花青素提取工艺试验

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高粱原花青素提取工艺研究

高粱原花青素提取工艺研究
2 mg/mL 花青素溶液制备: 精确地称取(10 ±0 . 1 ) mg 花青素, 加入 5 mL 烧瓶, 用乙醇溶解。 1.3.3 总 原 花 青 素 含 量 测 定 吸 取 0.5 mL 样 品 制 备 液 , 加 入 到 15 mL 具 塞 玻 璃 试 管 , 减 压 低 温 挥 干 溶 剂, 再加 1 mL 乙醇溶解。加 9 mL 正丁醇- 盐酸(95∶5) 溶 液 , 再 加 入 0.2 mL 2%硫 酸 高 铁 铵 溶 液 , 混 合 均 匀。密封试管, 在(95±0.2) ℃水浴加热 40 min, 在 10 min 内冷却到室温。在 550 nm 比色测定。 1.3.4 标准曲线制定 按表 1 系列稀释 2 mg/mL 花青 素溶液, 比色测定, 制做标准曲线。
MENG Xian- jun1, HUANG Zhao- hui1, LU Ping2, QIN Pei- you2, REN Gui- xing2*
(1.Food S cie nce Colle ge , S he nya ng Agriculture Unive rs ity, S he nya ng 110161; 2.Ins titute of Crop S cie nce , Chine s e Aca de my of Agricultura l S cie nce s , Be ijing 100081)
高粱[Sorghum bicolor (L) Moench]是含原花青素较 多 的 谷 类 作 物 。 原 花 青 素 (Procyanidins, PC)是 由 黄 烷- 3- 醇和黄烷- 3,4- 二醇衍生的一大类多酚物质, 广 泛存在于植物界。药理学研究表明, 原花青素具有抗 氧 化 、 清 除 自 由 基 、 抑 制 肿 瘤[1- 3]、 保 护 皮 肤[4- 6]、 改 善微循环[7- 9]、减肥[10]等很多功效, 成为当今天然产物 化学领域的热点研究之一。

“紫娟”茶花青素提取工艺研究

“紫娟”茶花青素提取工艺研究
14方法 .
全世 界 的人 找到 了抗 氧化抗 衰老 的最简单有 效 的办法 , 花青素的发现和应用使人类从 2 世纪 的抗生素 、维生素 0
时代 ,进入 到 2 世 纪的花青 素时代 ! 1
本研究以溶剂萃取法为手段 ,采用价廉 、无 毒 、选
用 乙醇 回流提取 “ 紫娟”茶花青素 ,回流提取最优
. 有 明显优 于云南大 叶群体 种绿 茶的降血压效果 。经云南 12试剂
省药物研究所用体重2 ~ . . 3 千克的家猫进行 降血压实验 , 5 5
无水 乙醇 9 %( 5 分析纯) 1 N乙酸 ( 、. 5 优级纯 G 、 R) 食
结果表 明,“ 紫娟 ” 烘青绿茶 降压 幅度为 3 . %,明显优 用酒 精 、蒸馏水 55 3
2 0 年 第 3期 22 1 1
试 险 研 完
素作 为主要 考察对象 :乙醇 的体积分数 ( 、回流时间 A)
正交试验设计 ,选用 L ( 4 93 正交表 ,每个因素 3 ) 个水平 ,
( 、回流温度 ( 、料液 比 ( 作为考察对象 ,进行 共 9次试 验 ,见表 1 B) C) D) 。
药等方 面有 着 巨大 的应用 潜力 。人 的寿命长短直 接取决 于人们抗 氧化抗 自由基能力 的强弱 ,而花青素 的发现为
R 20型旋转蒸 发仪 ( 士 B C I 司 ) 一0 瑞 U H公
C N 8 3 型冷却水器 B 1— 0 S Z9 H 一 5型循 环水式多用真空泵 ( 河南予华仪 器厂 ) 超高速离心机
表 1因素水平表
2 结 果 与 分 析
回流温度 次之 ,回流时间影 响最小 。从表 2“ 紫娟 ”茶 花
个试验设计 中 , 取茶 叶样品5 g 按表 1 o, 设计 的工艺进行 回流提取 、 过 青 素 回流提取正交试验结果可 以看 出,9 和试验 9 的结果差异不显著 ,但其他 7 个试 验结果 滤 ,滤液浓缩干燥制成干粉 ,花青 素检测方法按阳 法测 试 验 2 方

