流式细胞仪工作原理与应用范围

流式细胞仪工作原理与应用范围

2008-11-01 10:30

流式细胞仪就是进行流式细胞分析的仪器，它集电子技术、计算机技术、激光技术、流体理论于一体，是一种非常先进的检测仪器，被誉为试验室的“CT”。

流式细胞术（Flow CytoMeter，FCM）是一种在功能水平上对单细胞或其他生物粒子进行定量分析和分选的检测手段，它可以高速分析上万个细胞，并能同时从一个细胞中测得多个参数，与传统的荧光镜检查相比，具有速度快、精度高、准确性好等优点，成为当代最先进的细胞定量分析技术。

工作原理

将待测细胞染色后制成单细胞悬液。用一定压力将待测样品压入流动室，不含细胞的磷酸缓冲液在高压下从鞘液管喷出，鞘液管入口方向与待测样品流成一定角度，这样，鞘液就能够包绕着样品高速流动，组成一个圆形的流束，待测细胞在鞘液的包被下单行排列，依次通过检测区域。

流式细胞仪通常以激光作为发光源。经过聚焦整形后的光束，垂直照射在样品流上，被荧光染色的细胞在激光束的照射下，产生散射光和激发荧光。这两种信号同时被前向光电二极管和90°方向的光电倍增管接收。光散射信号在前向小角度进行检测，这种信号基本上反映了细胞体积的大小；荧光信号的接受方向与激光束垂直，经过一系列双色性反射镜和带通滤光片的分离，形成多个不同波长的荧光信号。

这些荧光信号的强度代表了所测细胞膜表面抗原的强度或其核内物质的浓度，经光电倍增管接收后可转换为电信号，再通过模/数转换器，将连续的电信号转换为可被计算机识别的数字信号。计算机把所测量到的各种信号进行计算机处理，将分析结果显示在计算机屏幕上，液可以打印出来，还可以数据文件的形式存储在硬盘上以备日后的查询或进一步分析。

检测数据的显示视测量参数的不同由多种形式可供选择。单参数数据以直方图的形式表达，其X轴为测量强度，Y轴为细胞数目。一般来说，流式细胞仪坐标轴的分辨率有512或1024通道数，这视其模数转换器的分辨率而定。对于双参数或多参数数据，既可以单独显示每个参数的直方图，也可以选择二维的三点图、等高线图、灰度图或三维立体视图。

细胞的分选是通过分离含有单细胞的液滴而实现的。在流动室的喷口上配有一个超高频电晶体，充电后振动，使喷出的液流断裂为均匀的液滴，待测定细胞就分散在这些液滴之中。将这些液滴充以正负不同的电荷，当液滴流经带有几千伏特的偏转板时，在高压电场的作用下偏转，落入各自的收集容器中，不予充电的液滴落入中间的废液容器，从而实现细胞的分离。

应用范围

可用于白血病的分型、肿瘤细胞染色体的异倍性测定，以及免疫学研究，并已开

始用于细菌鉴定，病毒感染细胞的识别合爱滋病感染者T4、T8细胞的记数。

自70年代以来，随着流式细胞技术水平的不断提高，其应用范围也日益广泛。流式细胞术已普遍应用于免疫学、血液学、肿瘤学、细胞生物学、细胞遗传学、生物化学等临床医学和基础医学研究领域。

技术特点

流式细胞仪作为一种最先进的细胞定量分析检测仪器，设计上采用了许多独特的技术，其中涉及到液流系统、光路系统、信号测量和细胞分选等4个方面。

展望

流式细胞仪从细胞技术开始发展到今天，60年代至70年代是其飞速发展时期，激光技术、喷射技术以及计算机的应用使流式细胞仪在原理和结构上形成了固定的模式。

80年代则是流式细胞仪的商品化时期，这期间不断有新型号的仪器推出，在多参数检测技术上不断提高。

进入90年代，随着微电子技术特别是计算机技术的发展，计算能力不断提高，流式细胞仪的功能也越来越强大。在数据管理、数据分析方面有了长足进步。但是，在技术原理和设计方面并没有突破性的进展。人们的注意力开始转向流式细胞仪的应用，新的荧光探针、新的荧光染料、新的染色方法不断推出，使流式细胞技术在新的细胞参数分析方面日益发展。

