管世鹤-血流感染及其实验诊断
导管相关血流感染预防控制措施
导管相关血流感染预防控 制措施 Final revision by standardization team on December 10, 2020.
XX县人民医院 导管相关血流感染预防控制措施留置血管内导管是救治危重患者、实施特殊用药和治疗的医疗操作技术。置管后的患者存在发生感染的危险。血管内导管相关血流感染的危险因素主要包括：导管留置的时间、置管部位及其细菌定植情况、无菌操作技术、置管技术、患者免疫功能和健康状态等因素。 一、置管时 1．严格执行无菌技术操作规程。置管时应当遵守最大限度的无菌屏障要求。置管部位应当铺大无菌单（巾）；置管人员应当戴帽子、口罩、无菌手套，穿无菌手术衣。 2．严格按照《医务人员手卫生规范》，认真洗手并戴无菌手套后，尽量避免接触穿刺点皮肤。置管过程中手套污染或破损应当立即更换。 3．置管使用的医疗器械、器具等医疗用品和各种敷料必须达到灭菌水平。 4．选择合适的静脉置管穿刺点，成人中心静脉置管时，应当首选锁骨下静脉，尽量避免使用颈静脉和股静脉。 5．采用卫生行政部门批准的皮肤消毒剂消毒穿刺部位皮肤，自穿刺点由内向外以同心圆方式消毒，消毒范围应当符合置管要求。消毒后皮肤穿刺点应当避免再次接触。皮肤消毒待干后，再进行置管操作。 6．患疖肿、湿疹等皮肤病或患感冒、流感等呼吸道疾病，以及携带或感染多重耐药菌的医务人员，在未治愈前不应当进行置管操作。 二、置管后 1．应当尽量使用无菌透明、透气性好的敷料覆盖穿刺点，对于高热、出汗、穿刺点出血、渗出的患者应当使用无菌纱布覆盖。
2．应当定期更换置管穿刺点覆盖的敷料。更换间隔时间为：无菌纱布为1次/2天，无菌透明敷料为1-2次/周，如果纱布或敷料出现潮湿、松动、可见污染时应当立即更换。 3．医务人员接触置管穿刺点或更换敷料时，应当严格执行手卫生规范。 4．保持导管连接端口的清洁，注射药物前，应当用75%酒精或含碘消毒剂进行消毒，待干后方可注射药物。如有血迹等污染时，应当立即更换。 5．告知置管患者在沐浴或擦身时，应当注意保护导管，不要把导管淋湿或浸入水中。 6．在输血、输入血制品、脂肪乳剂后的24小时内或者停止输液后，应当及时更换输液管路。外周及中心静脉置管后，应当用生理盐水或肝素盐水进行常规冲管，预防导管内血栓形成。 7．严格保证输注液体的无菌。 8．紧急状态下的置管，若不能保证有效的无菌原则，应当在48小时内尽快拔除导管，更换穿刺部位后重新进行置管，并作相应处理。 9．怀疑患者发生导管相关感染，或者患者出现静脉炎、导管故障时，应当及时拔除导管。必要时应当进行导管尖端的微生物培养。 10．医务人员应当每天对保留导管的必要性进行评估，不需要时应当尽早拔除导管。 11．导管不宜常规更换，特别是不应为预防感染而定期更换中心静脉导管和动脉导管。 控感办 2013年8月1日
BD BACTEC 9240全自动血液培养系统血流感染病原菌检测的影响因素分析
BD BACTEC 9240全自动血液培养系统血流感染病原菌检测的影响因素分析 发表时间：2016-06-08T15:46:59.253Z 来源：《中国医学人文》(学术版)2016年2月第3期作者：张虹霞[导读] 对照菌液18.23%最少，差异有统计学意义（P＜0.05）。结论：细菌的浓度、种类，标本的送检时间以及患者抗菌药物的服用会影响全自动血液培养系统对病原菌的检出时间，也会导致检测指标的正确反映，需要特别注意。张虹霞 甘肃省白银市第一人民医院检验科 730900 【摘要】目的：分析BD BACTEC 9240型号的全自动血液培养系统对血流感染病原菌检测的影响因素。方法：选取我院自2013年12月1日-2015年1月1日收诊的全身心感染，或者发热的患者115例，采取BD BACTEC 9240型号的全自动血液培养系统进行血流感染病原菌检测，分析对其检测结果的影响因素。结果：3种不同细菌浓度比较，差异无统计学意义（P＞0.05）。肺炎链球菌、金黄色葡萄球菌的送检时间结果与大肠杆菌比较，差异有统计学意义（P＜0.05）。大肠杆菌使用阿米卡星为25.43%最多，对照菌液为7.35%最少，金黄色葡萄球菌使用头孢唑林30.36%、万古霉素29.77%、庆大霉素28.77%最多，对照菌液18.23%最少，差异有统计学意义（P＜0.05）。结论：细菌的浓度、种类，标本的送检时间以及患者抗菌药物的服用会影响全自动血液培养系统对病原菌的检出时间，也会导致检测指标的正确反映，需要特别注意。 【关键词】全自动血液培养系统；血流感染病原菌检测；影响因素 BD BACTEC 9240型号的全自动血液培养系统可以有效的对血样标本进行检测，完成血流感染病原菌检测，为临床诊疗提供重要依据。但其检测结果关系到医师的诊断，因此检出时间以及准确性均十分重要，关系到患者能否在疾病早期得到有效的治疗[1]。因此进行实验室质量控制十分重要，而分析其检测影响因素是采取针对性质量控制措施的先决条件。本眼对BD BACTEC 9240型号的全自动血液培养系统对血流感染病原菌检测的影响因素进行分析，现报道如下。1资料与方法 1.1一般资料 我院自2013年12月1日-2015年1月1日收诊的全身心感染，或者发热的患者115例，血培养系统选择BD公司生产BACTEC 9240型号全自动血液培养系统，血培养瓶选择BACTEC PLUS Aerobic/F血培养瓶，BACTEC anaerobic lytic/F血培养瓶，保证血培养瓶均在保质期内。 