生理学实验报告
生医2012秋生理学实验报告
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实验一骨骼肌的观察及骨骼肌的单收缩与强直收缩
【目标要求】
1.掌握蛙类动物单毁髓的实验方法。
2.掌握坐骨神经-腓肠肌标本和坐骨神经干标本的制备方法。
3.学习肌肉收缩的记录方法。
4.观察与分析肌肉单收缩的三个时相，分析骨骼肌收缩形式与刺激频率之间的关系。
【基本原理】
蛙类动物的某些基本生命活动，如神经的生物电活动、肌肉收缩等与哺乳动物相似。其离体组织所需的生活条件比较简单，易于控制和掌握，而且动物来源丰富，因此在生理学实验中常用蟾蜍的坐骨神经—腓肠肌标本永和坐骨神经标本来观察组织的兴奋性、刺激与反应的规律以及骨骼肌收缩的特点等。
肌肉受到一次阈上刺激而产生的一次收缩为单收缩，其过程可分为三个时相，即潜伏期、缩短期与舒张期。肌肉收到连续的阈上刺激时，如果刺激间隔小于单收缩的时程，相邻两单收缩的时相会出现融合，表现为强直收缩现象。如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的舒张期，称不完全强直收缩，如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的缩短期，称完全强直收缩。躯体运动是以骨为杠杆，以关节为枢纽，由肌肉收缩产生动力完成的。
【材料与器械】
蟾蜍或蛙，蛙类手术器械（手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、金冠剪、毁髓针、玻璃针、固定针），蛙板，玻璃板，锌铜弓，小烧杯，滴管，纱布，细棉线，任氏液。
BL-420生物机能实验系统（或其他生理记录仪），张力换能器。
【实验步骤】
1.双毁髓的方法
一手握蟾蜍，食指按压头部前端，拇指压住躯干背部，令其背部向上，头向前俯；另一手持毁髓针在左右耳后腺之间，背部的凹陷处将毁髓针垂直刺入，然后将针尖向前刺入颅腔，搅动以捣毁脑组织，此时的动物为单毁髓动物。彻底捣毁脊髓时，可见蟾蜍后肢突然蹬直，然后瘫软。如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动自如，表明未毁坏脊髓，必须重新毁髓。
2.剥制后肢标本
将双毁髓的蟾蜍背面向上放在蛙板上，一手持手术镊轻轻提起两前肢之间背部的皮肤，另一手持手术剪横向剪开皮肤，暴露脊柱。用金冠剪横向剪断脊柱。一首持手术镊提起断开的脊柱后端，另一手用金冠剪沿脊柱两侧剪开体壁，再剪断下腹壁肌肉，使头部、前肢及内脏自然下垂，将其自腹后壁剪除。然后用蘸有任氏液的左手捏住断开的脊柱后端，右手向后方撕剥皮肤，将剥干净的后肢放入盛有任氏液的培养皿中。弃其头部、内脏及剥下的皮肤，清洗手及手术器械上的污物。
3.分离两后肢
左手托起去皮的标本，右手持金冠剪直接剪开耻骨联合，随后剪开两后肢相连的肌肉组
织，并纵向剪开脊柱（尾杆骨留在一侧），将标本一分为二，一只继续剥制标本，另一只放入任氏液中备用。
4.分离坐骨神经
取一侧后肢的脊柱端腹面向上，趾端向外侧翻转，使其足底朝上，用固定针将标本固定在玻璃板下面的蛙板上。用玻璃针沿脊神经向后剥离坐骨神经。沿腓肠肌正上方的股二头肌和半膜肌之间的肌缝找出股部的坐骨神经，坐骨神经基部有一梨状肌盖住神经，用玻璃针轻轻挑起此肌肉，便可看清其深层穿行的坐骨神经。剪断梨状肌，完全暴露坐骨神经，再用玻璃针轻轻挑起神经，自上而下剪去支配腓肠肌之外的其他分支，将坐骨神经游离至腘窝处。用金冠剪剪去多余的脊柱骨及肌肉，只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。取下脊柱端的固定针，用手术镊轻轻提起脊柱骨的骨片，将神经搭在腓肠肌上。
5.游离腓肠肌
用玻璃针将腓肠肌与胫腓骨分离开，用手术刀片将腓肠肌跟腱与胫腓骨分离开一段，用手术镊在腓肠肌跟腱下穿线并结扎，提起结扎线，剪断跟腱与胫腓骨的联系，游离腓肠肌。
6.分离股骨
一手捏住股骨，沿膝关节剪去股骨周围的肌肉，用金冠剪刮干净股骨上的肌肉，保留股骨的远端二分之三，剪断股骨。剪去膝关节下部的后肢，保留腓肠肌与股骨的联系。
7.检验标本
用手术镊轻轻提起标本的脊柱骨片，使神经离开玻璃板，持经任氏液蘸湿的锌铜弓，使其两极轻触神经，如腓肠肌反生收缩，则表示标本机能正常。提起腓肠肌上的结扎线，勿使神经收到牵拉，轻轻将标本放入任氏液中，稳定5-10min，即可用于实验。
8.将坐骨神经-腓肠肌标本的股骨部分插入肌槽的固定孔内，拧紧固定螺丝，将坐骨神经放在电极上，将跟腱上的结扎线与张力换能器相连。
9.用BL-420生物机能实验系统（或其他类型的生理记录仪）记录单收缩和强直收缩，步骤如下：
（1）将张力换能器在肌槽上方与肌槽平行地固定于铁支架上，将标本上的结扎线缚于张力换能器悬梁壁上，将换能器输出的插头连于BL-420生物机能实验系统。
（2）将BL-420生物机能实验系统的输出电极连于肌槽电极上。选择采样频率、显示方式、显示通道、时间常数、高频滤波，必要时还要选择50Hz陷波；记录时选择刺激标记。（3）选择单刺激方式，合适的刺激强度、刺激时间、扫描速度、纵向放缩和刺激标记，记录单收缩曲线。记录曲线参考图。
（4）选择连续刺激方式，参考单刺激的刺激强度、刺激时间、纵向放缩、刺激标记、调节刺激时间间隔和扫描速度，分别记录不完全强直收缩曲线和完全强直收缩曲线。记录曲线参考图。
（5）将记录曲线存盘，根据需要进行剪辑和编辑，最后导出另存或输出打印。
【实验记录】
分析：刺激电压低于阈上刺激，神经不兴奋，肌肉也不会收缩。当电压达到阈强度，神经开始兴奋，肌纤维才开始收缩。当刺激频率增大时，如果刺激频率小于骨骼肌收缩舒张频率就可以看到数个比较完整的收缩舒张波（从零电位到峰值，再由峰值回到零电位），而当刺激频率大于骨骼肌收缩舒张频率时，骨骼肌一次收缩后还没来得及舒张完全就又受到电刺激重新达到收缩峰值，刺激频率增大到一定强度时就几乎看不到骨骼肌舒张的波形，持续收缩直至僵直。
【注意事项】
1.双毁髓时应注意使蟾蜍头部前俯，用纱布盖在耳后大腺上，防止耳后腺分泌物射入眼内。如分泌物射入眼内，应立即用生理盐水冲洗眼睛。
标本制备过程中应经常滴加任氏液，防止标本干燥。
【思考题】
1、剥去皮肤的后肢，能用自来水冲洗吗？为什么？
答：不能。自来水是低渗溶液，会使肌细胞失水萎缩，影响活性和实验结果。
2、金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌，可能引起哪些不良后果？
答：金属器械碰压神经与腓肠肌，会引起肌肉收缩，如果碰的较重，损伤部位及近端的神经就死亡了，以后刺激只能从损伤处向肌肉处之间的部分。另外容易使标本疲劳，失去活性。
3、如何保持标本的机能正常？
答：金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌，保持湿润，常加任氏液，最好先泡一会。
实验二蟾蜍离体蛙心灌流
【目的要求】
1.学习两栖类动物离体心脏的灌流方法，掌握斯式插管法；
2.证明心肌具有自动节律性收缩的生理特征；
3.观察钠离子、钙离子、钾离子、肾上腺素、乙酰胆碱对心脏活动的影响；
4.理解内环境各种理化因素的相对恒定对于细胞进行正常生命活动的重要意义。
【基本原理】
心脏离体后，仍能有节律地自动收缩、舒张，此为心肌的自动节律性。两栖类动物的心脏没有冠状动脉，心肌细胞直接从心腔中的血液中获得营养物质和氧气，因而可用斯式插管法进行离体心脏灌流。灌流液的成分应同动物内环境的成分基本一致，用于两栖类动物心脏的灌流液为任氏液。始终有任氏液灌流于心腔，离体心脏可长时间地活动，改变灌流液的成分则可引起心脏活动的改变。
【材料与器械】
蟾蜍或蛙，蛙心套管，套管夹，支架，双凹夹，滑轮，烧杯，常用手术器械，蛙板，蛙心夹，微机记录系统或二道记录仪，张力传感器，滴管，小烧杯，纱布，棉线，任氏液，0.65%NaCl，5%NaCl，2%CaCl2，1%KCl，1/5000肾上腺素，1/10 000乙酰胆碱。
【实验步骤】
1.暴露心脏
取一只蟾蜍，用探针破坏脑和脊髓。双毁髓后，将其仰卧于蛙板上。一手持手术镊提起胸骨后方的皮肤，另一手持解剖剪剪开一个小口，然后将剪刀由开口处伸入皮下，向左、右两侧下颌角方向剪开皮肤。将皮肤掀向头端，再用手术镊提起胸骨后方的腹肌，在腹肌上剪开一口，将解剖剪紧贴体壁向前伸入，并沿皮肤切口方向剪开体壁，剪断乌喙骨和锁骨，使创口呈一倒三角形。一手持眼科镊，提起心包膜，另一手用眼科剪剪开心包膜，暴露心脏。在腹面可以看到一个心室，其上方有两个心房。心室右上角连着一个动脉干，其根部膨大为动脉圆锥。动脉干向上分成左、右两支主动脉。用玻璃针从动脉干背部穿过，将心脏翻向头侧。在心脏背面两心房下面，有一个呈紫红色的膨大部分，为静脉窦，是两栖类动物心脏的起搏点。静脉窦连左、右前腔静脉，后连一个后腔静脉；后腔静脉近窦处，有左、右肝静脉汇入。
2.离体心脏制备
斯式插管法分四步：
1）动脉切口：在动脉干分支处下方穿过一线，并打一活结留作固定套管用。在左主动