从新推出的仪器看，流式细胞仪会在硬件上不断更新，采用更新的器件（如半导体激光、大规模集成电路），以实现小型化；用数字电路取代模拟电路，充分发挥微处理器的功能以实现简单化；在软件上提高数据自动分析能力，充分发挥图形界面的优点，使操作更加简便。

流式细胞术及其临床应用

作者：李培成姜维洁来源：本站发布时间：2007-8-22 15:31:51 点击数：1446

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Flowcytometry and Its Clinical Application

李培成姜维洁

上海中医药大学附属龙华医院

Pei－cheng Li, Wei－jie Jiang

Affiliated Long Hua Hospital of Shanghai Traditional Medical University 200032

ABSTRACT

Key words: Flowcytometry; Immunophenotyping; Leukemia; Activated platelets; Tumor; Apoptosis.

流式细胞术(flowcytometry FCM)是对单个细胞或其他生物微粒进行快速定量分析和分选的一门技术。在分析或分选过程中，包绕在流动液体中处理过的单个细胞或微粒通过聚焦的光源，产生电信号，这些信号代表光散射、荧光等参数，以此测定出细胞或微粒的物理和化学性质，并可根据这些性质分选出高纯度的细胞亚群，以对其进一步的培养或分析。包绕细胞的液流称为鞘液。所用仪器称为流式细胞仪（flowcytometer FCM）。流式细胞术综合了光学、电子学、流体力学、细胞化学、免疫学、激光技术和计算机科学等多门学科和技术，具有检测速度快、精确、测量指标多、采集数据量大、分析全面、方法灵活等特点。

一、流式细胞仪(flowcytometer FCM)

1．流式细胞仪的基本结构

流式细胞仪的结构一般可分四部分，见图1。

（1）流动系统

流动系统是流式细胞仪的心脏，因为细胞悬液在被检测之前必须首先形成一个很细的稳流，细胞在其内部排成单列通过测量区。细胞悬液和鞘液分别（是分别还是同时）进入流动室，鞘液的作用是使样品悬液中的粒子组成单一纵列方式通过测量区，保证每个细胞通过激光照射区的时间相等，从而得到准确的细胞荧光信息。

（2）激光系统

多采用氩离子激光器。使发射光在可见光谱范围内488nm激发。目前市场上大多数荧光色素适用于此波长。激光的单色性好，功率高，稳定。

（3）光学和电子系统

激光束射至经流体力学聚焦的个别细胞和粒子后，光散射在各个方向(360?)发射。有两个光散射参数需收集，前向角散射(FSC)主要用于检测细胞体积的大小。另一为侧向散射(SSC)用于检测细胞膜，胞质，核膜等细胞内部结构及胞质内颗粒。

荧光信号是由对细胞进行染色的特异性荧光染料受到激光激发后发射的。荧光波长与激光波长不同，而且强度较弱，因此要使用光学滤片滤除非荧光信号并使用灵敏的检测器。荧光测量时通常使用线性放大器（即放大器的输出与输入是线性关系），适用于较小范围内变化的信号，如前向角散射和DNA测量。但有时需要对数放大器（即输出与输入是对数关系）。如果原来输出为1，当输入增加到原来的10倍时，输出是2。在免疫学检测中常使用对数放大器，因为在免疫学的样品中，可能有的细胞未被染色而仅有自发荧光，为阴性群体；被染上色的细胞特异性荧光可能比自发荧光强数倍到数十倍，为阳性群体。使用对数放大器可以同时分辨出亮度差异大的多个细胞亚群，容易选定不同亚群间的分界点，有利于流式细胞仪的分析和分选。