正交试验法优化苹果皮中原花青素的提取工艺研究

正交试验法优化苹果皮中原花青素的提取工艺研究
et co a f r yndn a t i cod gt ko e x atnrt o o aiis ss de acri 3 ) ot gnle . h sl o e a teo r fh r i e pc w u d n o h s e ts h d t f tr if ecn e x at nb e a r a to e :e ao cnet t n> od l udrt ( m ) a 0 n unigt t ci yt t t me dw r c s l h er o h w eb h h e t nl ocn ao sl i i ao L > h ri i q i /
ot gnlet ee d i 0 (/ ) o 0 a oo a det ci r10 mn t t 5 . T eet ci f r ooa t r:adn 1 % vv f % l hl n x at gf 2 iu sa 6 % h sw g 6 c r n o e h x at no r o
佳1 艺条件是 :乙醇浓 度 6 % ,料液 比 l: 0 (/ ),提取温度 6 ℃ ,提取时 间 10 i,原花青 素得率达 二 0 1 gmL 5 2rn a
到 28m/ . 2 ggf皮。
关键词 :苹果皮 ;原花青素 ;提取 ;正交试验
中图分类号 :T 2 5 1 S5 . 文献标识码 :A 文章编号 :10 2 1 (0 1 0 0 1 0 0 6— 5 3 2 1 )5— l2— 5
Ab t a t T e e t ci n tc n l g f p o y nd n rm h p l e iap w s o t z d B s d o i ge f co sr c : h xr t e h o o y o r c a i is f a o o t e a p e p r r a pi e . a e n sn l a t r c mi

葡萄籽中原花青素的提取工艺研究

葡萄籽中原花青素的提取工艺研究

葡萄籽中原花青素的提取工艺研究摘要:本文初步研究了葡萄籽中原花青素溶剂提取工艺,考察了溶剂种类、溶剂浓度、提取时间、提取温度、料液比等因素对原花青素提取量的影响,最终确立最佳提取条件:溶剂为乙醇(乙醇浓度为60%),提取时间为50min,提取温度为60℃,料液比为1:6。

关键词:葡萄籽;原花青素;溶剂提取中图分类号:ts2644文献标识码:a基金项目:吉林省教育厅“十一五”科学技术研究项目(项目编号:吉教科合字[2010]第517号)葡萄是日常生活中非常常见的水果,可以直接使用,但绝大部分作为酿酒原料,而酿酒后的葡萄籽多被作为工业废渣弃去,这不仅浪费资源而且污染环境。

研究发现,葡萄籽中富含原花青素。

花青素具有抗氧化、抗突变、抗癌细胞等多种生物活性。

原花青素是一种可供选择的、极好的保健品原料,此外还具有抗辐射、抗疲劳,改善记忆力等作用。

本文初步探索有关葡萄籽中原花青素的溶剂提取方法,研究了最佳溶剂提取条件,为下步分离提纯提供理论依据。

1材料与方法11材料巨丰葡萄籽;原花青素,无水乙醇、乙酸乙酯、丙酮、甲醇、三氯甲烷、水均为分析纯。

12设备食品粉碎机,北京环亚天元机械技术有限公司;722紫外可见分光光度计,上海悦丰仪器仪表有限公司;电子天平,上海卓精bsm —2100;恒温水浴锅,广州威德玛环境仪器有限公司;85-2数显恒温磁力搅拌器;紫花牌循环水真空泵;飞鸽牌系列离心机。

13试验方法131标准曲线的绘制分别取原花青素标准液100、200、300、400、5 00ml于10ml刻度试管中,加入无水乙醇定容至10ml,塞紧后充分摇匀,制得浓度分别为104、208、312、416、52 0ug/ml的标准系列溶液。