脉下方穿过一线，稍离动脉干分支处结扎。左手提起左主动脉上的结扎线，右手用眼科剪在结扎线下方近动脉圆锥处、沿向心方向将左主动脉壁剪一“V”斜口。
2）套管入室：取一尖端大小适宜的斯式蛙心套管，加入少量任氏液，达套管内2~3cm 高度即可。左手用小镊子夹住切口缘，轻轻上提，使切口扩大；右手持蛙心套管，自切口处插入动脉圆锥。然后，左手持主动脉上的结扎线向后拉，右手推送蛙心套管，使之进入动脉圆锥。当套管尖端到达动脉圆锥基部时，将套管稍稍后退，使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进。在心室收缩时，将套管经主动脉瓣间隙插入心室腔内。进入心室后，血液冲入套管，并使液面随心脏波动而上下移动。如果套管没有顺利插入心室，应改变方向慢慢试插，不用蛮力。插入心室后不可插得过深，以免心室壁堵住套管口。
3）固定套管：待套管尖端插入心室后，轻轻提起备用线，将左、右主动脉连同插入的套管用双结扎紧，再将结扎线固定在套管的小玻璃钩上，以防标本滑脱。用滴管吸去套管中的血液，更换新鲜任氏液。
4）游离心脏：先将结扎线上方的左、右主动脉剪断。然后轻轻提起套管和心脏，看清静脉窦的位置。于静脉窦下方剪断所有的组织，使心脏离体。在结扎和剪断时，切勿损伤静脉窦。用任氏液反复冲洗心室内的余血，使套管内的灌流液中不再有残留的血液。套管内任氏液面高度应尽量保持一致，控制在2cm左右较为适宜。
3.固定蛙心标本
将插好离体心脏的套管固定在支架上，用蛙心夹夹住少许心尖部的肌肉。为了不使灌流液滴到传感器上，将蛙心夹上的系线绕过一个定滑轮与张力传感器相连。
4.开启仪器
打开计算机采集系统，接通张力传感器输入通道。打开matlab,选择“蛙心灌流”实验。
5.实验记录
1）记录正常心搏曲线。
2）改用0.65%NaCl溶液灌流，并作好加药记号，观察心搏变化。待曲线出现明显变化时，立即吸去套管中的灌流液，同时做好冲洗标记，并用新鲜任氏液清洗2~3次，待心搏恢复正常。
3）向套管内加入2~6滴5%NaCl溶液，作好加药记号，观察心搏曲线的频率及振幅变化。当曲线出现明显变化时应立即吸去套管中的灌流液，并做好冲洗标记，迅速用新鲜任氏液清洗2~3次，待心搏恢复正常。
4）同法向套管内加入1~3滴2%CaCl2溶液，观察并记录心搏的变化。当出现明显变化时，立即更换任氏液，待心搏恢复正常。
5）向套管中加入1~2滴1%KCl溶液，记录心搏曲线变化。当心搏曲线变化时同法更换灌流液，待心搏恢复正常。
6）同法记录套管中加入1~2滴肾上腺素溶液（1/5 000）后心搏曲线的变化。
7）同法记录套管中加入1~2滴乙酰胆碱溶液（1/10 000）后的心搏曲线的变化。
【实验结果】
实验结果如下：
1、正常心搏曲线
2、用0.65%NaCl溶液灌流
分析：由图可知，Na离子会使心肌活动强度减弱，原因是用NaCl溶液灌注蛙心时，由于灌注液中缺乏Ca离子，以致心肌细胞动作电位2期内流钙离子减少，细胞质Ca离子浓度减少，心肌的收缩活动也随之减弱。
3、用2%CaCl2溶液灌流
分析：细胞外Ca离子在细胞膜上对Na离子内流有竞争性抑制作用，称为膜屏障作用。钙离子浓度增高时，钠离子内流受抑制，细胞0期除极速度与幅度减小，使兴奋性及传导性均降低。钙离子浓度增高使钙离子内流增多，因此慢反应细胞0期去极化加快加强，传导性增高，而快反应细胞平台期缩短，复极加速。钙离子内流增多，使心肌收缩能力增强。钙离子浓度降低时，所引起的变化与高钙时相反。因此加入氯化钙后，心率减少、振幅减少，基线上移。
5、用KCl灌流
分析：滴加氯化钾后的心搏曲线发现，曲线的频率逐渐减小，愈来愈疏，幅度逐渐下降，因为当细胞钾离子浓度增高时，钾离子与钙离子有竞争性拮抗作用，钾离子抑制细胞膜对钙离子的转运，使进入细胞内钙离子减少，心肌的兴奋—收缩偶联过程减弱，心肌收缩能力降低。所以心搏曲线振幅减小。
6、用肾上腺素灌流
分析：滴加肾上腺素后，蛙心收缩增强，心脏舒张完全，描记的心搏曲线幅度明显增大。其作用机理是，肾上腺素可与心肌细胞膜上的B受体结合，提高心肌细胞和肌浆网膜钙离
子通透性，导致肌浆中钙离子浓度增高，使心肌收缩增强。另外，肾上腺素还有降低肌钙蛋白与钙离子亲和力，促使肌钙蛋白对钙离子的释放速率增加，提高肌浆网膜摄取钙离子的速度，刺激钠离子与钙离子交换，使复极期向细胞外排出钙离子的作用加速，这样，将使心肌舒张速度增快，整个舒张过程明显增加。
6、加入乙酰胆碱灌流
分析：上图可示，蛙心收缩减弱，心率减慢，最后出现蛙心停止舒张阶段。其机理为：乙酰胆碱与心肌细胞膜M受体结合，一方面提高心肌细胞膜钾离子通道的通透性，促使钾离子外流，将引起：1）窦房强细胞复极时钾离子外流增多，最大复极电位绝对值增大；衰减过程减弱，自动除极速度减慢。这两方面因素导致窦房自律性降低，心率减慢。2）复极过程中钾离子外流增加，动作电位2、3期缩短，钙离子进入细胞内减少，使心肌收缩减弱；另一方面乙酰胆碱可直接抑制钙离子通道，减少钙离子内流，进而使心肌收缩减弱。
【注意事项】
1.剪开动脉管壁时，不能只剪开其外的薄膜，而要彻底将血管内膜剪破，但不要把血管剪断。
2.使用蛙心夹夹心尖时，不可夹得过多，以免因夹破心室而漏液。
3.每种试剂使用后，都要用新鲜任氏液冲洗2~3次，以待心搏恢复正常。
4.各种试剂的滴管不能混淆。
5.每项实验都要有相应的对照。
【思考题】
根据实验结果，分析钠离子、钾离子、钙离子对心肌有何作用？
分析如上文。
实验三小鼠脊髓半横切
【实验目的】
观察小白鼠脊髓半横断后的表现，加深对脊髓的认识。
【实验原理】
神经系统基本的活动形式是反射。简单的反射由脊髓完成，如膝反射，而复杂的反射则涉及到大脑皮层。脊髓把感受器接受到的信息传到大脑；大脑发出的信息又通过脊髓传到相应的效应器。这种传导机能主要由脊髓的白质来完成。白质是由神经元发出的长突起神经纤维组成的。脊髓中的神经纤维按不同的机能顺序排列。一旦脊髓被切断，则可导致切口以下相应部位的感觉或运动功能的丧失。
【实验对象】
小白鼠
【实验器材及药物】
改进的蛙板（蛙板两边各钉两枚小元钉）、小烧杯、药棉、手术缝针、丝线、解剖刀、
剪刀、眼科手术刀、镊子、乙醚。
【实验方法及步骤】
1.用乙醚麻醉小鼠。
2.把小白鼠俯卧和固定在改装了的蛙板上，剪去胸腰部背面的毛，在正中处用解剖刀纵切皮肤，划一个1.5cm长的切口。
3.紧贴第1~3节腰椎的棘突，用解剖刀切断椎上的肌腱，并用药棉球分离肌肉，暴露椎骨。
4.用镊子夹住第二腰椎，另一个拿剪刀剪去棘突和椎弓，暴露白色的脊椎。
5.在脊椎背面正中有一条纵向的血管，叫脊髓后静脉，以此为标志，用柳叶刀将一半脊髓从中央向外侧完全切断。
6.松绑四肢，待其苏醒进行下列观察小白鼠在实验桌上运动状况。
【实验结果及分析】
当手术成功时，可观察到如下结果：
小白鼠在运动时，与脊髓损伤同侧的后肢不能运动，呈现出以脊髓损伤侧为轴的转圈运动。
结论：由大脑发出的运动指令到达脊髓后，通过脊髓白质的神经纤维继续向下传送，脊髓两侧的运动神经纤维大都在本侧里行走（即不交叉到对侧）。在脊髓被损伤的一侧，运动指令无法传到横切以下的部位，该侧后肢得不到运动指令，因而不能随意运动；脊髓未遭横切的一侧，大脑发出的运动指令，可以通过脊髓白质的神经纤维传到后肢肌肉，所以这一侧后肢运动如常。
【注意事项】
1.本实验成功的关键在于手术。首先麻醉要适度，麻醉过深小白鼠易死亡，过浅小白鼠易苏醒。其次用柳叶刀横切一侧脊髓时要防止损坏对侧脊髓。
2.半横切部位必须在相当于第二腰椎的脊髓处，实验效果才好。
手术中要防止出血过多。
实验四心血管活动的神经体液调节
【实验目的】
学习哺乳动物动脉血压的直接测定方法和间接或直接地观察心血管活动的神经体液性调节。【实验原理】
正常情况下，哺乳动物的血压是相当恒定的，这种相对恒定是通过神经和体液性的调节而实现的。心脏受交感神经和副交感神经的双重支配，心交感神经使心跳加快加强，传导加速，从而使心输出量增加。支配心脏的副交感神经是心迷走神经，兴奋时使心率减慢，心房收缩力减弱，房室传导减慢，从而使心输出量减少。支配血管的植物性神经，绝大多数属于交感缩血管神经，中枢通过反射作用调节心血管的活动改变心输出量和外周阻力，从而调节动脉血压。本实验是通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化的。
【实验用品】
家兔、D-95生理记录系统、血压换能器、塑料动脉插管、动脉夹、三通管、刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、手术灯、注射器、肝素生理盐水、40%酒精生理盐水、生理盐水、纱布、棉球、丝线、O.01%肾上腺素、O.O1%乙酰胆碱等。
【实验步骤和项目】
一、手术准备
1、麻醉并固定动物：耳缘静脉缓慢注入麻醉剂将兔子麻醉。注射时应密切观察动物的肌张
力、心跳、呼吸、瞳孔大小、角膜反射等，以免麻醉过深。将动物仰卧于手术合上．固定好头部和四肢，注意颈部必须放正拉直。
2、分离颈部神经和血管：剪去颈部的毛，沿正中线作一 5～7厘米的切口，钝性分离皮下