荧光信号的补偿：当用一种激光束同时激发两种染料发射出两种不同波长的荧光时，两种荧光发射光谱有一定的重迭，可用电补偿减去不适合荧光通道测定的重迭信号。

（4）数据贮存和计算机控制系统

数据贮存采用列表排队(List Mode)方式。利用计算机用多种图形来表明各参数间的相互关系，以单参数直方图，双参数二维点图，等高图等方式显示。数据分析一般设定正确的分析范围，划分计算区域和计算结果。

（5）细胞分选系统

细胞分选可使被指定的细胞从细胞群体中分离出来。流式细胞仪所测定的任何参数都可以作为细胞分选依据，被选出来的细胞的均一性与所测参数有关。其工作原理是把液滴形成信号在压电晶体上使之产生机械振动（不太通顺），液柱断裂成一连串均匀的液滴，一部分液滴中包有细胞，如果其特性与被选定要进行分选的细胞特性相符，则带有特定的电荷。带有电荷的液滴向下落入偏转板的高压静电场时，偏转落入指定的收集器内，完成细胞分类收集的目的。

2．流式细胞仪的类型

流式细胞仪分为两大类，一类为临床分析型(又名台式机)，特点为仪器光路调节系统固定，自动化程度高，易学易掌握。如Becton Dickinson(简称BD)公司的FACSCalibur、Beckman-Coulter公司的EPICSXL、Cytomation公司的MOFLO、Partec公司的Pas、Aber 公司的Microcyte、Ortho公司Cytoron等；另一类为科研(分选)型，特点为可快速将所感兴趣的细胞分选出来，并且将单个或指定个数的细胞分选到特定的培养孔或板上，同时可选配多种波长类型的激光器，适用于更广泛的科学研究之用。如BD公司的FACS Vantage，Beckman Coulter公司的EPICSALTRA，Cytomation公司的MOFLOMLS及Partec公司的Pas-III等。最近BD公司推出了FACSAria,其优点为具备科研分选型标准而操作与临床分析型同样简便，自动化程度高。

3．流式细胞仪检测的质量控制

（1）样品与试剂

血液、骨髓、体液等必须当天采集，6 h之内进行免疫荧光染色；活化血小板检测应在采血后立即染色与固定。组织样品可采用机械法去聚集并过滤，最好用单细胞制备仪（medimachine）处理。试剂、缓冲液、溶血剂、固定剂等必须符合标准。

（2）对照设置

目的是避免各种因素可能造成的假阳性或假阴性反应。

①同型对照：与单克隆抗体（MoAb）相同的、未免疫小鼠标记荧光素的免疫球蛋白亚类作对照。主要考虑细胞的自发荧光、非特异性抗体结合等影响因素。

②阳性对照：已知阳性标本能否确定为阳性。达不到要求时不能进行临床试验。

③阴性对照：用已知不表达某种抗原的细胞作样品检测，应出现阴性。目的是避免实验的非特异性反应。

④正常对照：对一种新的MoAb，在使用前进行对照试验，可保证仪器在最佳条件下获取样品。

⑤质控品：

试剂厂方提供与待测样品成分相近的稳定的质控物，并提供检测项目的靶值和质控范围，作为某一试验项目的全程质量检测物，评估试验结果的可靠性。如BDMulti-Check Control 是淋巴细胞及其亚群分析的全血质控品。