在500nm处以无水乙醇作空白调零扣除背景值,测定标准系列溶液吸光值a,并绘制原花青素浓度-吸光值标准曲线。

溶液中原花青素浓度在104~520ug/ml范围内,与吸光值a呈线性关系,其回归方程式为a=3612c-0032,相关系数r=09991。

湿法超微粉碎提取葡萄皮中花青素_黄晓庆

湿法超微粉碎提取葡萄皮中花青素_黄晓庆

湿法超微粉碎提取葡萄皮中花青素黄晓庆广州合诚实业有限公司(广州 510620)摘要为了提高效率及降低成本,采用了湿法超微粉碎辅助提取葡萄皮中的花青素,考察了料液比、提取时间、溶剂比例、磨齿间隙等对花青素提取率的影响,利用大孔树脂对所提取的花青素进行纯化,低温冷冻浓缩制备花青素纯品。

结果表明,适宜的提取条件为胶体磨磨齿间隙5 μm、乙醇体积分数60%、提取时间25 min、料液比1∶6。

大孔树脂ADS-8对花青素具有良好的纯化效果,经纯化及冷冻干燥后所得的花青素干粉纯度可达93.8%。

湿法超微粉碎辅助提取花青素具有效率高、时间短、易于操作等特点,具有良好的应用前景。

关键词花青素;葡萄皮;超微粉碎;提取The Extraction of Anthocyanin from Grape Peel by Wet Ultrafine GrindingTechnologyHuang Xiao-qingGuangzhou Honsea Industry Co., Ltd (Guangzhou 510620)Abstract To improve the efficiency and lower the cost of extraction of anthocyanin from grape peel, the wet ultrafi ne grinding technology was applied. The infl uences of ratio of grape peel and extraction solution, extraction time, ethanol density as well as the grain size on the extraction efficiency of anthocyanin were studied. The optimal extraction conditions were as follows: the gap of mill teeth was 10 μm, the ethanol concentration was 85%, the extraction time was 20 min and the ratio of grape peel and extraction solution was 1∶4. The macroporous resin (ADS-8) was efficient for purification of anthocyanin. The purity was 93.8% after the purification and freezing concentration. The extraction of anthocyanin from grape peel by wet ultrafi ne grinding technology was effi cient and easy to operate within limited time.Keywords anthocyanin; grape peel; ultrafi ne grinding; extraction花青素(anthocyanins)是花色素与糖以糖苷键结合而成的一类化合物,属于类黄酮化合物,具有很强的抗氧化性、改善肝脏代谢功能、降低血脂等诸多功能特性[1]。

紫薯中花青素的提取工艺研究

紫薯中花青素的提取工艺研究

093食品实验作为一类安全、无毒、水溶性类黄酮化合物,花青素具有较高的抗氧化性,对人体健康十分有利。

花青素广泛存在于各种果蔬中,其中紫薯中的花青素含量较高,因此加强对紫薯中花青素的提取研究十分重要。

本文以盐酸溶液作为提取溶剂,对紫薯中花青素进行提取工艺研究,旨在提升花青素的提取质量。

一、试验材料与方法1.试验材料与相关设备与试剂。

随机在超市采购当前进货的新鲜紫薯,分析纯则使用盐酸、乙醇与柠檬酸等。

使用由北京连华永兴科技发展公司生产的UV-1750紫外可见分光光度计,由上海高致精密仪器有限公司生产的HH-6数显恒温水浴锅,以及电子天平与搅拌机。

2.花青素提取方法。

将紫薯切片后使用搅拌机进行粉碎,每份试验紫薯控制在5.0克,并分别添加0.1%与0.2%两种浓度盐酸,以及含有0.2%盐酸的70%乙醇、6%柠檬酸,以上分析纯均添加100mL。

使用70℃温水浴,在浸提150分钟后过滤残渣,使用523纳米波长的紫外分光光度法测定花青素吸光度值,选择最佳提取溶剂。

依旧每份采用5.0克紫薯,加入100mL不同浓度盐酸,从0.05%到1.0%,设置6个档次,同样在70℃恒温水浴浸提150分钟后过滤残渣,使用523纳米波长的紫外分光光度法测定花青素吸光度值,选择最佳提取盐酸浓度。

