血液样本的采集与保存

血液样本的采集与保存
血液样本的采集与保存

实用帖血液样本的采集与保存

在脊椎动物中,外周血一直被认为是侵害性较小、富有价值的检测样本。在许多生物样

本库中,由于血液样本的常规收集、处理及保存方法简便、成本低且富含可利用成分和生物分子,因此是进行多种项目分析的理想实验材料。然鹅,科研僧们历经千辛万苦最后发现获

得的血液样本RNA降解了。。。。额,这就很惆怅了。

所以呢,在样本采集、处理及储存过程中必须格外注意,从根本上确保获得高质量的

RNA

今天小编和大家一起来聊一聊在进行RNA实验时血液样本如何进行收集与保存。

血液的组成

首先来熟悉一下血液的组成。

人类的血液由血浆和血细胞组成。其中血浆约占血液的55%是水,糖,脂肪,蛋白质,

钾盐和钙盐等的混合物。血细胞约占血液的45%主要分为红细胞、白细胞和血小板。而哺

乳动物成熟的红细胞和血小板是无核的。

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血浆和血清

血浆是离开血管的全血经抗凝处理后,通过离心沉淀,所获得的不含细胞成分的液体, 其中含有纤维蛋白原,不含游离的

Ca 2+

,若向血浆中加入

,血浆会发生再凝固。

血清是离体的血液凝固之后,

经血凝块聚缩释出的液体, 其中已无纤维蛋白原,

游离的Ca 2+

,血清中少了很多的凝血因子但多了很多的凝血产物。

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其他有形咸分

但含有

血浆

有形成分

采血管的选择

采血管,大家都不陌生,去医院抽个血,一定会用到采血管,那么问题来鸟,这么多颜 色的采血管,有什么区别呢?下面小编来给大家介绍一下采血管的分类及不同颜色试管帽代 表的含义。

1. 蓝色头盖管(含有柠檬酸钠抗凝剂的采血管)

2. 黑色头盖管(含有0.109mol/L 柠檬酸钠)

3. 紫色头盖管(含有乙二胺四乙酸以及其盐的采血管

4. 绿色头盖管(肝素抗凝管)

5. 灰色头盖管(含有草酸钾/氟化钠)

6. 橘红色头盖管(促凝管)

7. 金黄色头盖管(含有惰性分离胶及促凝剂的采血管) 8.红色头盖管(无添加剂的干燥真空管)

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M M

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抗凝剂有很多种,原理包括螯合钙、抑制蛋白酶和抑制血小板活化等。虽然有这么多抗凝剂可供选择,但不建议使用肝素抗凝剂,因为肝素会同引物和酶竞争性结合核酸,影响后续的实验结果。所以对于血清样本,采血管推荐使用黄盖采血管(促凝管或促凝管带分离胶)■ 血浆样本,采血管推荐使用紫盖采血管(EDTA-K2或EDTA-K3)。

血液总RNA的提取

目前对血液总RNA的提取,前期处理主要分为红细胞裂解法及淋巴细胞分离法。两种方

法各有优缺点。

由于红细胞裂解法操作简单,能获得几乎所有白细胞的RNA因此这种方法被广泛使用。对于血液RNA的抽提,除了采用传统Trizol进行抽提之外,市面上也涌现出各式各样的试剂盒,如何在众多的试剂盒中挑选出最适合自己的一款,也需要考验眼力哦!

今天小编给大家推荐一款比较好用的血液RNA提取试剂---TRIzol? LS Reage nt,比

TRIzol还要好用哦!!!(并不是托,亲测,好用。。。。)

TRIzolS1 LS Reagent是苯酚和异硫亂酸弧的即用型

单和溶液.设计用于从人坷动物.植物.酵母、细菌和搞毒

来源的液体样品中分离总RNA- 在样品匀浆或裂解过程

中.HGzolE LS Regent —方面保持RNA的完整性?另一方

面破坏细想井裂解细胞组分。TRIzolLS试剂成分较

「RIzolift度更高,对于液体样本.TRIzolLS试剂抽提效

果优于TRkol试剂,是TRIzol的升级版*

如何进行取样?