1.2方法 菌株：ATCC 25923金黄色葡萄球菌，ATCC 25922 大肠杆菌，ATCC 49619 肺炎链球菌，菌液需要稀释，直至培养浓度1和10CFU/mL，采取平板菌落进行菌液浓度确定。清晨采集患者的血液，成人采集2-10mL，小儿采集1-5mL。培养瓶接种后，加入抗菌药物，同时将菌液加入培养瓶（不含抗菌药物）作为对照菌液。 1.3观察指标 观察3种不同细菌浓度与检出时间关系，送检时间与检测结果关系，抗菌药物与检测结果关系。 1.4统计学方法 数据采用专业SPSS 17.0软件进行统计学分析处理。计数资料用率（%）表示，计量资料以表示，组间t检验，计数资料采用χ2检验，P＜0.05差异有统计学意义。 2结果 2.1 3种不同细菌浓度与检出时间关系 3种不同细菌浓度与检出时间存在相关性，差异有统计学意义（P＞0.05）。细菌浓度越高，检出时间越短。见表1 表1 3种不同细菌浓度与检出时间关系 [%]
血凝实验实验报告
影响血液凝固的因素 （一）实验目的：通过本实验来了解血液凝固的基本过程及了解影响血液凝固的一些因素。 （二）实验对象：家兔 （三）实验步骤：（略） （四）实验结果： 1、观察纤维蛋白原在凝血过程中的作用：实验中可见到静置杯内血液发生凝固。搅拌杯内血液不凝固，但在毛刷上见到红色的血凝块，经水冲洗后毛刷上缠绕有白色丝状物。 2、观察影响血凝的一些理化因素：如下表9-1所示。 表9-3 影响血凝的一些理化因素实验条件 1.加少许棉花 2.用石蜡油均匀涂试管内壁 3.放置37℃水浴 4.放置冰水水浴 5.加肝素10个单位 6.加草酸钾2mg （表9-3文字说明：略） 3、观察内源性及外源性凝血过程：如下表9-2所示 表9-2 内源性和外源性凝血过程的观察 试剂 1、富血小板血浆 2、少血小板血浆 3、生理盐水 4、羊肺悬液 5、0.025mol/l cacl2 血液凝固时间 （表9-2文字说明：略） （五）讨论： 血液凝固是指血液由流动的液体状态变为不流动的冻胶状态血液凝固过程大致分为三个 主要阶段：①凝血酶原激活物形成；②凝血酶原激活成凝血酶，③纤维蛋白原转变为纤维蛋白。在凝血酶原激活物的形成过程中分有两种不同的途径：内源性凝血途径和外源性凝血途径。内源性凝血途径是由凝血因子?启动的，参和血凝的全部凝血因子都在血浆内。凝血因子?可被各种带负电荷的物质等所激活，如血管内膜暴露的胶原纤维、玻璃、陶器等。外源性凝血途径是由存在于血管外组织中的凝血因子ⅲ所启动的，其余参和的凝血因子也在血管内。凝 血因子ⅲ在脑、肺、胎盘组织含量很丰富。 不管是内源性凝血途径或外源性凝血途径，他们最后的是使血纤维蛋白的形成而使血液 发生凝固。在观察纤维蛋白原在凝血过程中作用的实验中，由于参和凝血的全部凝血因子都在血浆中，因此其凝血过程是属于内源性凝血。由于玻璃和毛刷表面都带有负电荷，后者可激活凝血因子?，启动内源性凝血过程。凝血到最后阶段时，在凝血酶的作用下，把纤维蛋白原水解成血纤维蛋白；形成的纤维蛋白不断地交叉成网状结构，把血液中的所有血细胞网凝血时间50’’ 8’15’’ 2’15’’ 6’45’’ 不凝不凝试管1 0.2 ml 0.2 ml 0.2 ml 2’15’’ 试管2 0.2 ml 0.2 ml 0.2 ml 3’45’’ 试管3 0.2 ml 0.2 ml 0.2 ml 45’’ 罗于其中，从而使血液发生凝固。静置杯中的血液，由于发生了上述的血液凝固过程， 所形成的纤维蛋白没有被破坏，所以杯中血液凝固。而搅拌过的杯内血液，虽也发生血液凝固过程，但所形成的纤维蛋白却不断缠绕到毛刷上，当杯内血液的纤维蛋白原全部水解掉后，形成的纤维蛋白也全部缠绕在毛刷上，这时血纤维只能网罗毛刷附近的一些血细胞，在毛刷上见
血液检查实验报告doc
血液检查实验报告 篇一：血型测定实验报告 血型测定实验报告 一、实验目的： 学习ABO型血的鉴定原理和方法。观察红细胞凝集现象，了解抗原抗体反应。 二、实验原理： 血型就是红细胞膜上特异抗原的类型。在ABO血型系统中，红细胞膜上抗原分A和B两种抗原，而血清抗体分抗A 和抗B两种抗体。A抗原加抗A抗体或B抗原加抗B抗体，则产生凝集现象。血型鉴定是将受试者的红细胞加入标准A 型血清（含有抗B抗体）与标准B型血清（含有抗A抗体）中，观察有无凝集现象，从而测知受试者红细胞膜上有无A 或/和B抗原。在ABO血型系统，根据红细胞膜上是否含A、B抗原而分为A、B、AB、O四型。（见表4-3-1-1）三消毒采血针；载玻片；消毒棉签；抗A、抗B血型定型试剂；75%乙醇；受检者血液四、实验步骤 （1）取双凹玻片一块，用干净纱布轻拭使之洁净，在玻片两端用腊笔标明A及B，并分别各滴入A及B标准血清一滴。 （2）细胞悬液制备从指尖或耳垂取血一滴，加入含1ml 生理盐水的小试管内，混匀，即得约5％红细胞悬液。采血