提取时间也进行同样操作,但是要控制浸提时间从30到360分钟不等,确定最佳提取时间。

确定最佳提取次数操作也类似,但是要针对溶液过滤步骤进行多次提取,以紫薯花青素继续提取为结果,计算提取花青素所需次数。

二、结果分析进行试验后可以得知,在不同分析纯条件下的紫薯花青素提取量不同,以0.2%盐酸提取效率最高,含有0.2%盐酸的70%乙醇提取效率最低,因此在不同提取溶剂紫薯中花青素的提取工艺研究条件下获得的花青素提取效率也不同。

而在确定以盐酸溶液进行花青素提取效率最高后,针对不同盐酸浓度提取花青素量,可以发现盐酸浓度在0.05%-0.2%范围内,花青素提取量与盐酸浓度之间成正比例函数关系,并在盐酸浓度0.2%时获得最大提取量。

紫甘蓝花青素的提取工艺研究

紫甘蓝花青素的提取工艺研究

紫甘蓝花青素的提取工艺研究摘要天然色素作为食品添加剂,具有安全性高,色泽自然鲜艳等特点,而且有些天然色素相比合成色素对人体的多种疾病还具有预防、治疗等药理作用和保健功能。

天然色素从来就是我们日常饮食的一部分,大自然向我们提供了广泛用于现代食品工业的诱人色素,其中最为常见的是红木、花色苷、甜菜根、姜黄等等。

花青素则是一类在自然界广泛存在的水溶性天然色素不但可作为食用色素还具有多种保健和医药功能。

其中花青素的提取可以从紫色甘薯,紫色甘蓝等有色植物中进行提取,本实验着重对紫甘蓝中的花青素进行提取和研究。

本实验首先对花青素的传统水浴提取工艺进行研究,利用不同的提取方法,诸如提取液种类,提取液固比,提取时间和提取温度,最终选取最佳提取工艺。

而后将传统水浴提取工艺以及微波提取和超声提取等方法进行比对,最终选取花青素的最佳提取条件。

对提取研究后,利用 AB-8 树脂进行纯化,进行花青素稳定性问题的研究。

,关键词: 紫甘蓝,花青素,传统水浴提取,微波,超声,树脂,稳定性,纯化 : III 紫甘蓝花青素的提取工艺研究 Abstract Natural pigment as food additives has the high safety colour and lustre isnaturalbright-coloured and other characteristics and some natural pigments synthesiscompared to the humanbody of disease of pigment has prevention treatment andpharmacological effects and health care function. Natural pigment is that we neverpart of their daily food nature to provide us with the widely used in the modern foodindustry is inviting pigment one of the most common is annatto anthocyanins beetsturmeric and so on. It is a kind of anthocyanins in nature of the widespread water-soluble naturalpigment not only can be used as edible pigment also has a variety of health care andmedical function. Among them the extraction of anthocyanins from purple sweetpotato purple cabbage and other non-ferrous plant extraction this experiment focuseson the purple cabbage anthocyanins extraction and research. This experiment first anthocyanins traditional water bath extraction technologyusing different extraction methods such as extract types extract the liquid-solid ratioextraction time and extracting temperature eventually select the best extractiontechnology. Then will the traditional water bath extraction technology and microwaveextraction and the ultrasonic extraction methods such as comparison eventuallyselected the best extraction conditionsanthocyanins. For the extraction of the studyuse AB-8 resin to purify the stability problem of anthocyanins.Keywords: Purple cabbage anthocyanins traditional water bath extraction microwaveultrasound resin stability purification IV 紫甘蓝花青素的提取工艺研究目录第一章绪论................................................. ................................................... ...... 11.1 食品色素................................................. ................................................... ........ 11.2 花青素概述................................................. ................................................... .... 21.3 紫甘蓝花青素概述................................................. ........................................... 41.3.1 紫甘蓝花青素的提取................................................. ............................ 41.3.2 紫甘蓝花青素的纯化................................................. ............................ 41.3.3 紫甘蓝花青素的组分分析................................................. ..................... 41.3.4 紫甘蓝花青素的特性................................................. ........................... 41.3.5 紫甘蓝花青素的功能特性................................................. ..................... 51.4 紫甘蓝花青素的定量方法................................................. ............................... 61.5 研究目的和意义................................................. ............................................... 7第二章紫甘蓝花青素工艺提取参数................................................. .................. 92.1 实验药品及仪器................................................. ............................................... 