全血样本取样方法

全血样本

为尽可能缩短取样时间,保证RNA质量,建议使用抗凝采血管(不建议使用肝素抗凝管)采集全血。采血后轻轻倒转采血管混合4~5次,使抗凝剂与血液混匀。将采集好的全血快速

转移至单独的冻存管或离心管,按照每250ul/管分装,加750ul(即三倍体积)的Trizol LS,

混匀。液氮速冻后,放-80 ° C冰箱保存。长期保存,可放入液氮。每个环节尽可能的快速完成,避免RNA 的降解。

每个环节尽可能的快速完成,避免RNA的降解。

还需要小伙伴们注意的是,保存全血所使用的冻存管或离心管,操作中使用的枪头盒离

心管等均需要RNase-free哒,装好样品后管口需要以封口膜封好,防止污染,分装好的样本做好标记,避免混淆。

血清样本取样方法

血清样本

采用快速分离法

建议使用橘黄色促凝采血管(可在5min内使采集的血液凝固,适用于急诊血清系列生

化试验)采集全血,采血后轻轻倒转采血管混合4~5次,使促凝剂与血液混匀。直立置于4 C

待血液完全凝固,1000g离心10分钟,分离血清。将采集的血清转移至单独的冻存管或离心管,按照每250卩1/管分装。液氮速冻后,放-80 C冰箱保存。长期保存,可放入液氮。

黄盖采血管(促凝管或促凝管带分离胶)

血液样本的采集与保存

实用帖|血液样本的采集与保存 在脊椎动物中,外周血一直被认为是侵害性较小、富有价值的检测样本。在许多生物样本库中,由于血液样本的常规收集、处理及保存方法简便、成本低且富含可利用成分和生物分子,因此是进行多种项目分析的理想实验材料。然鹅,科研僧们历经千辛万苦最后发现获得的血液样本RNA降解了。。。。额,这就很惆怅了。 所以呢,在样本采集、处理及储存过程中必须格外注意,从根本上确保获得高质量的RNA。 今天小编和大家一起来聊一聊在进行RNA实验时血液样本如何进行收集与保存。 血液的组成 首先来熟悉一下血液的组成。 人类的血液由血浆和血细胞组成。其中血浆约占血液的55%,是水,糖,脂肪,蛋白质,钾盐和钙盐等的混合物。血细胞约占血液的45%,主要分为红细胞、白细胞和血小板。而哺乳动物成熟的红细胞和血小板是无核的。

血浆和血清 血浆是离开血管的全血经抗凝处理后,通过离心沉淀,所获得的不含细胞成分的液体,其中含有纤维蛋白原,不含游离的Ca2+,若向血浆中加入Ca2+,血浆会发生再凝固。 血清是离体的血液凝固之后,经血凝块聚缩释出的液体,其中已无纤维蛋白原,但含有游离的Ca2+,血清中少了很多的凝血因子但多了很多的凝血产物。

采血管的选择 采血管,大家都不陌生,去医院抽个血,一定会用到采血管,那么问题来鸟,这么多颜色的采血管,有什么区别呢?下面小编来给大家介绍一下采血管的分类及不同颜色试管帽代表的含义。 1.蓝色头盖管(含有柠檬酸钠抗凝剂的采血管) 2.黑色头盖管(含有 0.109mol/L 柠檬酸钠) 3.紫色头盖管(含有乙二胺四乙酸以及其盐的采血管) 4.绿色头盖管(肝素抗凝管) 5.灰色头盖管(含有草酸钾/氟化钠) 6.橘红色头盖管(促凝管) 7.金黄色头盖管(含有惰性分离胶及促凝剂的采血管)