组织和肌肉，暴露气管，将气管两旁的肌肉拉开，便可在气管的二侧深部找到包在颈动脉鞘内的颈总动脉、迷走神经、颈交感神经和减压神经。在分离颈总动脉前，仔细识别以上三条神经，其中迷走神经最粗，交感神经较细，减压神经最细，且常与交感神经紧贴在一起，分离时不要过度牵拉，以免使神经受损。并在各神经下分别穿过一有色标记的用生理盐水浸湿的线备用。然后分离出左侧颈总动脉，并向头端追索一直到甲状软骨的上缘，此时可见到颈总动脉分支为颈内和颈外动脉。在颈内动脉的基部有一膨大处，此即颈动脉窦。在右颈总动脉下穿过二根用生理盐水浸湿的线，作结扎和固定动脉插管用。并以同样方法分离出右侧的迷走神经、交感神经和减压神经，穿线备用。
3、动脉插管：在右侧颈总动脉的近心端夹一动脉夹，然后结扎其远心端，在动脉夹与结扎
之间一般应相距2cm左右。在结扎的下方用锐剪朝向心端做一“V”切口，将动脉插管向心脏方向插入，用丝线将其敷紧结扎固定，以防插管滑出。
二、观察项目：
1、牵动颈总动脉。手持左侧颈总动脉上的穿线牵拉5秒。（同时记录刺激记号，以下各项亦
同，不另），观察心搏与动脉血压有何变化？
2、夹闭颈总动脉用动脉夹夹闭左颈总动脉5-10秒，观察心搏与血压有何变化？
3、静脉注射0.01%肾上腺素0.5-1.0ml，观察心搏与血压有何变化。
【注意事项】
1、本实验麻醉应适量，过浅动物挣扎，过深则反射不灵敏。
2、动脉插管应始终保持与动脉方向一致，防止插管刺破动脉管壁。
3、进行每一项目后，必须待心搏与血压恢复正常后方可进行下一项。
【实验结果】
牵动颈总动脉：
注射肾上腺素：
实验五影响尿液生成的因素
【实验目的】
学习用膀胱套管或输尿管套管引流的方法，观察不同生理因素对动物尿量的影响。加深对尿生成调节的理解。
【实验原理】
尿是血液流过肾单位时经过肾小球滤过，肾小管重吸收和分泌而形成的，凡对这些过程有影响的因素都可影响尿的生成。肾小球的滤过作用取决于肾小球的有效滤过压，其大小取决于肾小球毛细血管血压，血浆的胶体渗透压和肾小囊内压。影响肾小管重吸收作用主要是管内渗透压和肾小管上皮细胞的重吸收能力，后者又为多种激素所调节。
【实验对象】
家兔
【实验器材及药物】
20%氨基甲酸乙酯、肝素生理盐水溶液（100u/ml)、生理盐水、呋塞米、38度生理盐水。计算机生物信号采集处理系统、压力换能器、保护电极、兔手术台、气管插管、膀胱导管（或输尿管导管）、动脉插管、注射器（1ml、20ml）及枕头、烧杯。
【实验步骤及方法】
1.标本的制备
(1)实验兔在实验前应给予足够的菜和饮水。
(2)称重动物，耳缘静脉注射20%的氨基甲酸乙酯溶液（5 ml·kg-1体重）进行麻醉，待动物麻醉后仰卧固定于手术台上。
(3)在颈部手术①暴露气管，施气管插管；②分离左侧颈总动脉，按常规将充满肝素生理盐水的动脉插管插入其内，通过血压换能器连至记录装置，描记血压。③分离右侧的迷走神经，穿线备用，用温生理盐水纱布覆盖创面。
(4)尿液的收集
输尿管插管：沿膀胱找到并分离两侧输尿管，在靠近膀胱处穿线将它结扎；再在此结扎前约2厘米的近肾端穿一根线，在管壁剪一斜向肾侧的小切口，插入充满生理盐水的细塑料导尿管并用线扎住固定，此时可看到有尿滴滴出。再插入另一侧输尿导管。将两插管并在一起连至记滴器。手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖腹部切口。
2.实验项目
(1)记录正常情况下每分钟尿分泌的滴数。
(2)耳缘静脉注射38度的生理盐水15~20ml，观察尿量的变化。
(3)耳缘静脉注射呋塞米（5mg·kg-1），观察尿量的变化。
【注意事项】
1.选择家兔体重在
2.5-
3.0kg左右，实验前给兔多喂菜叶，或用橡皮导尿管向兔胃内灌入40～50 ml清水，以增加基础尿量。
2.手术动作要轻揉，腹部切口不宜过大，以免造成损伤性闭尿。剪开腹壁避免伤及内脏。
3.因实验中要多次进行耳缘静脉注射，因此要注意保护好兔的耳缘静脉。应从耳缘静脉的远端开始注射，逐渐向耳根部推进。
4.输尿管插管时，注意避免插入管壁和周围的结缔组织中；插管要妥善固定，不能扭曲，否则会阻碍尿的排出。
5.实验顺序的安排是：在尿量增加的基础上进行减少尿生成的实验项目，在尿量少的基础上进行促进尿生成的实验项目。一项实验需在上一项实验作用消失，血压、尿量基本恢复正常水平时再开始。
6.刺激迷走神经强度不宜过强，时间不宜过长，以免血压过低，心跳停止。
【问题分析】
1.开始实验尚未给药时，尿量就很少或无尿
(1) 兔体缺水
(2) 兔本身机能状况低下，
(3) 输尿管插管未插入输尿管内，或输尿管堵塞，或输尿管扭曲。
(4)腹部切口过大，引起抗利尿激素分泌，血压下降，尿量减少。
(5) 气温太低，动物未保温，血管收缩，尿量减少。
【实验结果】
家兔状况正常静脉注射生理盐水
20ml 静脉注射呋塞米（5mg.kg-1）
插管尿量（滴/分） 1 7 29 分析：
①由于家兔实验前的喂养条件限制，兔子缺水，另外气温太低，动物未保温，血管收缩，尿量减少，所以插管后正常情况下从插管流出的尿量极少；
②快速注射20ml体温生理盐水后，由于渗透压相当，机体体液不会被稀释，也不会影响血浆晶体渗透压，因此对尿液的排放无太大影响。
注射利尿剂以后，主要通过抑制肾小管髓袢后壁段对氯化钠的主动重吸收，结果管腔液钠离子氯离子浓度升高，而髓质间液钠离子氯离子浓度降低。使渗透压梯度差降低，肾小管浓缩功能下降，从而导致水、钠离子、氯离子排泄增多。因此出现尿液的明显增加。
实验六呼吸运动的调节
【实验目的】
掌握描记呼吸运动的方法，观察各种因素和某些药物对呼吸运动的影响，并了解其作用的机理。
【实验原理】
呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。呼吸中枢的活动受内、外环境各种刺激的影响，可直接作用于呼吸中枢或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。其中较重要的有呼吸中枢、牵张反射和各种化学感受器的反射性调节。
【实验对象】
家兔。
【实验器材与药物】
20％氨基甲酸乙酯溶液、生理盐水。生物信号采集处理系统（或二道生理记录仪、刺激器）、呼吸换能器（或张力换能器）、刺激电极、手术台、兔用手术器械一套、气管插管、50 cm 橡皮管、注射器（20 ml）、CO2球胆、空气球胆、钠石灰瓶、纱布、棉线等。
【实验步骤】
1、麻醉、固定动物、气管插管
取家兔一只，称重，用20%氨基甲酸乙酯溶液按5 ml·(kg体重)-1耳缘静脉注射，麻醉后，仰卧位固定于手术台上，剪去颈部兔毛，沿颈部正中做3～4 cm长的切口，进行气管插管。分离颈部两侧的迷走神经，穿线备用。
2、呼吸运动的描记
切开胸骨下端剑突部位的皮肤，沿腹白线剪开约2 cm小口，打开腹腔。暴露出剑突内侧面附着的两块膈小肌，仔细分离剑突与膈小肌之间的组织，并剪断剑突软骨柄（注意止血），使剑突完全游离（图3-6-1）。此时可观察到剑突软骨完全跟随膈肌收缩而上下自由运动。用一弯钩勾住剑突软骨，弯钩另一端与张力换能器相联。由换能器将信息输入生物信号采集处理系统，以描记呼吸运动曲线。
3、观察项目
（1）启动“开始”按扭，描记一段正常呼吸曲线，观察正常呼吸运动与曲线的关系。
（2）增大无效腔：夹闭一侧气管套管，呼吸平稳后，另一侧套管接一段约50 cm长的橡皮管，动物通过此橡皮管呼吸，观察呼吸运动的变化，结果明显后去掉橡皮管恢复正常呼吸。
（3）切断一侧迷走神经，呼吸运动有何变化；再将另一侧迷走神经结扎后在离中端剪断，呼吸运动又有何变化。
【实验结果及分析】
1、正常情况下呼吸曲线
分析：
在正常麻醉状态下，实验动物保持平稳的呼吸节律，其中上升支为吸气，下降支为呼气；曲线疏密反映呼吸频率，曲线高度反映呼吸幅度。
动物节律性呼吸的基本中枢位于延髓，在肺牵张反射和呼吸调整中枢的共同调节下，维
持节律平稳的节律性呼吸。
2、增大无效腔后呼吸曲线：
分析：增大无效腔，呼吸加深加快。增加无效腔以后，主要是使呼吸道的阻力加大而加强呼吸运动，另外也有通气量不足造成的氧分压和二氧化碳分压的影响。
呼吸道的阻力的加大使呼吸肌收到的牵拉力增加，呼吸肌本体感受器兴奋增强，通过传入神经达到中枢，反射性引起被牵拉呼吸肌收缩的加强，使呼吸运动增强。
3、切断左边迷走神经后呼吸曲线：
分析：切断一侧迷走神经，吸气稍有延长，频率变慢。切断一侧迷走神经时，肺牵张感受器感受到的肺扩张刺激不能传至延髓的呼吸中枢，吸气不能及时转变为呼气，使吸气延长；但由于脑桥呼吸调整中枢的作用，在吸气后仍可转变为呼气，表现为长吸式呼吸。但由于另一侧迷走神经的代偿作用，呼吸频率变化不十分明显。
4.切断两侧迷走神经后
结论：呼吸运动是一种节律性的活动，其深度和频率随体内、外环境条件的改变而改变，如增大无效腔、增大呼入的CO2体积、减小呼入的O2体积、窒息、血液中的[H+]升高，使呼吸加深、加快，幅值增加，频率加快；减小无效腔，呼吸减慢，幅值减小，频率减慢。剪断两侧迷走神经，肺的牵张反射消失，呼气和吸气不能正常进行。刺激迷走神经向中端，看到呼吸幅值降低，频率加快，表现浅、快呼吸。喷嚏反射时，抑制呼吸肌，用力吸气，兴奋呼吸肌用力呼气，排出鼻腔中的异物。通过神经、体液、神经-体液调节，对外界的刺激做出相应的反应，以与机体代谢相适应。