（3）仪器的校准与性能检测

使用标准荧光微球，运行FACSComp软件，校准通过，表明仪器状况良好。

二、流式细胞仪的功能和临床应用

流式细胞仪最大的贡献在于促进了免疫学基础研究和临床诊断。目前流式细胞术已被广

泛用于细胞生物学、免疫学、肿瘤学、血液学、病理学、遗传学和临床检验等多学科领域的基础和临床研究。

1．流式细胞仪的功能

（1）细胞参量分析

包括细胞大小、形状、蛋白荧光、氧化还原状态，膜的结构、流动性、微粘度、膜电位，酶活性，钙离子含量，pH值，染色质结构，DNA合成，碱基比例等。

（2）细胞表型分析

从1982年正式以CD(clustor of differentiation) 来表达（示）白细胞分化抗原。己确定的CD序号从CDl一CD247，这些细胞表面分化抗原，可以将人体组织细胞分为T细胞、B 细胞、髓样细胞、血小板、NK细胞、粘附分子、内皮细胞，细胞因子受体／趋化性细胞因子受体、干细胞／祖细胞、碳水化合物／凝集素、非谱系组共13系。CD抗原在细胞表面的获得和丢失在一定程度上反映细胞分化程度和功能状态。研究CD的意义在于①理解CD 抗原分子本身的一些特性及其与免疫功能的关系；②认识和探讨CD抗原所表达细胞的功能及其在疾病发生中的作用。

（3）细胞分选

这是FCM的一项重要功能，目前FCM对细胞亚群的分选纯度可以达到99%，除了对特定的亚群加以分选外，还可以分出所需要的染色体加以分析甚至能结合PCR方法加以扩增，这多用于研究中。

2．流式细胞仪检测在临床的应用

流式细胞仪的功能决定了其在医学领域的重要地位，目前在临床上主要用于细胞表型分析、造血系肿瘤诊断和分型、移植前配型及与免疫有关疾病分析等。

（1）CD抗原与白细胞分析

①T细胞

CD3+（注意下面CD分子的格式应一致）：成熟T淋巴细胞，是鉴定T细胞的重要标志，判断细胞免疫状况。

CD4+：T辅助/诱导细胞亚群

CD8+：T抑制/细胞毒亚群

CD4+ /CD8+比值：是免疫状态标志的检测指标，正常CD4+ /CD8+比值为1.2∽2.9,在肿瘤、免疫缺陷病、病毒感染、自身免疫病、器官移植后都有诊断、预后和治疗的指导价值，其比例降低与病变程度有关。

CD8+ /CD28+ 与CD8+ /CD28—：前者为细胞毒T细胞（Tc），后者为抑制性T细胞（Ts）。

CD4+/CD25+ 与CD4+ /CD25—：前者为免疫调节性T细胞，后者为效应T细胞。

CD4+ /CD29+：辅助性诱导细胞，辅助B细胞产生抗体和诱导细胞介导的淋巴细胞溶解作用，自身免疫性疾病可见增多。

CD4+ /CD 45RA+ 与CD4+ /CD 45Ro+：前者为原初细胞（naive cell）主要功能是诱导Ts细胞活化和辅助其功能活性。SLE、MS患者外周血CD4+ /CD 45RA+细胞减少，后者为记忆细胞（memory cell）。

②B淋巴细胞：CD19+是总的B淋巴细胞特异抗原，判断体液免疫状况。CD23+为IgE 低亲和力受体，分布于B淋巴细胞、嗜酸粒细胞上，增多与变态反应性疾病、肾病综合症、白血病等有关。

③NK淋巴细胞：CD3—/CD（16+56）+ 细胞表型。

④单核/巨噬细胞标志：CD14+细胞

（2）CD 抗原与血小板分析

分析单个血小板或血小板亚群膜糖蛋白，是血小板膜糖蛋白检测分析方法学上的重大发

展，对先天性与获得性血小板膜糖蛋白异常所致疾病的诊断，尤其是评价血栓性疾病与血栓前状态发生与发展过程中血小板的活化程度及其诊断、治疗、预防等具有特别重要的意义。FCM分析血小板膜糖蛋白方法简便、快速、标本用量少、灵敏度高、特异性强、结果准确，为血小板的基础和临床研究提供了崭新的手段。