血样样本的采集和处理

血液样本的采集和处理 血液样本的采集和处理 (1) CD4+和CD8+ T淋巴细胞样品的采集和处理 (4) 血液样本的采集和处理 一、血清样品的采集和处理 1、用一次性注射器(或真空采血管)抽取一定量静脉血,室温下自然放置1~2h,待血液凝固、血块收缩后再用3000r/min离心15min,吸出血清于血清管内备用。 2、如用滤纸片采样,则手指或耳垂局部严格进行消毒,在刺破皮肤后,迅速把滤纸片沾上,切勿让血液滴落在其他物体表面造成污染。采血后要待血样干燥后再包装送检。 二、抗凝血样品采集和处理 1、用加有抗凝剂的真空采血管(或一次性注射器抽取静脉血,转移至加有抗凝剂的试管),反复轻摇,分离血浆和血细胞备用。 2、应根据实验要求选用适当的抗凝剂,如CD4+ /CD 8+T淋巴细胞测定可选用K3EDTA或肝素或枸橼酸钠,HIV病毒分离、核酸定性/定量检测可选取K3EDTA或枸橼酸纳。 3、用于核酸定性检测时,采集的抗凝全血应在4~8h内分离PBMC和血浆,否则应在24~48h内分离血浆和血细胞。

三、采集样品注意事项 1、采集样品原则上应按临床采血技术规范操作(试剂盒说明书有特殊要求除外)。 2、采集样品时应注意安全,建议采用真空采血管及蝶形针具(有条件者可用持针器),以避免直接接触血液;直接接触HIV感染者/艾滋病(AIDS)病人血液/体液的操作,应戴双层手套。 四、样品的保存 1、用于抗体检测的血清或血浆样品,应存放于-20℃以下,短期(一周)内进行检测的样品可存放于2-8℃。 2、用于抗原和核酸检测的血浆和血细胞样品应冻存于-20℃以下,进行病毒RNA检测的样品如需存放3个月以上应置于-80℃。 3、用于CD4+/CD8+T淋巴细胞测定的样品不能长期存放,样品采集时间超过48h则不可检测。 五、样品的运送 1、实验室间传递的样品应为血清和血浆,除特殊情况外一般不运送全血。 (1) 第一层容器:装样品,要求防渗漏。样品应置于带盖的试管内,试管上应有明显的标记,标明样品的编号或受检者姓名、种类和采集时间。在试管的周围应垫有缓冲吸水材料,以免破碎。随样品应附有送检单,送检单应与样品分开放置。 (2) 第二层容器:要求耐受性好,防渗漏,容纳和保护第一层

ELISA标本收集处理方法

标本的收集与保存 临床检验常见的标本一般包括血液(指血,静脉血),尿,粪便,脑脊液,胸腹水,前列腺液,精液,阴道分泌物等,这些标本收集的时间、方法和保存都有一定的要求。 一、血液标本ELISA试验时,抽取血样的试剂管是EDTA抗凝管 有些生理因素,如吸烟、进食、运动、情绪波动、妊娠、体位等均可影响血液中某些成分的变化,有些甚至还有昼夜变化。因此血液标本的采集应尽量避免生理因素干扰,以条件一致为宜,如无法避免,应在标本上注明该因素。 1.外周血 一般选取左手无名指内侧采血,该部位应无冻疮,炎症,水肿,破损。如该部位不符合要求,以其他手指部位代替。对烧伤病人,可选择皮肤完整处采血。由于部分血液常规检测(如白细胞计数、分类等)受生理因素影响波动过大,比较时宜使条件尽量一致。涉及到体内出、凝血功能的检测项目(如血小板计数,出血时间或凝血时间等)的检测,一定要注意了解患者是否用过抗凝、促凝药物,以便在减少或避免干扰因素的影响。 2.静脉血 除涉及各种止血和血栓检测等项目需采用抗凝静脉血血浆外,目前绝大多数检测项目的分析检测可直接采用静脉血的血清。在血清检测项目中,有些(如血糖,血脂等)受饮食及昼夜因素影响较大,一般以清晨空腹血标本为宜;有些在血中衰变较快(血清酶活性测定如ACP活性等),0~4℃贮存活性减弱也不一,这些项目的检测必须及时而快速;有些(如肌酸激酶等)受运动等因素影响较大。抽血时避免溶血的发生也十分重要,尤其涉及血钾,LDH等的测定。 二、尿液标本 同血标本一样,尿液标本受饮食、运动、药物量等因素的影响也较大,特别是饮食的影响,故一般来说晨尿优于随机尿。晨尿是指清晨起床后的第一次尿标本,较浓缩和酸化,有形成分(如血细胞,上皮细胞,管形)相对集中便于观察。随机尿即随意一次尿,留取方便,但受饮食、运动、药物影响较甚,易于出现假阳性和假阴性结果,如饮食性蛋白尿,饮食性糖尿,维生素C干扰潜血结果等。餐后尿(午餐后2小时收集的患者尿液)适用于尿糖,尿蛋白和尿胆原的检查,此时的尿标本可增加试验敏感性,检出较轻微的病变。12小时尿细胞计数即Addis计数(前晚8时排空膀胱后留取至次日晨8时的所有尿液),因时间较长,细菌易繁殖,须加入防腐剂甲醛。24小时尿(第一天晨8时排空膀胱后留取至次日晨8时的所有尿液)中化学物质的定量,包括蛋白,糖,尿17-酮、17-羟类固醇,儿茶酚胺,Ca2+等,检测不同的物质,选择不同的防腐剂防腐。清洁中段尿多用于尿细菌培养,要求无菌,冲洗外阴后留取标本。所有尿标本的收集都应足量,最少12ml,最好50ml,定时尿须全部收集,对女性患者应避免阴道分泌物、经血污染尿标本。 三、粪便标本 粪便标本的检测对判断消化系统疾病有重要参考价值。采集时要求用干净的竹签选取含有粘液、脓血等异常病变成分的粪便,对外观无异常的粪便须从表面、深处及粪端多处取材。找寄生虫虫体及作虫卵计数应收集24小时粪便。查痢疾阿米巴滋养体应于排便后立即检查,从有脓血和稀软处取材,保温送检。查日本血吸虫虫卵时应取粘液、脓血部分,孵化毛蚴时至少留取30g粪便,且需尽快处理。检查蛲虫卵须用透明薄膜拭子于晚12时或清晨排便前自肛门周围皱襞处拭取并立即镜检。隐血试验(化学法),试验前3日禁食肉类及含动物血食物并禁服铁剂,维生素C等。所有粪便标本采集后1小时内应检查完毕,以防止有形成分受消化酶及pH的破坏。