92.1.1 实验药品................................................. ................................................... ....... 92.1.2 实验仪器.................................................................................................... ..... 102.2 不同因素对紫甘蓝花色素提取效果的影响.................................................. 102.2.1 提取液对紫甘蓝花色素提取效果的影响................................................. .......... 102.2.2 料液比对紫甘蓝花色素提取效果的影响................................................. ......... 112.2.3 提取温度对紫甘蓝花色素提取效果的影响................................................. ...... 122.2.4 提取时间对紫甘蓝花色素提取效果的影响................................................. ...... 132.3 结果与讨论................................................. ................................................... .. 142.4.1 正交实验设计................................................. ................................................. 142.4.2 正交实验结果与讨论................................................. ..................................... 152.4 超声辅助提取法..............................................................................................152.4.1 超声波................................................. ................................................... .......... 162.4.2 超声辅助提取实验................................................. ........................................... 162.5 微波辅助提取法................................................. ........................................... 162.5.1 微波................................................. ................................................... ............ 172.5.2 微波辅助提取实验................................................. ...............................17第三章紫甘蓝花色素的提取纯化和稳定性研究....................................... 183.1 实验药品及仪器................................................. (19)V 紫甘蓝花青素的提取工艺研究3.2 实验步骤及方法................................................. .............................................183.2.1 树脂预处理................................................. .................................................... 183.2.2 大孔树脂吸附率的计算................................................. ................................................ 183.2.3 树脂吸附和解吸动力学研究................................................. ........................................ 193.2.4 乙醇浓度对解吸的影响................................................. .................................... 203.2.5 紫甘蓝花色素提取的稳定性研究................................................. ...................... 203.3 实验结果与分析................................................. ............................................. 21第四章结论与展望................................................. ............................................ 224.1结论................................................. ................................................... ............ 224.2 展望................................................. ................................................... ............ 22参考文献................................................. ............................................23致谢................................................. . (24)声明................................................. . (25)VI 紫甘蓝花青素的提取工艺研究第一章绪论1.1 食品色素食品的色泽是食品质量和商品价值的重要指标之一,食品悦目的色泽和可口的风味可以增强食品的外观,诱发人的食欲,进而刺激消化液的分泌,以便于人体更好的消化吸收。

原花青素提取方法的研究进展

原花青素提取方法的研究进展

原花青素提取方法的研究进展【摘要】原花青素是一种具有重要生理活性的多酚类化合物。

本文综述了天然原花青素的提取方法,其中包括有机溶剂提取、微波提取、超声波提取、超临界CO2萃取以及酶法等,以期为开发利用原花青素提供依据。

【关键词】原花青素;提取方法;研究进展原花青素(简称PC)是植物界中广泛存在的一大类多酚类化合物。

植物化学家通常将从植物中分离得到的一切无色的、在无机酸存在和加热处理下能产生红色的花青素(Cyanidin)的一类多酚化合物统称为原花青素。

许多研究表明,原花青素是清除自由基很强的抗氧化剂,其抗氧化、清除自由基的能力是VE的50倍、VC的20倍,它能防治80多种因自由基引起的疾病,包括心脏病、关节炎等,还具有改善人体微循环功能。

目前,原花青素已广泛应用于食品、药品、化妆品等领域。

全世界对原花青素的研究越来越深入,其中对原花青素提取方法的研究是一大重点。

原花青素传统的提取方法是有机溶剂提取法,但这种方法存在着对有效成分损失大、周期长、工序多、提取率不高等缺点,因此近10年来,在植物有效成分的提取方面出现了许多新技术、新方法,如超临界CO2萃取技术、超声波提取技术、微波萃取技术以及酶解技术等。