时应注意先用75％酒精消毒指尖或耳垂。 （3）用滴管吸取红细胞悬液，分别各滴一滴于玻片两端的血清上，注意勿使滴管与血清相接触。 （4）竹签两头分别混合，搅匀。 （5） 10～30min后观察结果。如有凝集反应可见到呈红色点状或小片状凝集块浮起。先用肉眼看有无凝集现象，肉眼不易分辨时，则在低倍显微镜下观察，如有凝集反应，可见红细胞聚集成团。 （6）判断血型根据被试者红细胞是否被A，B型标准血清所凝集，判断其血型。五、实验结果： 我们组本次实验中，载玻片1左边为抗B型定型试剂，呈淡红色，未发生凝聚；右边为抗A型定型试剂，血液在试剂中凝结，试剂较清亮。该受试者1血型为A。 载玻片2左右边的试剂内的血液皆不出现凝结现象，受试者2为O型血。 六、实验讨论： 1.实验中要分清牙签，不要用一牙签一端同时在抗A血清和抗B血清中搅拌，以免造成抗体试剂不纯。 2.实验中我们组发现15分钟后没有出现血凝现象，可用牙签轻轻搅拌一会儿，有些载玻片上就不现了血块，但有些经搅拌后仍不出现血凝现象，表示确实不含相应的抗原。篇二：血糖的测定实验报告
血流感染病原菌的分布及耐药性分析
血流感染病原菌的分布及耐药性分析 牛俊杰翟鹏勇 作者单位：晋城，山西省晋城煤业集团总医院检验科 [摘要] 目的分析血流感染病原菌的分布及耐药性，为临床医师选择抗菌药物提供参考。方法收集年月日年月日血培养标本，采用型全自动血培养分析仪进行培养，所有分离菌株采用系统进行鉴定及药敏实验。数据分析采用软件。结果份血培养标本共检出病原菌株，阳性率为。其中革兰阳性球菌株，占，革兰阴性杆菌株，占，真菌属株，占。革兰阳性菌不同菌种的耐药谱明显不同，耐甲氧西林金黄色葡萄球菌（, ）和耐甲氧西林凝固酶阴性葡萄球菌（, ）的检出率分别为和，未发现对万古霉素耐药的菌株；肠球菌属中亦未检出对万古霉素和替考拉宁耐药的菌株，其中屎肠球菌对所测试的抗菌药物的耐药性大多数高于粪肠球菌。大肠埃希菌和肺炎克雷伯菌中产超广谱β内酰胺酶（β, ）菌株分别占和；发现一株对亚胺培南耐药的肺炎克雷伯菌。铜绿假单胞菌对所测试抗菌药物的耐药率均低于；鲍曼不动杆菌对头孢哌酮舒巴坦和阿M卡星的耐药率分别为和，对其他抗菌药物的耐药率均大于。凝固酶阴性葡萄球菌（, ）既是血流感染病原菌，也是最常见的污染菌。结论临床医师应严格执行无菌操作，降低血培养污染率。治疗血流感染前，应积极寻找原发病灶和病原菌，做到合理使用抗菌药物，降低患者的死亡率。 [关键词] 血流感染；病原菌；耐药性；产菌株； , , ,. , , []. . , . . . , () , () , () , () . . , . , . , . . . () , . . . , , . () , . , . , , . [ ]; ; ; 当病原微生物通过各种途径进入血流，并通过血流造成全身播散，引起各种临床症状，称为血流感染。近些年，随着创伤性诊疗技术的大量开展、各类人工装置的使用以及临床对激素和抗菌药物的广泛应用，使得血流感染的发病率呈上升趋势。引起血流感染的病原菌种类繁多，耐药性也各不相同。血流感染病死率高，严重危害生命健康，因此及时有效地控制血流感染越来越受到临床重视。为协助临床合理选用抗菌药物，笔者对例血培养分离病原菌及其耐药性进行整理，用软件进行分析，现将结果报道如下。 资料与方法 标本来源年月日年月日住院患者血培养标本。 试剂培养基及细菌生化反应试剂全部购自威泰科生物有限公司，药敏纸片购自公司。
卫星血培养对诊断血流感染的意义
卫星血培养对诊断血流感染的意义 血流感染是一种严重的全身感染性疾病，有较高的发病率和病死率，严重危及人类健康。由血流感染导致的住院时间延长和各种相关治疗也极大增加了医疗费用和成本，造成卫生经济负担。据统计，美国每年有约75万人患血流感染，由败血症等相关的并发症所导致的医药费用达167亿美元。对败血症的治疗以往多集中在早期血液动力学复苏，开发新型联合治疗方法，以及使用更有效的抗生素等方面。研究表明早期诊断以及尽早使用合适的抗生素治疗是提高败血症生存率的关键因素之一，因此血流感染的早期诊断对于患者的预后极为重要。 1一、血培养检测速度的挑战 血培养是诊断血流感染的“金标准”。血培养检测为阳性时可以确诊血流感染，同时阳性的血标本可以进一步分离进行鉴定和药敏试验，从而指导临床正确使用抗生素。及时而适当的抗生素治疗对降低血流感染患者病死率以及减少医疗费用至关重要。避免过度使用广谱抗生素也可以减少细菌耐药性的发生和传播。 自20世纪80年代起，医院微生物实验室开始使用自动仪器替代传统手工方法进行血培养检测，极大减轻了工作量，提高了效率。同时自动血培养仪通过持续地荧光监测等技术显著缩短了检出时间，据统计，血培养中90％的阳性标本可在12 h内被检测，36h内可检测出99％的阳性标本。然而分离和鉴定药敏通常还需24～48 h。如何加快临床报告仍是微生物检测血流感染的巨大挑战之一。 2二、血培养送检流程的优化 在临床实践中，人们发现从采集到血培养标本到进入微生物实验室仪器的过程中通常会受到一系列因素的影响而有不同程度的延迟。而送检过程的中断在一定程度上抵消了自动化仪器的持续监测所带来的高效。为此，美国临床实验室标准协会规定血培养标本应在采集后的2 h以内送至微生物实验室进行孵育。英国微生物检测操作规范规定为4 h。我国临床微生物实验室血培养操作规范建议血培养在采集后尽快送至实验室进行培养，特殊情况下，延迟上机间隔不应超过12 h。然而在实际操作中发生延迟仍然比较普遍，一项调查表明在美国血培养样本平均运输时间约为10.4 h，远远超过了最长的建议时间。在我国，延迟2 h 以上的延迟送检比率可达56.6％。发生延迟的原因包括采集标本地点(通常为床