实验样品采集运输保存方法

1.R N A实验样品采集、保存方法 使用范围及样品量 类别:Microarray Service;Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量: 样本样本量 哺乳动物培养细胞样品(悬浮细胞)1*107个 哺乳动物培养细胞样品(贴壁细胞)15cm2 植物组织样品100mg-1g,根据植物不同部位的组织决定组 织需要量,尽可能多些,但不必超过1g 动物组织样品 新鲜组织样品 A. 使用RNAlater试剂 取新鲜组织(注:动物死亡后尽快在10min内取材),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,所用组织必须切至厚度在一下,然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管(或冻存管)中。 4度孵育过夜,此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater,然后转入-20中保存,样品在-20不会冻结,但溶液中可能会有一些晶体出现,这并不影响后续的RNA抽提。 B. 使用Trizol试剂 取新鲜组织(1min以内),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品,最好冰上进行操作。

匀浆的裂解液4度短期保存(1month),-20或者-70度长期保存。 冻存组织 生物体死亡后尽快(10min以内)切取新鲜组织,并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块;培养液倒入离心管中,离心沉淀细胞,弃去上清液。 细胞沉淀(1*107个)中加入1ml Trizol裂解液 反复吸打几次后,目视可见细胞层溶液完全 -70保存 贴壁细胞 从培养容器中吸出并弃去培养液 培养瓶直接加入Trizol试剂,Trizol用量与细胞贴壁面积有关,15cm2细胞贴壁面积加入1mlTrizol。 反复吸打几次后,目视可见细胞层溶解完全。 -70度保存。 植物组织样品 准确取得所需新鲜组织后,如有必要可用PBS清洗干净,将所用组织切碎,装入冻存管中或者用锡箔包裹好。 立即投入液氮中保存。 2.血液类样品采集、保存方法 适用范围及样品量 全血/血细胞:Microarray Service;Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 血清/血浆:Microarray Service;PCR Array& PCR Service

