞭草种质进行筛选,可在早期发现优异种质,降低成本和工作量,这在扁穗牛鞭草新品种培育中有重要意义。

参考文献:

[1]刘金平,张新全,彭燕.AFLP分析西南区扁穗牛鞭草种质资源[J].安徽农学通报,2006,12(13):46-47.

[2]范彦,张新全,李芳,等.扁穗牛鞭草种质遗传多样性的ISSR分析[J].草业学报,2007,16(4):76-81.

[3]HUANGLK,ZHANGXQ,XIAOM,etal.GeneticdifferentiationamongHemarthriacompressapopulationsinsouthChinaanditsgeneticrelationshipwithH.Japonica[J].Hereditas,2008,145(2):84-91.

[4]李芳,张新全,马啸.扁穗牛鞭草新品系的农艺性状比较研究[J].河北农业科学,2009,48(5):1210-1213.

[5]傅鲜桃,杨春华.扁穗牛鞭草草地高效饲草生产系统研究[J].热带亚热带植物学报,2008,16(2):134-139.

[6]孔繁玲.植物数量遗传学[M].北京:中国农业大学出版社,2006.

[7]VIRKPS,FORD-LLOYDBV,JACKSONMT,etal.Predictingquantitativevariationwithinricegermplasmusingm

olecularmarkers[J].Heredity,1996,76(3):296-304.

[8]BEERSC,SIRIPOONWIWATW,O’DONOUGHUELS,etal.Associationsbetweenmolecu

larmarkersandquantitativetraitsinanoatgermplasmpool:Canweinferlinkages[J].AgricGenomics,1997,2(3):1-16.

[9]KRAAKMANAT,NIKSRE,BERGPM,etal.Linkagedisequilibriummappingofyieldandyieldstabilityinmode

rnspringbarleycultivars[J].Genetics,2004,168(1):435-446.

[10]IGARTUAE,CASASAM,CIUDADF,etal.RFLPmarkersassociatedwithmajorgenes

controllingheadingdateevaluatedinabarleygermplasmpool[J].Heredity,1999,83(5):551-559.

[11]IVANDICV,HACKETTCA,NEVOE,etal.Analysisofsimplesequencerepeats(SSRs)inwildbarleyfromtheFertileCrescent:Associations

withecology,geographyand

floweringtime[J].PlantMolBiol,2002,48(5-6):511-527.

[12]张学勇,童依平,游光霞,等.选择牵连效应分析:发掘重要基因的新思路[J].中国农业科学,2006,39(8):1526-1535.

[13]GEBHARDTC,BALLVORAA,WALKEMEIERB,etal.Assessinggeneticpotentialinger

mplasmcollectionsofcrop

plantsbymarker-traitassociation:A casestudyforpotatoeswithquantitativevariationofresistancetolat

eblightandmaturitytype[J].MolBreed,2004,13(1):93-102.

[14]KARPK,SRIVASTAVAPP,AWASTHIAK,etal.Geneticvariabilityandassociation

ofISSRmarkerswithsomebiochemicaltraitsinmulberry(Morusspp.)geneticresourcesavailableinIndia[J].TreeGenetics&Genomes,2008,

4(1):75-83.

[15]VIJAYANK,CHATTERJEESN.ISSRprofilingofIndiancultivarsofmulberry(Morusspp.)anditsrelevancetobreedingprograms[J].Euphytica,2003,131(1):53-56.[16]VIJYANK,SRIVATSAVAPP,NAIRCV,etal.MolecularcharacterizationandidentificationofmarkersassociatedwithyieldtraitsinmulberryusingISSRmarkers[J].PlantBreeding,2006,125:298-301.

[17]丁明明,黄秦军,苏晓华.欧洲黑杨基因资源材性关联基因的SNP分析[J].遗传,2008,30(6):795-800.

[18]苏晓华,李金花,陈伯望.杨树叶片数量性状相关联标记及其图谱定位研究[J].林业科学,2000,36(1):33-40.

[19]MUSIALJM,LOWEKF,M

ACKIEJM,etal.DNAmarkerlinkedtoyield,yieldcomponents,andmorphologicaltraitsinautotetraploidluceme(MedicagosativaL.)[J].AustralianJournalofAgriculturalResearch,2006,57(7):801-810.

[20]MAUREIRA-BUTLERIJ,UDALLJA,OSBORNTC.Analysesofamulti-parentpopulationderivedfromtwodiversealfalfagermplasms:Testcrossevaluationsandphenotype-DNAassociations[J].TheorApplGenet,2007,115(6):859-867.

[21]PABLOF,CAVAGNARO,JUANB,etal.GeneticdiversityamongvarietiesofthenativeforagegrassTrichloriscrinitabasedonAFLPmarke

rs,morphologicalcharacters,andquantitativeagronomictraits[J].Genome,2006,49(8):906-918.

[22]WANGML,BARKLEYNA,YUJK,etal.Transferofsimplesequencerepeat(SSR)markerfrommajorcerealcropstominorgrassspeciesforgerplasmcharacterization

andevaluation[J].PlantGeneticResources,2005,3(1):45-57.

[23]黄秦军,丁明明,张香华,等.SSR标记与欧洲黑杨材性性状的关联分析[J].林业科学,2007,43(2):43-47.

[24]徐云碧,朱立煌.水稻形态性状与分子标记的相互关联及其检测[J].浙江农业学报,1994,6(1):1-6.

[25]杨小红,严建兵,郑艳萍,等.植物数量性状关联分析研究进展[J].作物学报,2007,33(4):523-530.

相关主题
相关文档
最新文档