导管相关性血流感染预防控制措施
导管相关性血流感染预防控制措施 一、置管时 1. 深静脉置管时应遵守最大限度的无菌屏障要求，插管部位应铺大无菌单； 2. 操作人员应戴帽子、口罩。 3. 认真执行手消毒程序，戴无菌手套，插管过程中手套意外破损应立即更换； 4. 皮肤消毒程序：（1）75%酒精自穿刺点环形消毒皮肤，消毒面积直径15-20cm。 （2）使用吉尔碘从穿刺中心点环形消毒 2 遍，中间间隔30-60 秒。 5. 插管过程中严格遵循无菌操作技术；使用的医疗器械以及各种敷料必须达到灭菌水平，接触病人的麻醉用品应当一人一用一灭菌； 6. **** 应首选锁骨下静脉，尽量避免使用股静脉； 7. 患有疖肿、湿疹等皮肤病，患感冒等呼吸道疾病，感染或携带有MRSA 或其它耐 药菌的工作人员，在未治愈前不应进行插管操作。 二、插管后 1. 用无菌透明专用贴膜或无菌纱布敷料覆盖穿刺点；但多汗、渗血明显患者宜选无菌纱布。 2. 定期更换穿刺点覆盖的敷料，更换间隔时间：无菌纱布为2d,专用贴膜可至7d, 但敷料出现潮湿、松动、沾污时应立即更换； 3. 接触导管接口或更换敷料时,须进行严格的手卫生,并戴手套,但不能以手套代替 4. 保持导管连接端头清洁,输液或注射药物时,严格消毒,输液完毕,消毒后使用无菌瓶口贴保护接头,有血迹等污染应立即更换。 5. 病人洗澡或擦身时要注意对导管的保护,不要把导管浸入水中； 6. 输液管更换不宜过频,但在输血及输入血制品、脂肪乳剂后或停止输液时应及时更换； 7. 对无菌操作不严的紧急置管,应在48h 内更换导管,选择另一穿刺点； 8. 怀疑导管相关感染时,应考虑拔除导管,但不要为预防感染而定期更换导管； 9. 每天评价留置导管的必要性,尽早拔除导管。 三、培训与管理 1. 置管人员和导管维护人员应持续接受导管相关操作和感染预防相关知识的培训, 并熟练掌握相关操作技能,严格遵循无菌操作原则； 2. 开展导管相关血流感染目标性监测,定期公布CR-BSI 的发生率。 四、循证医学不推荐的预防措施 1. 不提倡常规对拔出的导管尖端进行细菌培养,除非怀疑有CR-BSI； 2. 不要在穿刺部位局部涂含抗菌药物的药膏； 3. 不要常规使用抗感染药物封管来预防CR-BSI ； 4. 不推荐通过全身用抗菌药物预防CR-BSI ； 院感办 2015-1-1
导管相关血流感染的预防与控制
导管相关血流感染的预防与控制 一、定义 导管相关血流感染（CRBSI）是指带有血管内导管或者拔除血管内导管48小时内的患者出现菌血症或真菌血症，并伴有发热（>38℃）、寒颤或低血压等感染表现，除血管导管外没有其他明确的感染源。 二、管理要求 1、各科室制定并落实预防与控制导管相关血流感染的工作规范和操作规程，明确相关人员职责。 2、加强对医务人员的培训和教育，熟练掌握关于血管内导管的正确置管、维护和导管相关血流感染预防与控制措施。 3、ICU等重点科室应当建立静脉置管专业护士队伍，提高对静脉置管患者的专业护理质量。 4、定期分析、评估患者发生导管相关血流感染的危险因素，实施预防和控制导管相关血流感染的工作措施。 5、ICU等重点科室应当按《医院感染监测规范》要求，开展导管相关血流感染的目标性监测，持续改进，有效降低感染率。 三、预防控制要点 1、置管时 （1）严格执行无菌技术操作规程。置管时应当遵守最大限度的无菌屏障要求。置管部位应当铺大无菌单（巾）；置管人员应当戴帽子、口罩、无菌手套，穿无菌手术衣。 （2）严格按照《医务人员手卫生规范》，认真洗手并戴无菌手套后，尽量避免接触穿刺点皮肤。置管过程中手套污染或破损应当立即更换。 （3）置管使用的医疗器械、器具等医疗用品和各种敷料必须达到灭菌水平。 （4）选择合适的静脉置管穿刺点，成人中心静脉置管时，应当首选锁骨下静脉，尽量避免使用颈静脉和股静脉。 （5）采用卫生行政部门批准的皮肤消毒剂消毒穿刺部位皮肤，自穿刺点由内向外以同心圆方式消毒，消毒范围应当符合置管要求。消毒后皮肤穿刺点应当避免再次接触。皮肤消毒待干后，再进行置管操作。 （6）患疖肿、湿疹等皮肤病或患感冒、流感等呼吸道疾病，以及携带或感染多重耐药菌的医务人员，在未治愈前不应当进行置管操作。 2、置管后 （1）应当尽量使用无菌透明、透气性好的敷料覆盖穿刺点，对于高热、出汗、穿刺点出血、渗出的患者应当使用无菌纱布覆盖。 （2）应当定期更换置管穿刺点覆盖的敷料。更换间隔时间为：无菌纱布为1次/2天，无菌透明敷料为1-2次/周，如果纱布或敷料出现潮湿、松动、可见污染时应当立即更换。 （3）医务人员接触置管穿刺点或更换敷料时，应当严格执行手卫生规范。 （4）保持导管连接端口的清洁，注射药物前，应当用75%酒精或含碘消毒剂进行消毒，待干后方可注射药物。如有血迹等污染时，应当立即更换。 （5）告知置管患者在沐浴或擦身时，应当注意保护导管，不要把导管淋湿或浸入水中。 （6）在输血、输入血制品、脂肪乳剂后的24小时内或者停止输液后，应当及时更换输液管路。外周及中心静脉置管后，应当用生理盐水或肝素盐水进行常规冲管，预防导管内血栓形成。 （7）严格保证输注液体的无菌。
血液凝固的影响因素实验报告