血液样本采集标准操作规程

血液样本采集标准操作规程 1.目的 规范样本库采集人体血液样本的操作规程。 2.适用范围 适用于使用真空采血管采集人体血液样本的活动过程。 3.定义和术语 3.1知情同意 保证被收集者了解并理解研究的目的和内容,并自愿同意参加试验的原则。知情同意具有国际性,是对所有进行人体研究或人体取样调查的研究人员的伦理要求。在以人为研究/试验对象的科研领域,收集者必须获得研究对象/参与者的知情同意,保护被收集者合法权益的同时保护收集者免于诉讼。 3.2知情同意书 知情同意书,是每位被收集者表示自愿参加某一项试验而签署的文件。知情同意的具体体现是知情同意书的签署。知情同意书由收集者和被收集者共同签署,一式两份。正本由收集者保存,被收集者保存副本。 3.3真空采血管采血法 将有头盖胶塞的采血试管预先抽成不同的真空度,利用其负压自动定量采集静脉血样。 3.4血清和血凝块 指在凝血过程中,血浆中的纤维蛋白原转变为不溶的血纤维。血纤维交织成网,将很多血细胞网罗在内,形成血凝块。血液凝固后,血凝块又发生回缩,并释放出淡黄色液体,称为血清,其中已无纤维蛋白原。

3.5血浆 血浆是离开血管的全血经抗凝处理后,通过离心沉淀,所获得的不含细胞成分的液体,其中含有纤维蛋白原。 3.6白细胞 白细胞人体血液及组织中的无色细胞,是血液中的一类细胞,有细胞核。根据形态特征可分为粒细胞、淋巴细胞和单核细胞。 3.7枸橼酸钠(柠檬酸钠) 枸橼酸能与血液中的钙离子结合形成螯合物,阻止血液凝固。 3.8乙二胺四乙酸二钾(EDTA·K2) 与枸橼酸钠的抗凝机制相同,用21.5-2.2mg EDTA·K2可阻止1ml血液凝固。 3.9肝素 一种相对分子质量为15000,含硫酸基团的黏多糖,与抗凝血酶Ⅲ结合,促进其对凝血因子和凝血酶活性的抑制,抑制血小板聚集从而达到抗凝。 4.职责 4.1临床护理人员 按照标准操作规程采集血液。 4.2样本管理员 协助样本的采集,对样本进行处理和储存,并作相关记录。 5.设备和耗材 5.1个人防护装备 实验防护服、手套、口罩、护目镜及其它相关防护装备。 5.2设备

临床常用检验标本的采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项 1 血标本采集方法及注意事项 (1)采血时机:提前向病人讲解抽血化验检查的目的,方法和采集标本的时机,根据检验的不同要求,采血的时间也不同: 1)空腹抽血适宜作血糖,血脂,肝功能,肾功能,电解质等生化检验。禁食时间约12小时,时间过长易引起低血糖虚脱。 2)餐后2小时,上午8-9时抽血,可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 3)急性心肌梗死发病后,16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST),肌酸激酶(CK )达峰值;30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值, 维持3-6d 。 4)血清淀粉酶起病后6~12小时开始升高,12~24小时达到高峰,一般持续3~5天后下降,超过500U (Somogy 法)即有确诊价值。 5)留取血细菌培养标本时,应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本,阳性率较高。 (2)采血部位 1)动脉采血:常用采血部位股动脉,桡动脉,足背动脉等。由于动脉压力高,危险性较大,故采血后按压穿刺点5-10分钟。 2)静脉采血:是最常用的采血方法,可选择的表浅静脉多,要求护士必须严格无菌操作,避免感染,可选择较大的静脉穿刺,争取一次操作成功。 3)毛细血管采血:只需很小量标本,多在手指,足趾或足跟等部位采血,如全血细胞计数,快速血糖,血脂等检验,或婴幼儿。 (3)采血器材:a, 注射器, B ,真空采血器: (4)标本的类型:血标本有三类:即全血,血浆,血清。 1)全血:用抗凝剂。 2)血清:不用抗凝剂。常用于多种生化分析,如蛋白质,脂类,无机盐,酶,肝功能,肾功能检查。 3)血浆:有多种抗凝剂。用于红细胞积数,红细胞比容,血沉,血型鉴定,血红蛋白电泳,交叉配血等。 (5)操作重点 1)止血带的应用,一般止血带捆扎不要超过1分钟,时间过长,将影响结果。 2)当病人进行输液治疗时。切忌在有静脉穿刺针的肢体上采集血标本,以免影响检验的真实结果。 3)注射器采血后。应先取下针头后再沿试管壁将血液缓慢地注入试管中。 4)操作完毕按要求处理注射器等污染物品。 5)有抗凝剂的血标本要充分摇匀,防止凝血。 2.尿标本采集方法及注意事项 方法: (1)导尿法:用导尿管导尿,取10—15毫升尿业盛于无菌容器中送 检。 中段尿采集法:是临床上采用最多的方法。女性病人以肥皂水或1:1000新洁尔灭或其它消毒液等冲洗外阴部及尿道口;男性病人应翻转包皮冲洗,用1:1000新洁尔灭消毒尿道口,再用灭菌纱布擦干,让病人排尿,弃去前段尿,收集中段尿10-20毫升于无菌容器内,立即加盖送检。 尿标本采集注意事项: (1)尿常规,妊娠实验等最好留取清晨第一次尿液为宜,因为较浓缩,条件恒定,便于对比,故应向病人详细说明。急诊病人应随时留取标本。