CD62p(P选择素)是一种糖蛋白，存在于血小板α颗粒以及内皮细胞中。CD62p在体内或体外刺激后，即转移至膜表面，巨核细胞也有表达。CD62p又称GMP—140或PADGEM 蛋白(血小板活化依赖α颗粒膜蛋白)，它在血小板与单核细胞及中性粒细胞相互作用中起关键作用。

CD63为溶酶体膜糖蛋白，在多种细胞的表面和胞浆内，尤其是在血小板内部都能检测到，血小板活化后即转移至膜表面。

测血小板相关免疫球蛋白（PAIg）包括抗IgG、IgM、IgA有助于诊断免疫性血小板减少症。

一些血小板的胞浆中含有核酸物质RNA，可被噻唑橙（Thiazole orange,TO）染色称网织血小板。网织血小板是刚从骨髓中释放出来的血小板，可用于血小板减少性疾病的鉴别诊断和疗效监测。

3．辅助白血病和淋巴瘤分型和诊断

FCM是血液病MICC分型法中免疫表型分析的重要手段。免疫分型可为临床指导治疗，判断预后，预测复发提供帮助。

（1）白血病系列分化抗原：

T淋巴细胞白血病：CD3、CD5、CD7、CD10

B淋巴细胞白血病：CDl9、CD20、CD21、CD22，CDl0

NK细胞白血病：CDl6、CD56、CD57

粒细胞白血病：CDl3、CD33、MPO（髓过氧化酶）

单核细胞白血病：CDl4、CDl5、CDl1b

红血病：血型糖蛋白A(glycophorinA)，CDl3

巨核细胞白血病：CD41，CD42、CD61

（2）白血病系列非特异性抗原：

CD34+、HLA-DR+、CD38-为干细胞、CD34+、HLA-DR+、CD38+为原始细胞，CD34-、HLA-DR-、CD38+为幼稚细胞。

白血病细胞系列确定后，可根据系列抗原表达特点选择单抗进一步分亚型。

4．HIV和获得性免疫缺陷综合征（AIDS）

HIV主要感染CD4+T细胞，CD4+受体是病毒进入的主要途径。正常血中CD4+T细胞约1000细胞/ul（400---1500细胞/ul）。<400—500细胞/ul表示病毒强烈影响免疫系统。<200细胞/ul即使没有症状可确定AIDS，有预后价值。HIV感染早期CD8+T细胞增多，发展为AIDS则下降。

5．DNA含量分析以及细胞分化周期分析

DNA含量检测根据细胞周期动力学概念，在一个周期内可分为4个时相，依次为G1期、S期、G2期和M期，见图2。利用DNA分析软件可以确定各时相细胞的比例。能够进行DNA含量分析的标本可以是PBL，正常、病变或肿瘤组织，针吸或活检组织，石蜡包埋组织，胸水、腹水，膀胱冲洗液和体外培养细胞。

DNA含量分析的目的在于确定某一组织或细胞群体的增殖状态，引入DNA指数(D1)即DNA倍体的概念可以用于区别肿瘤的良恶性，恶性肿瘤的增殖状态。

二倍体细胞的DI=1，在临床上二倍体细胞DI在0.9—1.0之间，根据DI可以确定细胞DNA倍体。

6．化疗药物用药指导，敏感药物筛选

药物作用处理后的细胞采用Calcein-AM（Florescein-methylene aminodiacetic acid 荧光素亚甲亚氨二醋酸）与PI染色。Calcein-AM 为非荧光乙酰甲氨基酯经活细胞非特异性酯酶水解可变为荧光结合物，而死细胞不能水解因而无荧光。死细胞可被PI染成红色，活细胞不被PI染色，两者区分明显，可用以筛选药物。