现将原花青素提取方法综述如下。

1原花青素的分类及分布原花青素是一大类多酚化合物的总称,起初统称归于缩合鞣质或黄烷醇类。

最简单的原花青素是儿茶素、表儿茶素或儿茶素与表儿茶素形成的二聚体。

此外,还有三聚体、四聚体等直至十聚体。

按聚合度的大小,通常将二~四聚体称为低聚体(ProcyanidolicOligomers,简称OPC),将五聚体以上的称为高聚体(ProcyanidolicPolymers,简称PPC)。

OPC为水溶性物质(PPC水溶性较差)、极易吸收;OPC消除自由基的能力与分子结构、聚合度有关。

二聚体中,因两个单体的构象或键合位置的不同,可有多种异构体,易分离鉴定的8种结构形式分别命名为B1~B8,其中,B1~B4是由C4~C8键合,B5~B8是由C4~C6键合。

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花青素提取工艺试验
实验仪器材料:
仪器:打浆机、干燥箱、粉碎机、超声波震荡器、培养箱、低温超速离心机、旋转蒸发仪、真空干燥箱、水浴锅、pH试纸
试剂:80%乙醇、山芋粉、蔗糖、硝酸铵、磷酸二氢钾、硫酸镁、滤纸、石油醚、0.1%稀盐酸
材料:枸杞、黑曲霉
1.1称取枸杞加入去PH=2离子水中(按比例为1:120g/L),在60℃水浴中浸泡4h,分离样液和样品,(重复2次),样液待用1.2【脱脂处理】将1.1中的样品和样液与石油醚(30-60℃)按1:10g/L混合,浸泡1h后,于旋转蒸发仪中50℃加热回流2h,所得样品溶液,放在打浆机打碎
1.3加入微生物培养液中【固液1:5】(培养液配比: 山芋粉3. 7 5%、蔗糖1 5% 、硝酸铵0. 2%、磷酸二氢钾0. 1%和硫酸镁0. 025% ) , 120 ℃条件下灭菌20min,在超净工作台内接种。

黑曲霉与培养液比例为1∶1 000。

接种后放入培养箱中培养。

温度30℃,pH4.5,培养时间72h
1.4培养后,在培养液中加入40倍pH3.0的80%乙醇,在超声波水浴中50℃提取3h(过滤后重复1-2次)
1.5粗过滤后,低温离心40℃,4000r/min,10min,去沉淀,取离心液
1.6 50℃旋转蒸发仪真空浓缩,减压浓缩0.076Mpa
1.7 放入真空干燥箱干燥,得粗品
1.8上述浓缩液再次离心,加入0.1mol/LHcl溶液调pH=4-4.5,离心分离,再次浓缩烘干
精提1
2.1上述粗品,加入温水中溶解
2.2常温下,在微滤机下0.12MPa,进行微滤收集液体
2.3所得滤液再次放入超滤机中过滤,0.1MPa,膜流速1500L/h 2.4取0.5g活化湿AB- 8 树脂和20ml液体常温吸附24h,离心2.5滤液加入60%乙醇洗脱,1-3h左右,后60℃,减压真空88kpa 下蒸馏回收乙醇
2.6所得液体加入一定量石油醚精致萃取,35℃减压浓缩回收,2.7真空干燥称重
方案二
1.1称取样品和样液与石油醚(30-60℃)按1:10ml混合,浸泡1h后,于旋转蒸发仪中50℃加热回流2h,所得样品溶液,干燥滤渣用于色素提取
1.2以料液比为1:40的PH=3的80%乙醇在50℃下浸泡3后,在超声波为40kHZ下,100W,20min,过滤去沉淀,重复1-2次1.3粗过滤后,低温离心40℃,4000r/min,10min,去沉淀,取离心液
1.4 50℃旋转蒸发仪真空浓缩,减压浓缩0.076Mpa
1.5 放入真空干燥箱干燥,得粗品
1.6上述浓缩液再次离心,加入0.1mol/LHcl溶液调pH=4-4.5,离心分离,再次浓缩烘干
精品提取
1、称取粗品50g左右加入170ml的pH3.5-4.0的浓盐酸化的95%乙醇,在40-50℃中搅拌提取4h,抽滤
2、滤渣用100ml酸性乙醇在同样条件下进行第二次提取3h,抽滤(也可进行重复多次)
3、合并滤液,边搅拌边加入浓氨水,并调溶液ph为7.2-7.5,室温静置0.5h,使之完全沉淀,抽滤,在沉淀未干燥前,用适量冰醋酸使之分解成稀糊状,可微微加热,静置1h,抽滤
理化因素:
A:最大波长的确定:
取处理过的枸杞粉末溶于乙醇中浸泡一段时间后利用紫外分光光度计进行光谱扫描,测定最大吸收波长。