第四章 生物样品的采集、储存及预处理

第四章生物样品的采集、储存及预处理 第一节生物样品的采集、储存 体内药物分析的任务和分析对象具有如下特点:被测定的药物和代谢物的浓度极低;样品介质复杂,其中存在各种各样直接或间接影响测定结果的物质,大多需要分离和净化;仅有少量样品可供分析,尤其是在连续测定过程中,很难再度获得完全相同的样品;样品的稳定性需要特别注意等。 一、生物样品的采集 生物介质(biological matrix)包括全血、血浆、血清、尿、粪、唾液和各种组织。其中最常用的生物样品是血液和尿液。 1.血样的采集 供测定的血样应能代表整个血药浓度。若能从动脉或心脏取血最为理想,但只能用于动物,不能用于人。动物采血可根据不同种类及实验需要,采取适当的方法。如大、小鼠可由尾动脉、静脉、心脏、眼眶取血或断头取血等,家兔可由耳缘静脉、颈静脉等多处取血,犬可由前、后肢静脉等处取血。对于受试者通常采用静脉取血(成人从肘正中静脉取血,小儿从颈外静脉取血)。静脉取血一般将注射器针头插入静脉血管抽取。抽取的血液转移至试管或其它容器时应缓缓压出,以防血细胞破裂。 全血在加肝素或柠檬酸、草酸盐等抗凝剂后,离心分取血浆,其体积约为全血的一半。血清则是由血液中纤维蛋白原等影响下,引起血块凝结而析出,离心取用,而血块凝结时往往易造成药物吸附的损失。 全血直接作为样品时,也应加入抗凝剂混匀,防止凝血。对大多数药物来说,血浆浓度与红细胞中的浓度呈正比,所以测定全血不能比测定血浆提供更多的信息。而全血的净化较血浆与血清复杂,尤其是溶血后,血色素等可能会给HPLC测定带来影响。但是,一些药物可与红细胞结合,或药物在血浆和红细胞的分布比率因人而异,在这些情况下,宜采用全血。 血样抽取量受到一定的限制。人体药代动力学研究需要在多个时间点(一般为12~20点)取样,每次由前臂静脉取血3~5m1。随着高灵敏度测定方法的建立,取样量可继续降低,从而更易为受试者接受。实验动物取血量应注意是否超过了动物的生理承受能力。 制备血浆样品时,将采取的血样置含有抗凝剂的试管中,缓缓转动试管使其充分混合、离心,所得上清液即为血浆。常用的抗凝剂有肝素,它是体内正常的生理成分,因而不会改变血样的化学组成或引起药物的变化,一般不会干扰测定。通常lml血液采用20个单位