7．实体器官移植配型和排异监测

可判断受者的免疫状态、免疫抑制剂疗效和全身免疫抑制程度。移植前交叉配型检测类抗原的抗体(PRA)、血管内皮细胞抗原(VEA)抗体，可以提高移植成功率。

8．细胞凋亡(cell apoptosis)检测

细胞凋亡可清除体内有害的细胞群，维持内环境的稳定。细胞凋亡阐明一些疾病的发病机制，导致疾病新疗法的出现。FCM利用光散射和荧光染色能够通过检测细胞光散射改变、膜结构和转运功能改变、DNA含量变化和DNA断裂点标记，从多方面分析和鉴定凋亡。是目前能够同时区分凋亡与坏死的唯一手段。

碘化丙啶(P1)标记FCM分析时，在细胞周期分析图中表现为G0/G1期峰前的亚G1期(sub-G1)峰。

位于细胞膜脂质双层内侧的磷脂酰丝氨酸(Ps)，反转至外侧是凋亡早期膜结构的特异性改变。annexin-V是一种Ca2+依赖的磷脂结合蛋白，与PS具有高亲和力，以酶或荧光素标记的annexin-V为探针可鉴定凋亡，与PI结合经流式细胞仪(FCM)分析，是唯一可区分凋亡早、晚期（如何区分）与坏死的方法。见图3。

9．Th1与Th2细胞及细胞因子

辅助性T细胞根据其产生的细胞因子及功能的不同可分为Th1与Th2两大类。Th1细胞分泌IL-2、IFNγ、主要参与细胞免疫；Th2细胞分泌IL-4、IL-5、IL-6及IL-10，主要参与体液免疫。两者相互调节、相互平衡，其平衡失调与多种疾病有关。应用流式细胞仪可检测细胞内细胞因子。

近年来美国BD公司提供CBA（Cytometric bead array）,采用一系列微珠组合来捕获并结合流式细胞仪技术检测溶液中被检测物质的量。此法优点为同时可检测多项指标如人Th1/Th2 CBA可检测IL-2、IL-4、IL-6、IL-10、TNFα、IFNγ；人炎症性细胞因子CBA可同时检测IL-8、IL-1β、IL-6、IL-10、TNFα、和IL-12。

10．网织红细胞计数

传统技术用煌焦油蓝染料,染色涂片后,光镜下计数,方法费时且只计数1000个细胞,误差较大。使用噻唑橙(Thiazole Orange, TO)染料,可与核酸形成荧光-核酸复合物,流式细胞仪上检测50000个红细胞求得百分率与绝对数,有助于贫血的鉴别

11．造血干祖细胞检测

骨髓移植的适应症主要有白血病、先天性免疫缺陷病、再障等。骨髓移植实质是造血干细胞的移植。CD34+细胞常作为多能干细胞的标志。

骨髓移植前检测CD34+细胞是很重要的一个步骤。样品经抗CD34+荧光抗体染色，可识别和定量CD34+细胞。

12．糖皮质激素受体（glycocorticoid receptor,GCR）检测

测GCR常用细胞溶质放射配基受体（请确认）结合测定，它可定量，但需细胞量多、检测时间长。流式细胞仪可测淋巴细胞总GCR，此法虽半定量，但检测所需样品量少。对长期激素治疗或确定下丘脑-垂体-肾上腺皮质（HPA）轴功能紊乱，评估细胞内GCR水平有一定价值。

13．环氧合酶（Cyclooxygenase,COX）检测

环氧合酶（COX）是花生四烯酸合成前列腺素（PG）的限速酶。它催化产生的PG参

与机体多种生理和病理生理过程。COX有两种类型:COX-1和COX-2。COX-1为结构性的“看家基因”产物,在多数组织细胞中持续低浓度表达，参与维持机体正常的生理功能。COX-2为可诱导性的，炎症、细胞因子、生长因子等刺激可使其大量表达，参与和加重炎症反应，促进肿瘤细胞增殖、新生血管形成，促进黏附、抑制免疫与抑制细胞凋亡。应用流式细胞仪可监测人血单核细胞经LPS刺激后COX-2与COX-1的水平。对炎症、血栓、肿瘤等病的发病机制、疗效和预后判断均有一定价值。