B:提取溶剂的确定:
称取1g枸杞粉末分别放入盛有蒸馏水、无水乙醇、80%乙醇、80%酸性乙醇pH=3、石油醚、乙醚、三氯甲烷、丙酮、乙酸乙酯的锥形瓶中各20ml,50℃浸泡3h后,过滤,定容50ml,取1ml 提取液用相应溶剂稀释至5倍,在最大波长下测定吸收波长
C:提取溶剂体积分数的确定:
取1g枸杞粉末,放入分别盛有50ml体积分数分别为30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%的酸性乙醇溶液的锥形瓶中,50℃浸
泡3h后,过滤,定容至50ml,取取1ml提取液用相应溶剂稀释至5倍,在最大波长下测定吸收波长
D:提取温度的选择:
取1g枸杞粉末,放入盛有50mlpH=3的80%酸性乙醇溶液法锥形瓶中,分别至于30、40、50、60、70、80、90水浴中浸提2h,过滤定容至50ml,取1ml提取液用相应溶剂稀释至5倍,在最大波长下测定吸收波长
E:提取时间的选择:
取1g枸杞粉末,放入盛有50mlpH=3的80%酸性乙醇溶液法锥形瓶中,50℃条件下浸提3h,过滤定容至50ml,取取1ml提取液用相应溶剂稀释至5倍,在最大波长下测定吸收波长
F:料液比的选择
取1g枸杞粉末,分别加入20、30、40、50、60、70、80mlpH=3的80%酸性乙醇溶液中混合,50℃条件下浸提3h,过滤定容至100ml,取取1ml提取液用相应溶剂稀释至5倍,在最大波长下测定吸收波长
G辐射功率的选择:
取1g枸杞粉末,按料液比为1:50与PH=3的80%酸性乙醇中混合,在50℃下,超声波频率为50kHZ,设置功率为30w、40w、50w、60w、70w、80w、90w、100w,浸提3h,过滤定容至100ml,取取1ml提取液用相应溶剂稀释至5倍,在最大波长下测定吸收波长H:pH值的选择
称取1g枸杞粉末,加入50ml的80%乙醇溶液中,分别将提取液的PH值调为2、3、4、5、6、7、8,在50℃条件下浸提3h,过滤,定容。

取取1ml提取液用相应PH值溶剂稀释至5倍,在最大波长下测定吸收波长
I:提取条件的正交实验
取上述各个单因素和在一起进行水平设计,重复三次,取平均值,选出最佳条件
J提取次数对色素浓度的影响
取10 g枸杞粉3份,加入100mLpH=3,80%酸性乙醇溶液,于50℃分别回流提取1, 2, 3次,每次60mino过滤,合并每组提取液并定容至一定体积,测定吸光度值
粗品或精品提出后.
色素用蒸馏水溶解适量色素,以紫外可见分光光度计在200nvr800nm范围内扫描测其吸光度,得色素的紫外吸收光谱最大吸收波长确定
A:溶解性测定
取水、甲醇、乙醇、乙二醇、丙酮、乙酸乙酷 .石油醚、四氯
化碳各lOml分别在室温下溶解0. Olg固体色素样品,观察溶解状祝,判断其溶解性。