血液凝固的影响因素实验报告 篇一：影响血液凝固的因素实验报告书写 影响血液凝固的因素 （一）实验目的：通过本实验来了解血液凝固的基本过程及了解影响血液凝固的一些因素。 （二）实验对象：家兔 （三）实验步骤：（略） （四）实验结果： 1、观察纤维蛋白原在凝血过程中的作用：实验中可见到静置杯内血液发生凝固。搅拌杯内血液不凝固，但在毛刷上见到红色的血凝块，经水冲洗后毛刷上缠绕有白色丝状物。 2、观察影响血凝的一些理化因素：如下表9-1所示。 表9-3影响血凝的一些理化因素实验条件 1.加少许棉花 2. 用石蜡油均匀涂试管内壁 3.放置37℃水浴 4.放置冰水水浴 5.加肝素10个单位 6.加草酸钾2mg （表9-3文字说明：略） 3、观察内源性及外源性凝血过程：如下表9-2所示 表9-2内源性和外源性凝血过程的观察
试剂 1、富血小板血浆 2、少血小板血浆 3、生理盐水 4、羊肺悬液 5、0.025mol/L CaCl2 血液凝固时间 （表9-2文字说明：略） （五）讨论： 血液凝固是指血液由流动的液体状态变为不流动的冻胶状态血液凝固过程大致分为三个主要阶段：①凝血酶原激活物形成；②凝血酶原激活成凝血酶，③纤维蛋白原转变为纤维蛋白。在凝血酶原激活物的形成过程中分有两种不同的途径：内源性凝血途径和外源性凝血途径。内源性凝血途径是由凝血因子Ⅻ启动的，参与血凝的全部凝血因子都在血浆内。凝血因子Ⅻ可被各种带负电荷的物质等所激活，如血管内膜暴露的胶原纤维、玻璃、陶器等。外源性凝血途径是由存在于血管外组织中的凝血因子Ⅲ所启动的，其余参与的凝血因子也在血管内。凝血因子Ⅲ在脑、肺、胎盘组织含量很丰富。 不管是内源性凝血途径或外源性凝血途径，他们最后的是使血纤维蛋白的形成而使血液发生凝固。在观察纤维蛋白
导管相关性血流感染(CRBSI)监测规范及操作手册
导管相关性血流感染(CRBSI)监测规范及操作手册筛选指征： 在ICU 病房内携带中心静脉导管超过48小时，出现原因不明的发烧或低血压的患者，儿童患者出现低体温者。 处臵方法: 临床医护人员送检微生物学标本。 感控人员填写《ICU-CRBSI病人目标监测日常记录表》 送检方法： 临床医生首先判断导管是否仍有保留的必要性。按导管保留与否分别采用不同的送检方法。 1、保留情况：采取至少2套血培养，其中至少一套来自外周静脉，并做好标记，另外的一套则从导管中心或VAP隔膜无菌采获，两个来源的采血时间必须接近（不>5分钟），各自做好标记。 2、不保留情况：从独立的外周静脉无菌采集2套血培养。无菌状态下取出导管并剪下5cm导管尖端或近心端交付实验室进行Maki 半定量平板滚动培养或者定量培养（following Vortex或超声降解）。 采血方法： 1.消毒： ①采血者用速干乙醇消毒液洗手 ②75%的乙醇消毒培养瓶的橡胶塞，待干60秒。 ③用安尔碘（络合碘）消毒皮肤待干60秒钟才能进行穿刺。 2.两个部位采血时间接近（不>5分钟）。 3.每瓶采血10mL，尽量保证两套血培养采血达40mL，提高阳性检出率。 4.采血后，血培养瓶应尽快送至微生物实验室。采血后的血培养瓶室温放臵不能超过12小时。 实验室工作流程： ①血培养孵育时间5天。 ②第4天早晨进行早期阴性报告 ③报告内容：血培养第四天，阴性。 注：如无阳性，不再重复阴性报告 ④阳性标本进行早期涂片、镜检，早期阳性报告，转种，进一步鉴定、药敏试验，报告最终鉴定药敏结果。
诊断标准 1.保留导管者结果解释： 如果两套血培养阳性且为同种菌： （1）如缺乏其它感染证据，提示可能为CRBSI； （2）来自导管的血培养报阳时间比来自外周静脉的早120分钟：提示为CRBSI(报阳时间差异小于120分钟，但耐药谱一致，同时缺乏其它感染证据，也可能提示为CRBSI）； （3）来自导管血培养的细菌数量为至少5倍于外周静脉血培养，如果缺乏其它感染证据，提示可能为CRBSI（用于手工定量血培养系统） 如果仅是来自导管的血培养为阳性：不能确定为CRBSI，可能为定植菌或采集血标本时污染 如果仅是来自外周静脉的血培养为阳性：不能确定为CRBSI；但如为金黄色葡萄球菌，或念珠菌，在缺乏其它感染证据则提示可能为CRBSI 2.已拨除导管结果解释： 如果一套或多套血培养阳性，且导管末梢培养阳性，根据鉴定和药敏谱提示两种培养为同种菌：提示可能为CRBSI 如果一套或多套血培养阳性，而导管末梢培养阴性：如培养为金葡菌或念珠菌且缺乏其它感染的证据则提示可能为CRBSI，确认可能要求额外的血培养阳性结果且是同种菌 如果血培养为阴性而导管末梢培养为阳性：提示为导管定植菌，不是CRBSI
脓毒血症的实验室诊断-2013
脓毒症相关实验室检查
Surviving Sepsis Campaign guidelines for management of severe sepsis and septic shock 2012 ----指南解读
重庆医科大学第一附属院感染病科 教育部感染病重点学科 传染病寄生虫病研究所
黄文祥
常见感染病死亡率
? 鼠疫：８%； ? 霍乱：1%; ? 甲型H1N1流感：1.24% ? SARS：7～10%; ? 人猪链球菌病：18.6%； ? 脓毒症：30% ? 禽流感：50～70%（66%）; ? 埃博拉病毒出血热：70% ? 肝衰竭：﹥70%
提
? 什么是脓毒血症？
纲
? 脓毒血症诊断相关检查进展
? 脓毒血症治疗相关检查
一、脓毒症/败血症定义
Major Events in Sepsis Research in the 21st Century?