近年来应用流式细胞术检测特异性CTL细胞、细胞信号传导等亦在迅速开展。

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癌症的生物疗法

生物治疗是继手术、放疗和化疗后发展的第四类癌症治疗方法，系利用和激发机体的免疫反应来对抗、抑制和杀灭癌细胞。与传统的治疗方法不同，生物治疗主要是调动人体的天然抗癌能力，恢复机体内环境的平衡，相当于中医的“扶正培本，调和阴阳”。免疫疗法和基因疗法均属于生物治疗，目前临床上应用得较多的是免疫疗法。

免疫系统是人体的防御体系，一方面清除细菌、病毒等外来异物，另一方面清除体内衰老的无功能细胞以及发生突变的细胞。一个人身上每天有1014个，即100万亿个细胞在复制，在复制中，约有万分之一到百万分之一的细胞会出现差错，也就是说，每天有100万到1亿个细胞可发生突变。有的突变细胞进一步变为癌细胞。但无关大局，人体免疫系统可及时识别这些细胞，并予以清除。参与此种清除功能的免疫细胞有T细胞、K细胞、NK细胞、巨噬细胞等。由上述细胞实施的免疫称为细胞免疫；另外还有B细胞，此种细胞产生抗体。针对肿瘤抗原的抗体，对肿瘤细胞也有一定作用。

目前用于癌症的免疫治疗主要包括：非特异性的免疫增强剂、输注各种淋巴因子、抗肿瘤抗体、特异性或非特异性继获性细胞免疫治疗，以及肿瘤免疫疫苗等。其中效果较好、有应用前景的有树突状细胞瘤苗和细胞因子诱导杀伤细胞。

树突状细胞是已知的体内功能最强的专职抗原提呈细胞，也是唯一能活化静息T细胞，诱导初级免疫应答的抗原提呈细胞。癌细胞能分泌一些因子，将其本身伪装起来，以致躲过T 细胞、NK细胞等免疫细胞的攻击。树突状细胞是一种“间谍”，它能把人体内癌细胞的信息收集起来，送给T细胞和NK细胞等免疫细胞，让这些细胞识别癌细胞，从而将癌细胞消灭。临床上应用这一原理，设计了树突状细胞肿瘤疫苗疗法，其方法是；抽取病人血液数十毫升，分离出单个核细胞，加特殊试剂培养，使其变成树突状细胞，再把病人的癌组织取出少许，把癌细胞粉碎，加入树突状细胞培养液中，让树突状细胞获得癌细胞的信息，形成疫苗。最后，将此种疫苗输入病人体内，可输入静脉或直接注入癌肿内。该疗法对黑素瘤、肾细胞癌、前列腺癌、非何杰金淋巴瘤、脑胶质瘤、肝细胞癌、结直肠癌、乳腺癌、鼻咽癌等较好效果。

细胞因子诱导杀伤细胞为一种对癌细胞具有特异性杀伤作用的免疫活性细胞，能直接杀灭癌细胞。制备此种细胞的方法与制备树突状细胞相似，取病人外周血液，分离单个核细胞，但加不同的试剂，培养7天后，其数量可扩增几百倍，活性也大为提高。最后回输给病人。每例每疗程输的细胞数需达5亿－15亿。

实验研究证明，细胞因子诱导杀伤细胞对癌细胞的抑制率为84.7%。我们应用此种细胞已治疗163例进展型癌肿病人，总有效率44.46%，有效者血清癌标志物下降；大多数患者食欲增进，全身状况改善，原有疼痛的病例疼痛缓解。

癌症生物疗法的概念和历史

目前所说的生物疗法或生物治疗是指“抗癌的生物疗法”，简称“生物疗法”。“生物疗法（biotherapy）亦称为“生物调节疗法(bioregul ator therapy)”至今仍无统一公认的定义。因此，目前所谓的“生物疗法”或“生物治疗”是指运用“抗癌机构”的某种或某些成员对“抗癌机构”进行反应调节而使其得以平衡、稳定的一种治疗方法。