B色素的颜色反应
分别取色素固体样品配成的0. 015%色素水溶液5m1,调其不同pH值,6h后,观察其颜色变化。

测定其吸收波长
C温度对色素的影响
取15个25 mL容量瓶,分成5组,每组3个平行样,在每个容量瓶中加入一定量的色素粗提液,用pH 3的柠檬酸一磷酸氢二钠缓冲溶液定容,分别取上述溶液20 mL放入带塞的玻璃试管中,置于25, 40, 60, 80, 100 0C恒温水浴锅中,每隔1h取样,测定吸光值,计算色素保存率,作为热稳定性分析的参数。

参照杨朝霞iHi的方法计算保
存率,公式如下:保存率(%)=A/Ao 100
式中:A为处理后吸光值;
Ao 为处理前吸光值
D不同pH值加热处理对紫甘薯花青素稳定性影响的测定性影响的测定
取调整好不同的pH值的色素溶液各20 mL于带塞的试管中,将试管置于100
℃恒温水浴锅中分别加热处理1h和2h,冷却后取部分溶液于试管中用数码相机拍摄记录下颜色的变化,并分别测定色素溶液的吸光值,并计算其保存率。

E光照对红色素的影响
取1g色素粉末配成1g/100ml的提取溶液,取1ml用酸性乙醇稀释10倍,在光照下放置6天,在最大波长处测定每天吸收光度E微波对色素稳定性的影响
取pH3.0的酸性乙醇稀释的色素溶液5OmL倒入100mL三角瓶中,分
别置于微波炉中加热不同时间,待冷却后,于最大波长处测定其吸光度。

F氧化剂和还原剂对色素稳定性的影响
量取一定量的色素溶液,分别加入一定体积不同浓度的H202, Na2S03溶液,取1ml用pH3.0的酸性乙醇稀释至1 OmL,摇匀后静止1h,每隔一定时间取样,在最大吸收波长处测定其吸光度变化。

G食品添加剂:蔗糖和葡萄糖、柠檬酸、对色素稳定性的影响量取一定量的色素溶液,分别加入一定体积的不同浓度的葡萄糖、蔗糖,取用pH3.0的酸性乙醇稀释至100mL.混匀后避光放置,每d测定其吸光度。

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H苯钾酸钠和抗坏血酸对色素稳定性的影响
量取一定量的色素溶液,分别加入一定体积不同浓度的苯甲酸钠、抗坏血酸,用pH3.0的缓冲液稀释至100mL,混匀后避光放置,每d测定其吸光度。

I金属离子对色素的影响
取1ml的色素提取溶液,分别加入9ml 1mg/ml的钠离子,钾离子,钙离子,铁离子,镁离子,铜离子,锌离子等金属离子溶液,静置避光,用酸性乙醇稀释,每d测定其吸光度。

J色素提取物特征颜色变化
采用特征颜色反应方法:三氯化铁显色反应、醋酸铅反应、盐酸-铁粉反应,判断该色素属于哪一类化合物
取0. 01%色素的乙醇溶液5m1,加入少许镁粉,振荡后,再加儿滴浓盐酸,观察其颜色变」。

同时,做一对照,即被检溶液不加镁粉}fu直接加浓盐酸,观
察其颜色变化。

取0. 015%色素水溶液5m1,逐滴加入新配制的饱和中性醋酸铅溶液,观察颜色变化
取0. 015%色素水溶液5m1,滴加1} FeCl溶液,振荡后观察其颜色变化
向色素水溶液中滴加饱和中性醋酸铅水溶液后,颜色发生明显变化,由紫色变成蓝色。

说明色素分子中含有酚轻基,能与铅盐生成有色络合物的缘故。

在样品的乙醇溶液中加入少许镁粉振荡,再滴加儿滴浓盐酸后,色素溶液显不红色,说明样品中含有黄酮类化合物。

在对照实验中,被检溶液不加镁粉而直接加浓盐酸时,溶液也显不红色,表明受检液中含有花色素类或某些噢弄类或查尔酮类。

当色素溶液遇到F e3十时,发现色素玫瑰红色消褪,颜色变为黄色。

三氯化铁为常用酚类显色剂,这说明该色素分子中含有酚轻基,能与铁盐生成络合物。

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