rhAPC, human genome
21st century
ven t dia ilato lys r is
Bl oo tx d 60 se6 ps is
ste roi d s
PC N su lf a
2001 2007
DN A
Ab IL-1 PRR TLR4 m TNF
19 1 1 2
91 4
Wo u car nd e Inn ate im m. An t LP ibod y S 19 92
1907
20th Century
1928 1947 1952 Hand washing
Ge the rm ory
1975
1981
19th Century
do m e pl sti a c an nts atio im an n a l d of s
1846
gu e pla
1860
186718821892
os co va pe cc ina tio n
Sc ie m ntif et ho ic 2n d d pl ag ue
1 st
AD 6000 BC
541
1269 1346
1680 1796
m
icr
19 98
2000
导管相关血流感染预防与控制试题(30题)
导管相关血流感染预防与控制试题（30题） 题型 一、单选题（10题） 二、多选题（10题） 三、判断题（10题） 一、单选题 1. 导管相关血流感染的定义（ B ） A带有血管内导管或者拔除血管内导管48h内的患者出现菌血症或真菌血症，并伴发热（﹥38.5℃）、寒战或者低血压等表现，除血管导管外没有其他明确的感染源 B带有血管内导管或者拔除血管内导管48h内的患者出现菌血症或真菌血症，并伴发热（﹥38℃）、寒战或者低血压等表现，除血管导管外没有其他明确的感染源 C带有血管内导管或者拔除血管内导管24h内的患者出现菌血症或真菌血症，并伴发热（﹥38℃）、寒战或者低血压等表现，除血管导管外没有其他明确的感染源 D带有血管内导管或者拔除血管内导管24h内的患者出现菌血症或真菌血症，并伴发热（﹥38.5℃）、寒战或者低血压等表现，除血管导管外没有其他明确的感染源 2. 为预防中心静脉导管引起的相关感染，哪项措施不正确（ C ） A置管部位铺大无菌单，严格无菌操作
B置管人员戴帽子、口罩、无菌手套、穿无菌手术衣 C成人中心静脉置管时应首选颈静脉 D置管过程中手套污染或破损应当立即更换 3. 紧急状态下置管，若不能保证有效的无菌原则，应当在（ C ）小时内尽早拔除导管。 A12 B24 C48 D36 4. 中心静脉导管置管后更换置管穿刺点敷料的时间为（ C ） A无菌纱布1—2次/周 B无菌纱布1次/天 C无菌透明敷料1—2次/周 D无菌纱布2次/天 5. 诊断导管相关血流感染的微生物学检查结果显示正确的是（ D ）A外周静脉血培养细菌或真菌阴性，导管段血培养细菌或真菌阳性 B 导管段和外周血培养出相不同种类的致病菌 C导管段和外周血培养出不同种类相同药敏结果的致病菌 D导管段和外周血培养出相同种类、相同药敏结果的致病菌 6. 可使用哪种消毒剂擦拭消毒血管导管接触的端口，以减少污染风险？（ C ） A 95%酒精 B 洁雪喷雾消毒剂 C 75%酒精 D 新洁尔灭 7. 下列哪种说法是正确的？（A） A 输液连接系统应使用无针连接 B 输注脂肪乳的输液器应每12h更换 C 每天更换输液连接装置可预防导管相关感染 D三通连接可减少
导管相关血流感染监测登记表
XXXX 医院 导管相关血流感染监测登记表 、基本资料 科室 _______ 姓名 ______________ 性别 ______ 年龄 ________ 岁 入院日期： ________ 年 _______ 月 _____ 日 出院日期： 插管日期： _______ 年 ____ 月 ______ 日 ______ 时 _____ 分 拔管日期： _______ 年 ____ 月 ______ 日 ______ 时 _____ 分 入院诊断： 、监测资料 置管原因： _________________________________ 插管部位： _____________________ 管 型: 抗菌药物使用种类、剂量、天数： 三、 医院感染资料 医院感染：是口 否口 感染日期： _______ 年_月 ________ 日 易感因素：1、糖尿病 2、抗生素 3 、免疫抑制剂 4 、营养不良 5 、肿瘤 6 、手术 7 、WBC 十数＜1.5X109/L 8 、其他（请注明）： _________________________________ 病原学检查： 是口 否口 送检日期 _______ 年 ______ 月 ______ 日 标本名称： __________________ 病原体： _____________________________________________________ 药敏结果： _________________________________________________________________________________ 四、 拔管指征评估 1、 是否每日评估拔管的必要性：是口 否口 2、 拔管指征评估表 住院号 ________ 床号 _____________ ______ 年 _______ 月 _____ 日 置管总天数： _______ 日 主管医生： 控制措施： _____________________________
血液实验实验报告汇总