癌症的生物疗法研究史可以追溯至17世纪晚期，如果将祖国医学的抗癌生物疗法计算在内，其研究时间可能更长，但具有充分科学根据的现代生物疗法只是近10多来才兴起的。

1. 第一代生物疗法：当今认为“Coley疗法”（1889年）可称得上抗癌第一代生物疗法。1893年，Coley应用杀死的化脓性链球菌及灵杆菌滤液治疗癌症病人，这种疗法便称为“Coley疗法”，所用的制剂称为“Coley 毒素”。1934年美国医学协会规定只有Coley毒素才能用于肿瘤的全身治疗，充分肯定了Coley毒素在癌症治疗中的应用价值，至今在美国仍有此种制剂出售。但Coley疗法存在注射Coley毒素后，发热、寒战愈厉害，疗效越好，加上当时这种商品制剂粗陋、不标准也不稳定。所以在化疗、放疗出现后，这种疗法就逐渐被竞争下去。

2. 第二代生物疗法是本世纪40年代后期逐渐兴起，用得较多、较广的主要是短小棒杆菌疗法、卡介苗（BCG）疗法、转移因子（TF）疗法和免疫核糖核酸（iRNA）疗法等。

（1）短小棒杆菌疗法：短小棒杆菌由于具有增强单核细胞吞噬细胞的吞噬活性及能抑制某些肿瘤细胞的生长作用后，自从50年代晚期至60年代初期相继陆续有人应用短小棒杆菌制剂来试治某些癌症。这些癌症大多都是转移性的晚期癌症，种类主要有转移性乳腺癌、肺鳞状上皮癌、肺燕麦细胞癌、晚期肺癌、色素瘤、肠胃肿瘤和淋巴瘤等。有一定的疗效，但不甚明显。

（2）BCG疗法：BCG是一与细胞免疫有关的非特异性免疫刺激剂。自从60年代Mathe 等用BCG治疗小儿急性白血病取得良好疗效后，引起学术界广泛的重视，研究不断地加深与增多。用该制剂治疗的癌症主要是色素瘤和白血病，其次亦有肺癌、乳腺癌、肠癌和膀胱癌等。总的结论是BCG在动物中的抗肿瘤作用较确切，但对人类肿瘤的治疗效果尚未得到期最后的确认。

（3）iRNA 疗法：60年代中期起应用iRNA 试治癌症。评价是一有可喜的苗头，经用iRNA 治疗的多数癌症患者，其免疫反应均有所增强。特别是原发性肝癌，甲胎蛋白定量下降或转阴。二是目前尚无可信的结论。

（4）TF 疗法：TF 选择性提供、恢复和扩大细胞介导的免疫反应。7 0年代以来，受到医学界的重视。大量资料表明，在用于治疗癌症方面及对某些转移性肿瘤如乳腺癌、色素瘤、鼻咽癌和肾上腺癌等均有一定的疗效。由于研究的深入，以及用大动物制备具有抗肿瘤特异性TF的条件亦成熟，目前认为在第二代生物疗法中，是最有希望的一种生物疗法。

3. 第三代生物疗法：我们将干扰素及在干扰素研究推动下和启迪下新发展和形成起来的抗癌新生物疗法称为“第三代生物疗法”，也即通常所称的“最新生物疗法”。这类“最新生物疗法”可概括为抗癌细胞疗法、抗癌细胞素疗法、抗癌基因疗法和抗癌抗体疗法等四大类。第三代生物疗剂具有以下主要特点：（1）生物活性功能多，如抗肿瘤、抗菌素病毒和免疫调节活性等；（2）作用谱广，在体外几乎对所有肿瘤细胞和病毒都有抑制效应；更重要的是，（3）对宿主机体的免疫结构和功能不仅没有严重的损害作用，且还有广泛的调节、增强作用。