常见标本采集指南

常见标本采集指南 起草日期:2013 年7月5 日生效日期2013年9 月1日批准人:丁正林 Ⅰ.目的:标本的采集是实验前质控的重要环节,直接影响到检验结果的可靠性和准确性,制定本采集指南是为了规范标本的正确采集,减少采集误差,有效提高检验质量。 Ⅱ.适用范围:适用于全检验科。 Ⅲ. 实施办法、程序: 一.静脉血采集 1.带上手套,并注意常规安全防护。 2.核对检验申请医嘱或检验申请单上的病人信息及检验项目是否吻合。 3.信息核对无误后绑定真空采血条码管,门诊病人可通过诊疗卡调出相应信息。 4. 受检者取坐位或卧位,前臂水平伸直置于抽血台枕垫上或病床上,选择容易固定、明显可见的肘前静脉或手背静脉,幼儿可用颈外静脉采血。 5.在穿刺点上方约6cm处系紧压脉带,嘱受检者紧握拳头,使静脉充盈显露。 6.用25g/l碘酊自所选静脉穿刺处从内向外、顺时针方向消毒皮肤,待碘酊挥发后,再用75%乙醇以相反方向脱碘,待干。 7.采血:拔除采血穿刺针的护套,以左手固定受检者前臂,右手拇指和十指持穿刺针,沿静脉走向使针头与皮肤成300角,快速刺入皮肤,然后成500角向前刺破静脉壁进入静脉腔,见回血后将刺塞针端(用橡胶管套上的)直接刺穿真空采血管盖中央的胶塞中,血液自动流入试管内,如需多管血样,将刺塞端拔除,刺入另一真空采血管中即可。达到采血量后,松压脉带,嘱受检者松拳,拔下刺塞端的采血试管,将消毒棉签压住穿刺孔,立即拔除穿刺针,嘱受检者继续按压针孔数分钟。抗凝血需立即轻轻颠倒混匀6-8次。 8. 将已使用过的针放入医疗硬器盒内。 附注: 1)采血部位通常选择肘前静脉,如此处静脉不明显,可采用手背、手腕、腘窝和外踝部静脉。幼儿可采用颈外静脉。 2) 压脉带捆扎时间不应超过1分钟,否则会使血液成分浓度发生改变。 3) 如果一次要求采血多管样本时,应按以下顺序采血:血培养蓝头管黑头管黄头管红头管橘黄头管绿头管紫头管灰头管 4)如采血时发生晕针,应立即拔出针头,让其平卧。必要时可用拇指压掐或针刺人中、合谷等穴位,或嗅吸芳香酊等药物,严重时立即送急诊室救治。 二、动脉血采集 1 填写血气检测申请单,并对病史、诊断和用药情况、抽血时体温、是否用氧及流量等进行填写。 2标本采集:选择股动脉、肱动脉或桡动脉穿刺点,经皮肤消毒后,用动脉采集专用针穿刺动脉血管,当动脉血压力推动空针活塞采集所需动脉血后。拨出针用小橡皮封针头,隔绝空气,立即将注射器放在手中双手来回搓动混匀防止凝固,并立即送检。 三、浆膜腔积液采集 由临床医生按相关操作规范采集。标本包括胸腔积液、腹腔积液、心包积液。 采集标本分三管留取,每管1-2ml。 第一管供细菌学检查,必须置于无菌管中,如浆膜腔积液培养。 第二管供化学及免疫学检查,如浆膜腔积液生化检查。 第三管供细胞学检查(置于帽为紫色的试管中抗凝),如浆膜腔积液常规检查。 四、脑脊液采集 由临床医生按相关操作规范采集。