【思考题】
迷走神经在节律性呼吸运动中起何作用？
答：迷走神经主要参与肺牵张反射。包括了肺扩张反射和肺萎陷反射两部分。吸气时，肺被扩张，气道的牵张感受器受刺激，发放冲动通过迷走神经到达延髓，切断吸气神经元的活动，使吸气过程终止。此为肺扩张反射。
肺萎陷反射同理，呼气时肺萎陷，气道的牵张感受器受刺激，通过迷走神经来使呼气终
止，然后转入吸气。此反射只在肺明显缩小的时才出现。需指出的是，在平静呼吸时，呼气和吸气的相互转化并不是由肺牵张反射来发动的。
生理学实验报告
生理学实验报告 实验题目： 蛙的体循环血压、心肌收缩和心电图（ECG）的同步记录与分析 课程名称：生理学实验 专业：10级生物技术及应用（基地班） 教室：A414 学生姓名：徐棒夏凡女 学号：10350083 10350081 指导老师：龙天澄张碧鱼陈笑霞 日期：2012年5月15日 一．实验目的 1.学习并掌握蛙的体循环血压、心肌收缩和心电图（ECG）的同步记录 2.记录和分析植物神经系统和重要神经递质对血压、心电（心肌的电生理特性）和心搏（心肌的收缩特性）的影响。 二．动物与器械 青蛙；蛙心插管、常用手术器械、计算机采集系统、蛙心夹、YP100压力换能器、三通管、注射器、保护电极、露丝电极、一维位移微调器、固定针、蜡盘、培养皿、污物缸、棉线、纱布、滴管、小烧杯；任氏液、石蜡油、肾上腺素溶液、乙酰胆碱溶液、肝素溶液；
三．实验原理 神经与体液因素对心血管功能的调节可通过心肌收缩力、心电图和血压的变化反映出来。尤其是血压的指标直接反映了心输出量和外周阻力的变化，可以较好的评价整体的心血管功能。 本实验用青蛙主动脉插管法，直接测量血压，并同步记录心搏和心电图。记录和分析植物神经系统和重要神经递质对血压、心电（心肌的电生理特性）和心搏（心肌的收缩特性）的影响。 四．实验步骤 1. 分离迷走交感混合神经干 按常规方法用探针刺毁蟾蜍的脑和脊髓，将动物背位放在蛙板上。把左侧下颌角与前肢间的皮肤纵向剪开，用镊子紧贴下颌角分离皮下组织。找到体轴走向的提肩胛肌，小心地将提肩胛肌横向剪断，即可见到其下方的血管神经束（皮动脉，颈静脉和迷走-交感混合干）。在迷走—交感混合干下方穿一线，用玻璃分针分离开神经，用湿生理棉球暂将神经覆盖，以避免神经干燥。 2. 暴露心脏 在胸骨柄后方的皮肤上先剪开一小的切口，再自切口处向左右两侧锁骨外侧方向剪开皮肤，切口成V形，把切开的皮肤掀向头端。在胸骨柄后方的腹肌上也剪一小切口，沿身体正中方向剪开剑突和胸骨（剪子尖向上翘以免损伤血管和心脏），剪断左右乌喙骨和锁骨及提臂肌，使胸部创口也呈V形。可见到心包和心脏。用眼科剪剪开心包膜，在心脏舒张时夹上蛙心夹。蛙心夹拴线的另一端与张力换能器相连（换能器的输出端与生理信号采集处理系统的一个输入通道相连）。 3. 主动脉插管 YP100压力换能器的直端和侧端管上加装三通管。从侧管注入液体石蜡，将系统内气泡赶净。用装有50%柠檬酸钠溶液（肝素-任氏液）的注射器连接于侧端管上，直端管上连接心脏插管。 用线结扎动脉的远心端，在左主动脉分叉处穿线备用。用手术剪在结扎处与穿线处剪一V形口，将插管经V形口插入动脉圆锥适当深度。穿线结扎并固定于插管上。
生理学实验报告教案
生医2012秋生理学实验报告 指导教师： 实验员： 学号： 联系方式：
实验一骨骼肌的观察及骨骼肌的单收缩与强直收缩 【目标要求】 1.掌握蛙类动物单毁髓的实验方法。 2.掌握坐骨神经-腓肠肌标本和坐骨神经干标本的制备方法。 3.学习肌肉收缩的记录方法。 4.观察与分析肌肉单收缩的三个时相，分析骨骼肌收缩形式与刺激频率之间的关系。 【基本原理】 蛙类动物的某些基本生命活动，如神经的生物电活动、肌肉收缩等与哺乳动物相似。其离体组织所需的生活条件比较简单，易于控制和掌握，而且动物来源丰富，因此在生理学实验中常用蟾蜍的坐骨神经—腓肠肌标本永和坐骨神经标本来观察组织的兴奋性、刺激与反应的规律以及骨骼肌收缩的特点等。 肌肉受到一次阈上刺激而产生的一次收缩为单收缩，其过程可分为三个时相，即潜伏期、缩短期与舒张期。肌肉收到连续的阈上刺激时，如果刺激间隔小于单收缩的时程，相邻两单收缩的时相会出现融合，表现为强直收缩现象。如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的舒张期，称不完全强直收缩，如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的缩短期，称完全强直收缩。躯体运动是以骨为杠杆，以关节为枢纽，由肌肉收缩产生动力完成的。 【材料与器械】 蟾蜍或蛙，蛙类手术器械（手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、金冠剪、毁髓针、玻璃针、固定针），蛙板，玻璃板，锌铜弓，小烧杯，滴管，纱布，细棉线，任氏液。 BL-420生物机能实验系统（或其他生理记录仪），张力换能器。 【实验步骤】 1.双毁髓的方法 一手握蟾蜍，食指按压头部前端，拇指压住躯干背部，令其背部向上，头向前俯；另一手持毁髓针在左右耳后腺之间，背部的凹陷处将毁髓针垂直刺入，然后将针尖向前刺入颅腔，搅动以捣毁脑组织，此时的动物为单毁髓动物。彻底捣毁脊髓时，可见蟾蜍后肢突然蹬直，然后瘫软。如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动自如，表明未毁坏脊髓，必须重新毁髓。 2.剥制后肢标本 将双毁髓的蟾蜍背面向上放在蛙板上，一手持手术镊轻轻提起两前肢之间背部的皮肤，另一手持手术剪横向剪开皮肤，暴露脊柱。用金冠剪横向剪断脊柱。一首持手术镊提起断开的脊柱后端，另一手用金冠剪沿脊柱两侧剪开体壁，再剪断下腹壁肌肉，使头部、前肢及内脏自然下垂，将其自腹后壁剪除。然后用蘸有任氏液的左手捏住断开的脊柱后端，右手向后方撕剥皮肤，将剥干净的后肢放入盛有任氏液的培养皿中。弃其头部、内脏及剥下的皮肤，清洗手及手术器械上的污物。 3.分离两后肢 左手托起去皮的标本，右手持金冠剪直接剪开耻骨联合，随后剪开两后肢相连的肌肉组
生理学实验报告一
生理学实验报告 一、实验题目： 1．实验员：马冰（0941054） 2．时间：2011年10月10日 3．组号：第二组 4．班级：09生科 二、实验目的 1．熟悉并掌握生物信号采集处理系统 2．掌握蛙类坐骨神经腓肠肌标本和坐骨神经干标本的制备技术 3．观察不同刺激强度、刺激频率对骨骼肌收缩形式的影响 4．观察电刺激对神经兴奋性、兴奋传导的影响 5．熟悉阈强度、最适刺激强度及单收缩、完全强直收缩之间的关系 三、实验原理 兴奋性：可兴奋组织对外界刺激发生反应的能力（或细胞受刺激时产生动作电位的能力）。 兴奋：也就是动作电位，指可兴奋细胞受阈刺激或阈上刺激时，细胞在静息电位的基础上发生一次迅速的、短暂的并可扩布的电位变化。 阈强度：在刺激持续时间和刺激强度-时间变化率固定时，引起可兴奋细胞产生动作电位的最小刺激强度，也叫阈值或阈刺激。 阈刺激或阈上刺激产生动作电位，其特点：①“全或无”现象；②进行长距离无衰减传递（神经纤维、骨骼肌细胞等）。 阈下刺激引起局部电兴奋，其特点：①幅度在阈下刺激的范围内，随刺激强度的增大而升高；②在细胞膜上可进行电紧张性扩布，即衰减性传播；③可以相互融合（时间总和、空间总和）。 最适刺激强度：引起肌肉产生最大收缩时的最小刺激强度。 单收缩：肌肉受到一次短促的刺激时，会产生一次机械性收缩和舒张的过程。 兴奋性作为三大基本生命现象（新陈代谢、兴奋性、生殖）具有重要的生理意义。那么，什么叫兴奋性呢？它是指可兴奋组织对外界刺激发生反应的能力。所有可兴奋组织产生兴奋
（也就是动作电位）都必须有一个条件：刺激。 刺激包括三方面的内容：刺激强度、刺激时间、刺激强度-时间变化率。其中，刺激强度就是电刺激的脉冲电压，刺激时间就是某个单刺激所持续的时间。 刺激强度对骨骼肌收缩形式的影响（固定刺激的时间和刺激强度-时间变化率）：单根神经纤维或肌纤维对刺激的反应是“全或无”式的。但在神经纤维肌肉标本中，则表现为当刺激强度很小时（阈下刺激），不能引起神经纤维动作电位的产生和肌肉的收缩；当刺激强度在一定范围内变动时，肌肉收缩的幅度与之成正比。因为坐骨神经干中含有数千万条粗细不等的神经纤维，其兴奋性各不相同。弱刺激只能使其中少量兴奋性高的神经纤维先兴奋，并引起它所支配的少量肌纤维收缩。随着刺激强度逐渐增大，发生兴奋的神经纤维数目逐渐增多，其所引起收缩的肌纤维数目亦增多，结果肌肉收缩幅度随刺激强度的增加而增强。当刺激达到某一强度时，神经干中全部神经纤维兴奋，它们所支配的全部肌纤维也都发生兴奋和收缩，从而引起肌肉的最大收缩。此后，若再增加刺激强度，肌肉收缩幅度将不再增加。我们把引起肌肉产生最大收缩时的最小刺激强度叫最适刺激强度。 刺激频率对骨骼肌收缩形式的影响（把刺激强度固定在最适刺激强度，把单刺激改为连续单刺激）：刺激频率就是单位时间内连续刺激的次数。随着刺激频率的增高，肌肉的反应依次表现为单收缩、不完全强直收缩和完全强直收缩： ⑴如果刺激频率很小时，每相邻两个刺激的间隔时间很大，当其大于肌肉收缩的收缩期和舒张期之和时，肌肉表现为一个个的单收缩。单收缩包括收缩期及舒张期。前者占时较后者为短。 ⑵当逐渐增加刺激频率，使新的刺激引起的肌肉收缩落在前一个刺激引起肌肉收缩的舒张期，这样，肌肉在连续未完全舒张的基础上就开始新的收缩，形成锯齿样的不完全强直收缩张力曲线。 ⑶当刺激频率继续增大时，新的刺激引起肌肉收缩落在前一次刺激引起肌肉收缩的收缩期，这样，肌肉在连续收缩不全的基础上出现新的收缩，形成一个类似方波的完全强直收缩张力曲线。 四、实验方法和步骤 （见生理学实验指导P36，P40，P44） 五、实验对象 蟾蜍