血液实验实验报告 09 生物技术 摘要：血液在体内承担着物质运输、免疫等重要的生理功能。比较不同动物的血液组成和血细胞的差异，对了了解血液的功能以及不同动物体的特征有重要意义。制作血涂片用于观察红细胞、白细胞、血小板形态；使用血细胞计数板于显微镜下直接计数，计算分别得到红细胞、白细胞数目。 关键字：血液红细胞白细胞血细胞计数血涂片 第一章前言 血液在维持内环境稳定上起着重要作用，具有运输、缓冲、防御等功能。比较不同动物的血液组成和血细胞的差异，对了了解血液的功能以及不同动物体的特征有重要意义。 动物红细胞的形态、大小、数目与动物的进化和生态适应均有一定的关系，一般来说，动物越高等，红细胞的数目越多，而体积越小，同时血细胞也高度分化；白细胞体积（除鱼类）比红细胞大，但比重却比红细胞小。白细胞按其组成又分为粒细胞和无粒细胞。在不同生理状态下，白细胞数目波动较大。 通过观察不同脊椎动物的血涂片，并在镜下计数，即可初步观察到不同脊椎动物血细胞形态变化即数目变化。 第二章材料与方法 2.1 血涂片的制作与观察 2.1.1 材料
鲤鱼、牛蛙、家鸽、家兔、小白鼠血液样品，洁净载玻片，毛吸管，瑞氏染液，蜡笔 2.1.2方法 取末血样少量置于玻片的一端,左手 持载玻片,右手以边缘平滑的推片的一端 从血滴前方后移接触血滴，血滴即沿推片 散开，推片与载片夹角保持30-45度平稳 地向前移动，载片上保留下一薄层血膜。 待干后用蜡笔在血膜两侧划线，以防染液 溢出。然后将血膜平放在染色架上，加瑞 氏染液2-3滴，使覆盖整个血膜。固定 0.5-1.0分钟，滴加等量或稍多的新鲜蒸 馏水。与染料混匀染色5-10分钟。当液 面浮现一层金黄色金属状物质，表示染液 起了作用。用蒸馏水冲去染液,待自然干燥 后,即可置血涂片于显微镜下进行镜检。 红细胞 淡红色，无核的圆形细胞，因红细胞为双凹形，故边缘部分染色较深，中心较浅，直径7-8微米。 颗粒白细胞 嗜中性颗粒白细胞：体积略大于红细胞，细胞核被染成紫色分叶状，可分1-5叶。直径10-12微米。 嗜酸性颗粒白细胞：略大于嗜中性白细胞，细胞核染成紫色，通常为2叶，胞质充满嗜酸性大圆颗粒，被染成鲜红色。直径10-15微米。 嗜碱性颗粒白细胞：体积略小于嗜酸性白细胞，细胞质中有大小不等被染成紫色的颗粒，颗粒数目较嗜酸性白细胞的颗粒少，核1-2叶，染成淡蓝色。直径10-11微米。 淋巴细胞 胞质少，常为围绕细胞核的一薄层，其中无颗粒细胞核是肾形或马 蹄形，染成蓝紫色。 血小板 血小板体形甚小，形态不规则，染淡蓝色，内含紫色颗粒，无核，常聚集成团。
血流感染相关标本的采集
第一节血流感染相关标本的采集 血液作为无菌标本，血液培养对感染性疾病的诊断、治疗和预后有重要的临床意义。血培养检测可以为临床进行血流感染和其它部位感染的诊断提供有力依据。快速、准确的血培养检测结果，对临床的治疗和患者的预后有着至关重要的作用。 一、临床采样指征： 1.菌血症： 患者出现下列指征： ①发热（≥38℃）或低温（≤36℃）； ②寒战； ③白细胞计数增多（计数>10.0×109/ L，特别是有“核左移”时）或减少（计数<4.0×109/L）； ④呼吸频率大于20次/min或动脉血二氧化碳分压（PACO2）； ⑤心率大于90次/分钟； ⑥有皮肤黏膜出血； ⑦昏迷； ⑧多器官功能障碍； ⑨血压降低； ⑩炎症反应参数如C反应蛋白、降钙素原（PCT）1-3-β-D-葡聚糖升高。 只要具备其中之一，又不能排除细菌、真菌血流感染的，就应进行血培养。 尤其伴有以下情况之一时，应立刻进行血培养： （1）医院获得性肺炎。 （2）留置中心静脉导管、PICC等血管导管大于48小时。 （3）有免疫缺陷伴全身感染症状。 2.感染性心内膜炎： 凡原因未明的发热，持续在1周以上，伴有心脏杂音或心脏超声发现赘生物，或原有心脏基础疾病、人工心脏瓣膜植入患者，均应多次进行血培养检测。 3.导管相关血流感染： 患者带有血管内导管超过1天或者拔除导管未超过48小时，出现发热
（>38℃）、寒颤或低血压等全身感染表现，不能除外由血管内导管引起感染可能的，应多次进行血培养检测。 二、标本采集： 1.菌血症： 1）采血时间：①尽可能在患者寒战开始时，发热高峰前30-60分钟内采血。②尽可能在使用抗菌药物治疗前采集血培养标本；如患者已经使用抗菌药物治疗，应在下一次用药之前采血培养。 2）采血部位：通常为肘静脉，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管常伴有定植菌存在。 2）采血器具：采用商业化的真空血培养瓶，如果血培养瓶的储存温度为2-8℃，应先将血培养瓶在室温放置30分钟左右，平衡至室温再采血。同一部位采集两瓶血培养时不建议更换针头。 3）采血次数、血培养瓶选择：对于成人患者，应同时分别在两个部位采集血标本，每个部位应需氧和厌氧培养各一瓶（双侧四瓶）。对于儿童患者，应同时分别在两个部位采集血标本（双侧两瓶），分别注入儿童瓶，厌氧瓶一般不需要，除非怀疑患儿存在厌氧菌血流感染。 4）采血量：采血量是影响血培养检出阳性率的重要因素，采血量过少会明显降低血培养阳性率。成人每次每培养瓶应采血8-10ml注入成人瓶；婴幼儿根据孩子的体重确定采血总量，每培养瓶（儿童瓶）采血2-5ml。 5）皮肤、血培养瓶消毒：为减少皮肤、培养瓶口等对血培养造成的污染，在穿刺前，应对皮肤和培养瓶口进行消毒并充分干燥，以减少假阳性的发生机率。①培养瓶消毒：取掉瓶顶部保护性弹性盖帽，用70%酒精或碘伏消毒，待自然干燥后方可采血；②皮肤消毒：首先用70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30秒钟以上；然后用一根碘酊或碘伏棉签消毒皮肤（1%～2%碘酊30秒或10%碘伏消毒60秒），从穿刺点向外以1.5cm～2cm直径画圈进行消毒；最后用70%酒精脱碘。 6）血培养瓶接种：将采集的血液注入事先准备好的血培养瓶中，血培养瓶接种顺序：①用注射器采血时，先厌氧瓶再需氧瓶；②用真空采血系统采血时，先需氧瓶再厌氧瓶。避免采血管内空气注入厌氧血培养瓶。避免在静脉留置导管连接