神经生理学模拟实验报告材料
实用文档专业：应用心理学 ： 学号：日期：地点：汪加诚3110102422 2016.1024 医学楼 C512 实验报告 课程名称：实验名称： 神经生理学指导老师：成绩： 同组学生：神经干不应期的测定实验类型：模拟实验 一、实验目的 了解蛙类坐骨神经干产生动作电位后其兴奋性的规律性变化。学习绝对不应期和相对不 应期的测定方法。 二、实验原理 神经组织和其他可兴奋组织一样，在接受一次刺激产生兴奋以后，其兴奋性将会发生规 律性的变化，依次经过绝对不应期、相对不应期，超常期和低常期，然后再回到正常的兴奋 水平。 采用双脉冲刺激的方法。将两刺激脉冲间隔由最小逐渐增大时，开始只有第一个刺激脉 冲刺激产生动作电位(action potential, AP)，第二个刺激脉冲刺激不产生 AP，当两刺激脉 冲间隔达到一定值时，此时第二个刺激脉冲刚好能引起一极小的 AP，这时两刺激脉冲间隔即 为绝对不应期。继续增大刺激脉冲间隔，这时由第二个刺激脉冲刺激产生的 A P逐渐增大，当 两刺激间隔达到某一值时，此时由第二个刺激脉冲刺激产生的 AP，其振幅刚好和由第一个刺 激产生的 A P相同，这时两刺激脉冲间隔即为相对不应期。 三、材料和方法 【材料】：蟾蜍或蛙；标本屏蔽盒、任氏液、微机生物信号采集处理系统。 【实验方法】： 1．系统连接和仪器参数设置 （1）RM6240 系统：点击“实验”菜单，选择“肌肉神经”或“生理科学实验项目”菜 单中的“神经干兴奋不应期的测定”或“神经干兴奋不应期的自动测定”项目。系统进入该 实验信号记录状态。仪器参数：1通道时间常数 0.02s、滤波频率 1KHz、灵敏度 4mV，采样频率 80KHz，扫描速度 1ms/p。双刺激激模式，最大刺激强度，刺激波宽 0.1ms，起始波间隔 30 ms，延迟 2ms，同步触发。
生理学实验报告
生理学实验报告 坐骨神经-腓肠肌标本的制备 一、实验目的及要求 学习蛙类动物双毁髓的方法 掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术，为此后有关的神经肌肉实验打下基础。 二、实验原理 蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与温血动物近似，而且其离体组织需要的生活条件非常简单，易于控制和掌握。因
此在生理学实验中，坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象，经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。 三、实验对象 蟾蜍或蛙。 四、实验器材及药品 蛙类手术器械一套（金属探针1根，粗剪刀、眼科剪刀各1把，圆头镊子、眼科镊子各1把，玻璃分针2根），蛙板和玻璃板各1块，培养皿，滴管，废物缸、锌铜弓，丝线，棉花；任氏液。 五、实验方法及步骤 1、双毁髓：左手握蟾蜍，背部向上。用食指按压其头部前端，拇指压住躯干的背部，使头向前俯；右手持毁髓针，由两眼之间中线向后方划触，触及两耳后腺之间的凹陷处即是枕骨大孔的位置。将毁髓针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔，然后针尖向前刺入颅腔，在颅腔内搅动，以毁脑组织。再将毁髓针退至枕骨大孔，针尖转向后方，与脊柱平行刺入椎管，以捣毁脊髓。脊髓彻底捣毁时，可看到蟾蜍后肢突然蹬直，然后瘫软，此时的动物为双毁髓动物。 2、剥制后肢标本：左手持手术镊提起两前肢之间背部的皮肤，右手持手术剪横向剪断皮肤，然后往后肢方向撕剥皮肤。剪开腹壁肌肉，用手术镊提起内脏，翻向头部，在看清支配后肢的脊神经发出部位后，于其前方剪断脊柱。 3、分离两后肢：将去皮的后肢腹面向上置于解剖盘上，右手持
金冠剪纵向剪开脊柱，再剪开耻骨联合，使两后肢完全分离。 4、分离坐骨神经：将一侧后肢的脊柱端腹面向上，用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经，股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的裂缝，找出坐骨神经，剪断盖在上方的梨状肌，完全暴露坐骨神经，剪去支配腓肠肌之外的分支，再剪去脊柱及肌肉，只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。 5、分离股骨头：沿膝关节剪去股骨周围的肌肉，保留股骨的后2/3，剪断股骨。 6、游离腓肠肌：在腓肠肌跟腱下穿线并结扎，提起结扎线，剪断肌腱与胫腓骨的联系，游离腓肠肌，剪去膝关节下部的后肢，保留腓肠肌与股骨的联系，制备出完整的坐骨神经-腓肠肌标本。标本应包括：坐骨神经、腓肠肌、股骨头和一段脊柱骨四部分。 7、检验标本：用任氏液沾湿的锌铜弓的两极接触神经，如腓肠肌发生收缩，则标本机能正常，把标本固定在肌槽上。 8、连接好装置，调节适宜的灵敏度及刺激强度，开动记录仪，走纸速度为10mm/s,用手控触发开关，以单脉冲刺激神经，记录肌肉的单收缩曲线。 9、分别用1 Hz、2 Hz、3 Hz、4 Hz、6 Hz、12 Hz、24 Hz、30Hz 等频率去刺激坐骨神经，记录肌肉的收缩曲线。 六、分析及讨论 七、思考题 ?1．剥去皮肤的后肢，能用自来水冲洗吗？为什么？
植物生理学实验指导
植物生理学实验指导 主编张立军 参编（按姓氏汉语拚音） 樊金娟郝建军 刘延吉阮燕晔 朱延姝
沈阳农业大学植物生理学教研室 2004年1 月 序 实验课是提高学生动手能力，提高分析问题和解决问题能力的重要途径。植物生理学教研室的全体教师和实验技术人员经过多年的教改探索，认为实验课教学要注意基本实验技能的训练、要有助于提高学生的动手能力，有助于使学生熟悉实验工作；实验内容要有挑战性，能够吸引学生的兴趣。为此，我们在借鉴国外高校和国内其他高校的先进教学经验的基础上，提出了一系列提高实验课教学质量的改革措施，这些措施涉及到实验内容的设置、实验的设计、实验报告的写作，以及实验指导书的编写等多个方面。本学期的实验教学是我们实验教学改革探索的一部分。所有的实验都设计成研究型的，有适当的处理，并尽可能的设置重复。同学们能够通过实验解释一个理论或实际问题。在本次编写的实验指导中我们给出了大量的思考题，有的涉及实验中应注意的问题，有的涉及实验技术的应用，有的涉及实验方法的应用扩展；此外，我们还要求实验报告的形式类似于正式发表的科研报告，并附有写作说明，这有利于培养学生写作科研论文的能力。为了培养良好的科研习惯，对每个实验还都给出相应的记录方式。 本学期是我们教研室首次按这项教学改革研究成果组织教学，希望广大同学配合，也希望相关专业老师、相关部门的领导及广大同学提出宝贵意见、以便使植物生理学实验教学改革更加完善。 张立军 2004 年1月30日 2014年12月29日 1
附：参加教学改革人员： 刘延吉郝建军樊金娟朱延姝阮燕晔康宗利付淑杰于洋 目录 Section 1（1h） 植物生理学实验课简介 1．教学目的 2．教学要求和考核 3．实验内容介绍 4．实验室安全要求 Section 2（6h） 一、植物的光合速率测定-----改良半叶法 二、植物叶绿素素含量测定----丙酮提取法 Section 3（6h） 三、植物组织水势测定----小液流法 四、植物根系活力测定----甲烯蓝法 Section 4（6h） 五、植物抗逆性鉴定----电导率仪法 六、植物组织丙二醛含量测定 Section 5（4h） 七、植物组织硝态氮含量的测定 Section 6（4h） 八、植物呼吸酶活性测定 2
生理学ABO血型鉴定实验报告模板.doc
实验名称： ABO血型鉴定 实验人员： 实验日期：年月日室温：27℃大气压：1个标准大气压 （一）实验目的 学习ABO型血的鉴定原理和方法。观察红细胞凝集现象，了解抗原抗体反应。 （二）实验原理 血型就是红细胞膜上特异抗原的类型。在ABO血型系统中，红细胞膜上抗原分A和B两种抗原，而血清抗体分抗A和抗B两种抗体。A抗原加抗A抗体或B抗原加抗B抗体，则产生凝集现象。血型鉴定是将受试者的红细胞加入标准A型血清（含有抗B抗体）与标准B型血清（含有抗A抗体）中，观察有无凝集现象，从而测知受试者红细胞膜上有无A或/和B抗原。在ABO血型系统，根据红细胞膜上是否含A、B抗原而分为A、B、AB、O四型。 （三）实验材料 消毒采血针；载玻片；消毒棉签；抗A、抗B血型定型试剂；75%乙醇；受检者血液 （四）实验步骤 （1）取双凹玻片一块，用干净纱布轻拭使之洁净，在玻片两端用腊笔标明A及B，并分别各滴入A及B标准血清一滴。 （2）细胞悬液制备从指尖或耳垂取血一滴，加入含1ml生理盐水的小试管内，混匀，即得约5％红细胞悬液。采血时应注意先用75％酒精消毒指尖或耳垂。 （3）用滴管吸取红细胞悬液，分别各滴一滴于玻片两端的血清上，注意勿使滴管与血清相接触。 （4）竹签两头分别混合，搅匀。 （5）10～30min后观察结果。如有凝集反应可见到呈红色点状或小片状凝集块浮起。先用肉眼看有无凝集现象，肉眼不易分辨时，则在低倍显微镜下观察，如有凝集反应，可见红细胞聚集成团。 （6）判断血型根据被试者红细胞是否被A，B型标准血清所凝集，判断其血型。