导管相关血流感染预防与控制技术指南
导管相关血流感染预防与控制技术指南 (试行) 卫办医政发〔2010〕187号 留置血管内导管是救治危重患者、实施特殊用药和治疗的医疗操作技术。置管后的患者存在发生感染的危险。血管内导管相关血流感染的危险因素包括：导管留置的时间、置管部位及其细菌定植情况、无菌操作技术、患者免疫功能和健康状态等因素。 一、导管相关血流感染的定义 导管相关血流感染（Catheter Related Blood Stream Infection,简称CRBSI）是指带有血管内导管或拔除血管内导管48小时内的患者出现菌血症或真菌血症，并伴有发热（>38℃）、寒颤或低血压等感染表现，除血管导管外没有其他明显的感染源。实验室微生物学检查显示：外周静脉血培养细菌或真菌阳性；或者从导管段和外周血培养出相同种类、相同药敏结果的致病菌。 二、导管相关血流感染预防要点 （一）管理要求。 1.医疗机构应当健全规章制度，制定并落实预防与控制导管相关血流感染的工作规范和操作规程，明确相关部门和人员职责。 2.医务人员应当接受关于血管内导管的正确置管、维护和导管相关血流感染预防与控制措施的培训和教育，熟练掌握相关操作规程。 3.有条件的医疗机构应当建立深静脉置管专业护士队伍，提高对深静脉置管患者的专业护理质量。 4.医务人员应当评估患者发生导管相关血流感染的危险因素，实施预防和控制导管相关血流感染的工作措施。 5.医疗机构应当逐步开展导管相关血流感染的目标性监测，持续改进，有效降低感染率。 （二）感染预防要点。 1.置管时。 （1）严格执行无菌技术操作规程。置管时应遵守最大限度的无菌屏障要求。置管部位应铺大无菌单（巾）；置管人员应戴帽子、口罩、无菌手套，穿无菌手术衣。 （2）严格按照《医务人员手卫生规范》，认真洗手并戴无菌手套后，尽量避免接触穿刺点皮肤。置管过程中手套污染或破损应立即更换。 （3）置管使用的医疗器械、器具等医疗用品和各种敷料必须达到灭菌水平。 （4）选择合适的静脉置管穿刺点。成人中心静脉置管时，应首选锁骨下静脉，尽量避免使用颈静脉和股静脉。 （5）采用卫生行政部门批准的皮肤消毒剂消毒穿刺部位皮肤，自穿刺点由内向外以同心圆方式消毒，消毒范围应当符合置管要求。消毒后应当避免再次接触皮肤穿刺点，皮肤消毒待干后，再进行置管操作。 （6）患疖肿、湿疹等皮肤病或患感冒、流感等呼吸道疾病，以及携带或感染多重耐药菌的医务人员，在未治愈前不应当进行置管操作。 2.置管后。 （1）应当尽量使用无菌透明、透气性好的敷料覆盖穿刺点，对于高热、出汗、穿刺点出血、渗血的患者应当使用无菌纱布覆盖。 （2）应定期更换置管穿刺点覆盖的敷料。更换间隔时间为：无菌纱布为1次/2天，无菌透明敷料为1-2次/周，如果纱布或敷料出现潮湿、松动、可见污染时应立即更换。 （3）医务人员接触置管穿刺点或更换敷料时，应当严格执行《医务人员手卫生规范》。 （4）保持导管连接端口的清洁，注射药物前，应当用75%酒精或含碘消毒剂进行消毒，待干后方可注射药物。如有血迹等污染时，应当立即更换。 （5）告知置管患者在沐浴或擦身时，应当注意保护导管，不要把导管淋湿或浸入水中。 （6）在输血、输入血制品、脂肪乳剂后的24小时内或停止输液后，应当及时更换输液管路。外周及中心静脉置管后，应当用生理盐水或肝素盐水进行常规冲管，预防导管内血栓形成。 （7）严格保证输注液体的无菌。 （8）紧急状态下的置管，若不能保证有效的无菌原则，应当在48小时内尽快拔除导管，更换穿刺部位后重新进行置管，并作相应处理。 （9）怀疑患者发生导管相关感染，或者患者出现静脉炎、导管故障时，应当及时拔除导管。必
导管相关血流感染预防与控制技术指南(试行)
导管相关 血流感染预防与控制技术指南 (试行) 留置血管内导管是救治危重患者、实施特殊用药和治疗的医疗操作技术。置管后的患者存在发生感染的危险。血管内导管相关血流感染的危险因素主要包括：导管留置的时间、置管部位及其细菌定植情况、无菌操作技术、置管技术、患者免疫功能和健康状态等因素。 一、导管相关血流感染的定义 导管相关血流感染（Catheter Related Blood Stream Infection,简称CRBSI）是指带有血管内导管或者拔除血管内导管48小时内的患者出现菌血症或真菌血症，并伴有发热（>38℃）、寒颤或低血压等感染表现，除血管导管外没有其他明确的感染源。实验室微生物学检查显示：外周静脉血培养细菌或真菌阳性；或者从导管段和外周血培养出相同种类、相同药敏结果的致病菌。 二、导管相关血流感染预防要点 （一）管理要求。
1.医疗机构应当健全规章制度，制定并落实预防与控制导管相关血流感染的工作规范和操作规程，明确相关部门和人员职责。 2.医务人员应当接受关于血管内导管的正确置管、维护和导管相关血流感染预防与控制措施的培训和教育，熟练掌握相关操作规程。 3.有条件的医疗机构应当建立静脉置管专业护士队伍，提高对静脉置管患者的专业护理质量。 4.医务人员应当评估患者发生导管相关血流感染的危险因素，实施预防和控制导管相关血流感染的工作措施。 5.医疗机构应当逐步开展导管相关血流感染的目标性监测，持续改进，有效降低感染率。 （二）感染预防要点。 1.置管时。 （1）严格执行无菌技术操作规程。置管时应当遵守最大限度的无菌屏障要求。置管部位应当铺大无菌单（巾）；置管人员应当戴帽子、口罩、无菌手套，穿无菌手术衣。 （2）严格按照《医务人员手卫生规范》，认真洗手并戴无菌手套后，尽量避免接触穿刺点皮肤。置管过程中手套污染或破损应当立即更换。 （3）置管使用的医疗器械、器具等医疗用品和各种敷料必须达到灭菌水平。