（五）实验结果： 表1 实验情况 标准A血清标准B血清 人血凝集情况不凝集凝集 从上表可知：人血与标准A血清（含抗B抗体）混合后不发生凝集；人血与标准B血清（含抗A抗体）混合后发生凝集。 （六）讨论： 血型通常是指红细胞膜上特异性抗原的类型。若将血型不相容的两个人的血液滴加在玻片上并使之混合，则红细胞可凝集成簇，这一现象称为红细胞凝集。在补体的作用下，可引起凝集的红细胞破裂，发生溶血。当给人体输入血型不相容的血液时，在血管内可发生红细胞凝集和溶血反应，甚至危及生命。红细胞凝集的本质是抗原-抗体反应。红细胞膜上抗原的特异性取决于抗原决定簇，这些抗原在凝集反应中被称为凝集原。能与红细胞膜上的凝集原起反应的特异抗体则称为凝集素。凝集素为γ-球蛋白，存在于血浆中。发生抗原-抗体反应时，由于每个抗体上具有2～10个抗原结合位点，因此抗体可在若干个带有相应抗原的红细胞之间形成桥梁，使它们聚集成簇，从而发生凝血。根据红细胞膜上是否存在A抗原和B 抗原可将血液分为四种ABO血型：红细胞膜上只含有A抗原者为A型；只含B抗原者为B 型；含有A与B两种抗原者为AB型；A和B两种抗原均无者为O型。不同血型的人的血清中含有不同的抗体，但不会含有与自身红细胞抗原相对应的抗体。在A型血的血清中，只含有抗B抗体；B型血的血清中只含有抗A抗体；AB型血的血清中没有抗A和抗B抗体；而O 型血的血清中则含有抗A和抗B两种抗体。 表2 ABO血型中的抗原和抗体 血型红细胞膜上所含的抗原血清中所含的抗体O 无A也无B 抗A和抗B A A 抗B B B 抗A AB A和B 无抗A也无抗B 正确鉴定血型是保证输血安全的基础。常规ABO血型的定型包括正向定型和反向定型。正向定型是用抗A与抗B抗体检测来检查红细胞上有无A或B抗体；反向抗体是用已知血型的红细胞检测血清中有无抗A或抗B抗体，结果见表10-3.同时进行正向定型和反向定型是
生理学实验报告
生理学实验报告
实验一坐骨神经-腓肠肌标本制备 [1] 实验目的 1.学习机能学实验基本的组织分离技术； 2.学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法； 3.了解刺激的种类。 [2] 实验原理 蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张一次，表明神经和肌肉产生了一次兴奋。在机能学实验中常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性，刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等，制备坐骨神经腓肠肌标本是机能学实验的一项基本操作技术。 [3] 实验对象 蛙 [4] 实验药品 任氏液 [5] 仪器与器械 普通剪刀、手术剪、眼科镊（或尖头无齿镊）、金属探针（解剖针）、玻璃分针、蛙板（或玻璃板）、蛙钉、细线、培养皿、滴管、电子刺激器。 [6] 实验方法与步骤 ①破坏脑、脊髓 取蛙一只，用自来水冲洗干净（勿用手搓）。左手握住蛙，使其背部向上，用大拇指或食指使头前俯(以头颅后缘稍稍拱起为宜)。右手持探针由头颅后缘的枕骨大孔处垂直刺入椎管（图3-1-1）。然后将探针改向前刺入颅腔内，左右搅动探针2～3次，捣毁脑组织。如果探针在颅腔内，应有碰及颅底骨的感觉。 再将探针退回至枕骨大孔，使针尖转向尾端，捻动探针使其刺入椎管，捣毁脊髓。此时应注意将脊柱保持平直。针进入椎管的感觉是，进针时有一定的阻力，而且随着进针蛙出现下肢僵直或尿失禁现象。若脑和脊髓破坏完全，蛙下颌呼吸运动消失，四肢完全松软，失去一切反射活动。此时可将探针反向捻动，退出椎管。如蛙仍有反射活动，表示脑和脊髓破坏
生理学实验报告蛙心灌流
生理学实验报告-蛙心灌流
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蛙类离体心脏灌流 一、【目的要求】 1、学习离体蛙心灌流法。 2、观察Nａ＋,K+,Ｃa2+及肾上腺素(Adｒ),乙酰胆碱（ＡCｈ)，乳酸对离体心脏活动的影响。 二、【原理】 将离体蛙心（失去神经支配的蛙心）保持在适宜的环境中，在一定的时间内仍然能够保持节律性收缩,心脏正常的节律性活动需要一个适宜的理化环境，离体心脏也是如此，离体心脏脱离了机体的神经支配和全身体液因素的直接影响，可以通过改变灌流液的某些成分,观察其对心脏活动的作用。心肌细胞的自律性、兴奋性、传导性及收缩性，都与钠、钾及钙等离子有关。外源性给予去甲肾上腺素或乙酰胆碱可产生类似心交感神经或迷走神经兴奋时对心脏的作用。 三、【实验仪器】 青蛙、常用手术器械、蛙板（或蜡盘)、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿(或小烧杯)、棉线、任氏液。套管夹、0．６5％ＮaＣl、２％ＣａＣl2、1%KCl、１：1０000肾上腺素、1：10000乙酰肌碱、3%乳酸。 四、【方法与步骤】 １、斯氏蛙心插管法 (１)一只青蛙,双毁髓后背位置于蜡盘中,按前面的方法暴露心脏。仔细识别心脏周围的大血管(见右图)。在左主动脉下方穿一线，于动脉圆锥处结扎(动物个体小时,结扎位置可靠上些)。再从左右两主动脉下方穿一线，并打一活结备用。左手提起主动脉上的结扎线,右手用眼科剪在结扎线下方、沿向心方向将动脉上壁剪一斜口。选择大小适宜的蛙心套管，然后将盛有少量(套管内2～3cm高度)任氏液(内加入一滴肝素溶液)的斯氏蛙心套管，山开口处插入动脉圆锥(见右图)。当套管尖端到达动脉圆锥基部时,应将套管稍稍后退,使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进,经主动脉瓣插入心室腔内（于心室收缩时插入,但不可插得过深,以免心室壁堵住套管下口)。此时可见套管中血液冲人套管，并使液面随心脏搏动而亡下移动，表明操作成功(否则需退回并重新插入）。用滴管吸去套管中的血液,更换新鲜任氏液。稳定住套管后，轻轻提起备用线，将左、右主动脉连同插入的套管用双结扎紧(不得漏液）,再将结线固定在套管的小玻璃钩上，然后剪断结扎线上方的血管。轻轻提起套管和心脏,看清静脉窦的位置,于静脉窦下方剪断有牵连的组织，仅保留静脉窦与心脏的联系，使心脏离体(切勿损伤静脉窦)。用任氏液反复冲洗心室内余血,使套管内灌流液不再有残留血液。保持套管内液面高度一致（１．５~２ｃm）,即可进行实验。 (2）将插好离体心脏的套管固定在支架上,用蛙心夹夹住少许心尖部肌肉(不可夹得过多，以免因夹破心室而漏液)。再将蛙心夹上的系线绕过一个滑轮与张力传感器相连(如右图）。注意:勿使灌流液滴到传感器上。调节显示器上心脏收缩曲线的幅度适中。 2、实验观察 (1）记录正常心搏曲线 (2）改用0．65%ＮaCＩ溶液灌流,并作好加药标记,观察心搏变化。待曲线氏插管装置出现明显变化时,立即吸去套管中的灌流液,同时做好冲洗标记，并用新鲜任氏液清洗2—3次,待心搏恢复正常。注意:换液时切勿碰套管，以免影响描记曲线的基线,同时保持灌流液面一致(以下同）。
生理学实验报告
医专 生理学实验报告（五） 一、实验题目：心血管活动的神经与体液调节 二、实验目的： 1、学习家兔动脉血压的直接描记方法； 2、观察神经、体液因素对心血管活动和动脉血压的影响。 三、实验对象：家兔 四、实验物品：BL-420生物功能实验系统、压力换能器、动脉插管、 动脉夹、剌激电极、哺乳类动物手术器械、注射器、实验用药品等 五、实验原理： 在正常机体，血压的变动并不大，而是经常维持在一个相对稳定的水平。机体对心血管活动的调节是通过各种心血管反射实现的。其中最重要的反射是颈动脉窦和主动脉弓压力感受器反射。改变压力感受器活动或剌激反射弧的传入、传出神经会引起心血管活动的改变，进而导致动脉血压的相应变化。在正常体，心血管活动还受肾上腺素和去甲肾上腺等体液因素的调节。通过静脉注射，改变血液中肾上腺素、去甲肾上腺素的浓度，也会影响心血管活动，从而使血压发生改变。
六、实验结果与简要分析：
七、实验结论：心血管活动和动脉血压受神经、体液因素的调节。 医专 生理学实验报告（六） 一、实验题目：1、呼吸运动的调节 2、胸负压测定 3、肺活量测定 二、实验目的： 1．学习记录哺乳动物呼吸运动的方法；观察体液中O2、CO2和H+水平变化对呼吸运动的影响；了解肺牵反射在呼吸运动中的作用。 2．观察胸负压， 3．学会用简易肺活量计测量肺活量的方法。 三、实验对象：1、家兔 2、人 四、实验物品：BL-420生物功能实验系统、力换能器、气管插管、50cm长橡皮管一条、注射器（20ml、5ml）、钠石灰瓶、肺活量计等五、实验原理： 呼吸运动是呼吸肌舒缩活动完成的节律性运动，该节律性运动在呼吸中枢的控制下保持正常的深度和频率。体、外多种剌激可通过不同机制作用于呼吸中枢，引起呼吸运动的改变。肺牵反射参与呼吸节
最新神经生理学模拟实验报告优秀文档
专业：应用心理学 姓名：学号：日期：地点： 汪加诚3110102422 2016.1024医学楼 C512 实验报告 课程名称：实验名称： 神经生理学指导老师：成绩： 同组学生姓名：神经干不应期的测定实验类型：模拟实验 一、实验目的 了解蛙类坐骨神经干产生动作电位后其兴奋性的规律性变化。学习绝对不应期和相对不 应期的测定方法。 二、实验原理 神经组织和其他可兴奋组织一样，在接受一次刺激产生兴奋以后，其兴奋性将会发生规 律性的变化，依次经过绝对不应期、相对不应期，超常期和低常期，然后再回到正常的兴奋 水平。 采用双脉冲刺激的方法。将两刺激脉冲间隔由最小逐渐增大时，开始只有第一个刺激脉 冲刺激产生动作电位(action potential, AP)，第二个刺激脉冲刺激不产生 AP，当两刺激脉 冲间隔达到一定值时，此时第二个刺激脉冲刚好能引起一极小的 AP，这时两刺激脉冲间隔即 为绝对不应期。继续增大刺激脉冲间隔，这时由第二个刺激脉冲刺激产生的 A P逐渐增大，当两刺激间隔达到某一值时，此时由第二个刺激脉冲刺激产生的 AP，其振幅刚好和由第一个刺 激产生的 A P相同，这时两刺激脉冲间隔即为相对不应期。 三、材料和方法 【材料】：蟾蜍或蛙；标本屏蔽盒、任氏液、微机生物信号采集处理系统。 【实验方法】： 1．系统连接和仪器参数设置 （1）RM6240 系统：点击“实验”菜单，选择“肌肉神经”或“生理科学实验项目”菜 单中的“神经干兴奋不应期的测定”或“神经干兴奋不应期的自动测定”项目。系统进入该 实验信号记录状态。仪器参数：1通道时间常数 0.02s、滤波频率 1KHz、灵敏度 4mV，采样频率 80KHz，扫描速度 1ms/p。双刺激激模式，最大刺激强度，刺激波宽 0.1ms，起始波间隔 30 ms，延迟 2ms，同步触发。
生理学实验报告-蛙心灌流(2)
蛙类离体心脏灌流 一、【目的要求】 1、学习离体蛙心灌流法。 2、观察Na+,K+,Ca2+及肾上腺素(Adr),乙酰胆碱(ACh),乳酸对离体心脏活动的影响。 二、【原理】 将离体蛙心（失去神经支配的蛙心）保持在适宜的环境中，在一定的时间内仍然能够保持节律性收缩，心脏正常的节律性活动需要一个适宜的理化环境，离体心脏也是如此，离体心脏脱离了机体的神经支配和全身体液因素的直接影响，可以通过改变灌流液的某些成分，观察其对心脏活动的作用。心肌细胞的自律性、兴奋性、传导性及收缩性，都与钠、钾及钙等离子有关。外源性给予去甲肾上腺素或乙酰胆碱可产生类似心交感神经或迷走神经兴奋时对心脏的作用。 三、【实验仪器】 青蛙、常用手术器械、蛙板(或蜡盘)、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿(或小烧杯)、棉线、任氏液。套管夹、0．65％NaCl、2％CaCl2、1％KCl、1：10000肾上腺素、1：10000乙酰肌碱、3%乳酸。 四、【方法与步骤】 1、斯氏蛙心插管法 （1）一只青蛙，双毁髓后背位置于蜡盘中，按前面的方法暴露心脏。仔细识别心脏周围的大血管(见右图)。在左主动脉下方穿一线，于动脉圆锥处结扎(动物个体小时，结扎位置可靠上些)。再从左右两主动脉下方穿一线，并打一活结备用。左手提起主动脉上的结扎线，右手用眼科剪在结扎线下方、沿向心方向将动脉上壁剪一斜口。选择大小适宜的蛙心套管，然后将盛有少量(套管内2～3 cm高度)任氏液(内加入一滴肝素溶液)的斯氏蛙心套管，山开口处插入动脉圆锥(见右图)。当套管尖端到达动脉圆锥基部时，应将套管稍稍后退，使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进，经主动脉瓣插入心室腔内(于心室收缩时插入，但不可插得过深，以免心室壁堵住套管下口)。此时可见套管中血液冲人套管，并使液面随心脏搏动而亡下移动，表明操作成功(否则需退回并重新插入)。用滴管吸去套管中的血液，
生理学实验报告材料-蛙心灌流
实验名称： 蛙类离体心脏灌流 课程名称：生理学实验 指导教师：龙天澄碧鱼笑霞 实验人：叶永锋08344031 学院：海洋学院
实验时间：2009年12月09日 一、【目的要求】 1、学习斯氏离体蛙心灌流法。 2、了解心肌的生理特性。 3、观察Na+,K+,Ca2+及肾上腺素(Adr),乙酰胆碱(ACh)等对离体心脏活动的影响。 二、【原理】 将离体蛙心（失去神经支配的蛙心）保持在适宜的环境中，在一定的时间仍然能够保持节律性收缩，心脏正常的节律性活动需要一个适宜的理化环境，离体心脏也是如此，离体心脏脱离了机体的神经支配和全身体液因素的直接影响，可以通过改变灌流液的某些成分，观
察其对心脏活动的作用。心肌细胞的自律性、兴奋性、传导性及收缩性，都与钠、钾及钙等离子有关。血钾浓度过高时（高于7.9mmol/L），心脏兴奋性、自律性、传导性及收缩性都下降，表现为收缩力减弱、心动过缓和传导阻滞，严重时心脏可停搏于舒期。血钙浓度升高时，心脏收缩力增强，过高可使心室停搏于收缩期。血钙浓度降低，心肌收缩力减弱。血中钠离子浓度的轻微变化，对心肌影响不明显，只有发生明显变化时，才会影响心肌的生理特性。肾上腺素可使心率加快、传导加快及心肌收缩力增强，乙酰胆碱则与肾上腺素的作用相反。 三、【实验仪器】 青蛙、常用手术器械、蛙板(或蜡盘)、蛙心夹、计算机采集系统、力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿(或小烧杯)、纱布、棉线、橡皮泥、任氏液。蛙心套管(斯氏套管或八木氏套管)、套管夹、0．65％NaCl、5％NaCI、2％CaCl2、1％KCl、1：5 000肾上腺素、1：10 000乙酰肌碱、300U／mL肝素。 四、【方法与步骤】 1、斯氏蛙心插管法 （1）一只青蛙，双毁髓后背位置于蜡盘中， 按前面的方法暴露心脏。仔细识别心脏周围的大 血管(见右图)。在左主动脉下方穿一线，于动脉 圆锥处结扎(动物个体小时，结扎位置可靠上些)。 再从左右两主动脉下方穿一线，并打一活结备 用。左手提起主动脉上的结扎线，右手用眼科剪在结扎线下方、沿向心方向将动脉上壁剪一
生理学-呼吸运动调节实验报告范文
实验且的： 学习呼吸运动的记录方法，观察缺氧、二氧化碳和血中酸性物质增多对呼吸运动的影响。 实验原理： 肺的通气是由呼吸肌的节律性收缩来完成的，而呼吸运动是由于呼吸中枢不断地发放节律性冲动所致。呼吸中枢的紧张性活动，随着机体代谢需要，受许多因素影响。 本实验是向家兔气管插管，使呼出气的一部分经换能器连于记录仪记录呼吸运动，切断迷走神经和施给各种因素，观察呼吸曲线的变化。 实验对象：兔 实验器材和药品：哺乳类动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、5 ml注射器一只、50 cm长的橡皮管一条、球胆二只、机械—电换能器及生理记录仪、刺激器。20％氨基甲酸乙酯溶液、3％乳酸溶液、CO2气体、钠石灰、生理盐水、纱布及线等。 实验步骤和观察项目 一、由兔耳缘静脉缓慢注入20％氨基甲酯乙酯(1g／kg)，待动物麻醉后，仰卧固定于手术台上。沿颈部正中切开皮肤，分离气管并插入气管插管。分离出颈部两侧迷走神经，穿线备用。 二、记录呼吸运动插入的气管插管的主管接机械—电换能器，输入到生理记录仪，侧管暴露于大气。通过改变侧管的口径，使主管的输入信号适宜。
三、观察项目 (一)正常呼吸曲线 (二)增加吸入气中的CO2浓度：将装有CO2的球胆通过一细塑料或玻璃管插入气管插管的侧管，松开球胆的夹子，使部分CO2随吸气进入气管。气体流速不宜过急，以免明显影响呼吸运动。此时观察高浓度CO2对呼吸运动的影响。去掉球胆，观察呼吸恢复正常的过程。 (三)缺氧：将一空球胆吸进少量空气，中间经一钠石灰瓶连至气管插管的侧管，让动物呼吸球胆内的少量空气。观察此时呼吸运动有何变化去掉上述条件，观察呼吸恢复正常的过程。 (四)增大无效腔：将50 cm长的橡皮管连接于气管插管的侧管上，观察此时呼吸运动的变化。变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸恢复过程。 (五)血液中酸性物质增多时的效应：用5ml注射器，由耳缘静脉较快地注入3％乳酸2 ml，观察此时呼吸运动的变化及恢复过程。 (六)迷走神经在呼吸运动中的作用：先切断一侧迷走神经，观察呼吸运动有何变化。再切断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。在此基础上，观察对一侧迷走神经向中端低频，较弱的电刺激所至的呼吸运动的变化。 注意事项 一、手术过程中，应避免伤及主要血管(如：颈总动脉、颈外静脉等)，以防出血。
生理学实验报告的写作完整篇.doc
生理学实验报告的写作 写实验报告是对所做实验的再理解再创造的工作，是检查学生知识掌握和衡量能力的重要尺度之一，是今后撰写科学的初始演练。 (一)一般要求 使用学校统一印制的报告纸。填全各栏目，并标明学号或组号，“日期”一栏填做实验日期，写报告日期可标于文末。“指导教师”一栏不写，系留阅报告人签名用。报告要求格式标准、卷面整洁、图表准确、字迹端正、简明精练，按时上交。写报告不得使用圆珠笔，绘图宜用铅笔。注意文字规范，语句通顺，不用自造的不规范的简化字、代号。 (二)基本格式与写法 生理实验有的侧重于操作方法(如神经-肌肉标本制备)，有的侧重于现象观察(胃肠运动的直接观察)，有的侧重于结果及分析(影响尿生成的因素)，多数则兼而有之。应根据实验类型，选用合适的报告格式及详略安排各栏目。 实验报告大体上有两种格式：一种是一般实验报告式，另一种是仿学术式，其对应关系如下表。一般认为操作类宜选用前者，而侧重结果的实验后者更适用。 表4实验报告的基本格式 一般实验报告式仿学术式 题目(内容)题目 目的原理引言(导言) 实验对象与用品材料与方法
方法步骤 结果与分析结果与分析 讨论讨论与结论(语) (结论或结语) 注意事项原始记录附录(含原始记录，公式 生理学实验报告的写作 写实验报告是对所做实验的再理解再创造的工作，是检查学生知识掌握和衡量能力的重要尺度之一，是今后撰写科学的初始演练。 (一)一般要求 使用学校统一印制的报告纸。填全各栏目，并标明学号或组号，“日期”一栏填做实验日期，写报告日期可标于文末。“指导教师”一栏不写，系留阅报告人签名用。报告要求格式标准、卷面整洁、图表准确、字迹端正、简明精练，按时上交。写报告不得使用圆珠笔，绘图宜用铅笔。注意文字规范，语句通顺，不用自造的不规范的简化字、代号。 (二)基本格式与写法 生理实验有的侧重于操作方法(如神经-肌肉标本制备)，有的侧重于现象观察(胃肠运动的直接观察)，有的侧重于结果及分析(影响尿生成的因素)，多数则兼而有之。应根据实验类型，选用合适的报告格式及详略安排各栏目。
2019生理学实验报告的写作
2017生理学实验报告的写作 今天小编为大家收集资料整理回来了关于实验报告的范文，希望能够为大家带来帮助，希望大家会喜欢。同时也希望给你们带来一些参考的作用，如果喜欢就请继续关注我们当热网()的后续更新吧! 写实验报告是对所做实验的再理解再创造的工作，是检查学生知识掌握和衡量能力的重要尺度之一，是今后撰写科学论文的初始演练。 (一)一般要求 使用学校统一印制的报告纸。填全各栏目，并标明学号或组号，“日期”一栏填做实验日期，写报告日期可标于文末。“指导教师”一栏不写，系留阅报告
人签名用。报告要求格式标准、卷面整洁、图表准确、字迹端正、简明精练，按时上交。写报告不得使用圆珠笔，绘图宜用铅笔。注意文字规范，语句通顺，不用自造的不规范的简化字、代号。 (二)基本格式与写法 生理实验有的侧重于操作方法(如神经-肌肉标本制备)，有的侧重于现象观察(胃肠运动的直接观察)，有的侧重于结果及分析(影响尿生成的因素)，多数则兼而有之。应根据实验类型，选用合适的报告格式及详略安排各栏目。 实验报告大体上有两种格式：一种是一般实验报告式，另一种是仿学术论文式，其对应关系如下表。一般认为操作类宜选用前者，而侧重结果的实验后者更适用。 表4 实验报告的基本格式 一般实验报告式仿学术论文式 题目(内容) 题目 目的原理引言(导言) 实验对象与用品材料与方法
方法步骤 结果与分析结果与分析 讨论讨论与结论(语) (结论或结语) 注意事项原始记录附录(含原始记录，公式 实验分工体会与建议推导，参考文献，致谢等) (三)注意事项 写报告应以事实为根据，尽量用自己的话表述，忌抄书，不许修改、编造数据。实验方法与步骤可视重要否而详略，但报告应独立成章，不可用“见书第××页”字样而省略。有的实验报告中，结果、分析甚至实验项目可以列表表达。“讨论”是一篇报告的核心，应紧扣结果联系相关理论进行，忌就事论事或离题万里;结果也不可轻易推断或引申。“结果与分析”一栏可在实验小组内讨论，必要时也可以参考其他组数据(需注明)，但报告必须按要求独立完成，禁止互相抄袭。 当热网当热网小编推荐：
动物生理学实验指导实验报告
动物生理学实验指导实验报告
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动物生理学实验指导教案 动物生理学研究性实验的程序与基本要求 《动物生理学》不仅是一门理论性很强的基础性学科,而且是实验性很强的学科,它的许多理论都来自科学实验结果。因此,在学生经过了一段时间的《动物生理学》理论的学习和一定的实验基本技术操作训练及经典性实验实践之后,进一步进行有关的《动物生理学》研究性实验的基本训练是非常必要的。通过实验设计、探索性实验过程，能使学生充分认识实验在科学理论产生和发展中的作用;培养学生的创新精神及观察和发现问题的能力；解决实际问题和分析、综合实验结果的能力;通过撰写研究性论文使学生学会用逻辑性语言表达研究结果的能力;为今后独立进行科学研究打下良好的基础。 实验一实验技术与实验仪器 一、动物生理学实验课程的教学目的 本课程旨在通过实验教学训练学生基本操作技能,培养其动手能力，并使学生通过该课程的学习与理论知识融会贯通；培养学生实事求是、严谨的科学作风和严密的科学逻辑思维方法,以及观察、分析、解决问题的综合能力。同时,通过学习实验课程中的新技术、新方法,使学生了解和掌握机能学科实验方法的更新和发展方向，启发学生在机能学科实验研究中的创新性思维。为培养学生的科学研究思维和科学研究能力奠定良好基础。 二、学习动物生理学实验课程的要求 1．做好实验前理论与操作准备 (1)熟悉相关理论知识，以明确相关实验的设计目的、实验原理以及正确的实验结果。 （２)预习实验教材中拟进行的实验内容，掌握实验目的与原理,了解实验步骤及操作要点、注意事项等。 2．以严谨的科学态度进行实验 (1)实验中严格按操作程序进行。实验小组各成员合理分工并密切合作,
生理学实验报告B5--3
生理学实验手册EXPERIMENT MANUAL FOR PHYSIOLOGY 专业及班级： 学号： 姓名： 组别： 天津医科大学临床医学院生理学实验室
实验一标本制备及BL-410生物机能实验系统的使用Experiment 1 Preparation of specimens and the use of BL-410 biological function of experimental system 同组人姓名（the name of the students in the same group） 。 日期（date）：年月日 【实验目的】 掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术，为此后有关的神经肌肉实验打下基础；熟悉BL-410生物机能实验系统的使用。 【实验原理】 蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与温血动物近似，而且其离体组织需要的生活条件非常简单，易于控制和掌握。因此在生理学实验中，坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象，经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。 【实验器材和药品】 蛙类手术器械一套（金属探针1根，粗剪刀、眼科剪刀各1把，圆头镊子、眼科镊子各1把，玻璃分针2根），蛙板和玻璃板各1块，培养皿，滴管，废物缸、锌铜弓，丝线，棉花；任氏液。 【实验对象】 蟾蜍或蛙。 【实验方法和步骤】 1．破坏脑和脊髓（常用的有三种方法）
(1) 俯式捣毁法：是最常用的方法。以左手持蟾蜍，将其腹面朝向手心，前肢夹在食指和中指之间固定，后肢夹在无名指和小指之间固定，并用拇指按压蟾蜍头部使之下俯30~40度角；然后右手持金属探针沿蟾蜍头部的中线下划，可触及一凹陷处即为枕骨大孔。将探针从枕骨大孔垂直刺入1~1.5mm，再向前刺入颅腔，左右搅动（可感觉到探针与颅骨壁的碰击），破坏脑组织；再将探针退回至进针处，但不拔出而是转向后方刺入椎管，破坏脊髓。 (2) 仰式捣毁法：将蟾蜍仰卧于蛙板上，拉开下颌，右手持探针在颅底两眼之间向前下刺入颅腔，用探针在颅腔内向四周捣毁脑组织，然后将探针退至粘膜下，针尖向后平行刺入椎管内以破坏脊髓。 (3) 横断脊柱后捣毁法：左手持蟾蜍，右手持粗剪刀，在两腋窝稍下横断脊柱，然后在脊柱呈白色的脊髓断面处，向上插入探针破坏脑，再向下插入探针破坏脊髓。 以上方法破坏脑和脊髓成功后，蟾蜍出现四肢（尤其是后肢）瘫软，并常有尿失禁现象。 Schematics for handing of toad 2．剪去躯干上部及内脏用粗剪刀在两侧腋部稍下（或在骶髂关节以上1.5 ~ 2cm处）剪断脊柱，用左手握住蟾蜍后肢，拇指按压骶骨，使蟾蜍头部及内脏自然下垂；避开腰骶神经丛后，右手用粗剪刀沿脊柱两侧剪开腹壁，在耻骨联合处将躯干上部及内脏剪掉，弃入废物缸内。