实验一 食品样品的采集与保存

实验一食品样品的采集与保存 1.实验目的 掌握苹果、青菜、大米、大排等几种食品原料类型的采集和保存方法; 理解采样的注意事项。 2.实验原理 2.1采样原理 采样是指从整批被检食品中抽取一部分有代表性的样品,供分析化验用。采样是食品分析的首项工作和重要环节。同一类的食品成品由于品种、产地、成熟期、加工或保藏条件不同,其成分及其含量有相当大的差异。同一分析对象,不同部位的成分和含量也可能有较大差异。因此必须掌握科学的采样和保存技术。否则,即使以后的样品处理、检测等一系列环节非常精确、准确,其检测的结果亦毫无价值,以致导出错误的结论。 2.2采样原则 1. 代表性 在大多数情况下,待鉴定食品不可能全部进行检测,而只能抽取其中的一部分作为样品,通过对样品的检测来推断该食品总体的营养价值或卫生质量。因此,所采的样品应能够较好地代表待鉴定食品各方面的特性。若所采集的样品缺乏代表性,无论其后的检测过程和环节多么精确,其结果都难以反映总体的情况,常可导致错误的判断和结论。 2. 真实性 采样人员应亲临现场采样,以防止在采样过程中的作假或伪造食品。所有采样用具都应清洁、干燥、无异味、无污染食品的可能。应尽量避免使用对样品可能造成污染或影响检验结果的采样工具和采样容器。 3. 准确性 性质不同的样品必须分开包装,并应视为来自不同的总体;采样方法应符合要求,采样的数量应满足检验及留样的需要;可根据感官性状进行分类或分档采样;采样记录务必清楚地填写在采样单上,并紧附于样品。 4. 及时性 采样应及时,采样后也应及时送检。尤其是检测样品中水分、微生物等易受环境因素影响的指标,或样品中含有挥发性物质或易分解破坏的物质时,应及时赴现场采样并尽可能缩短从采样到送检的时间。 2.3四分法采样

护理7种常用标本采集

护理7种常用标本采集 正确的检验结果对疾病的诊断、治疗和预后判断具有非常重要的意义,而正确的检验结果与正确采集标本关系密切。作为标本采集者,护士应了解各种检验的目的,掌握正确采集标本的方法,采集过程中严格执行查对制度、遵守无菌技术操作原则及标准预防措施,以保证检验结果的准确性。 一、血标本采集 (一)评估和观察要点。 1.评估患者病情、意识及配合程度,需空腹取血者了解是否空腹。 2.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。 (二)操作要点。 1.真空采血法:根据标本类型选择合适的真空采血管,将采血针与持针套连接,按无菌技术操作规程进行穿刺,见回血后,按顺序依次插入真空采血管。 2.注射器直接穿刺采血法:根据采集血标本的种类准确计算采血量,选择合适的注射器,按无菌技术操作规程进行穿刺。采集完成后,取下注射器针头,根据不同标本所需血量,分别将血标本沿管壁缓慢注入相应的容器内,轻轻混匀,勿用力震荡。 3.经血管通路采血法:外周血管通路仅在置入时可用于采血,短期使用或预期使用时间不超过48h的外周导管可专门用于采血,但不能给药。采血后,血管通路要用足够量的生理盐水冲净导管中的残余血液。(三)指导要点。

1.告知患者血标本采集的目的及配合方法,如需空腹采血应提前告知。 2.告知患者按压穿刺部位及按压时间。 (四)注意事项。 1.在安静状态下采集血标本。 2.若患者正在进行输液治疗,应从非输液侧肢体采集。 3.同时采集多种血标本时,根据采血管说明书要求依次采集血标本。 4.采血时尽可能缩短止血带的结扎时间。 5.标本采集后尽快送检,送检过程中避免过度震荡。 二、血培养标本采集 (一)评估和观察要点。 1.评估病情、治疗、心理状态及配合程度。 2.了解寒颤或发热的高峰时间。 3.了解抗生素使用情况。 4.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。 (二)操作要点。 1.注射器直接穿刺采血法(同血标本采集)。 2.经血管通路采血法(同血标本采集)。 3.经外周穿刺的中心静脉导管取血法:取1支注射器抽生理盐水20ml 备用,另备2支注射器。取下肝素帽,连接1支空注射器,抽出5ml 血液弃去;如正在静脉输液中,先停止输液20s,再抽出5ml血液弃去。另接1支注射器抽取足量血标本。然后以生理盐水20ml用注射器以脉冲式冲洗导管。消毒导管接口,清除残留血迹。连接肝素帽或

《样品采集、保存和管理作业指导书》

样品采集和保存 一样品采集和保存 ①氨氮:水样采集在聚乙烯瓶或玻璃瓶内,要尽快分析。如需保存,每升样品中应加1ml 浓硫酸,并在4下贮存,用酸保存的样品,测定时用氢氧化钠将PH值调至7左右。 ②溶解氧:样品应采集在细口瓶中,测定就在瓶内进行。试样充满全部细口瓶。不得有气 泡。 ③化学需氧量:水样采集于玻璃瓶中,应尽快分析。如不能立即分析时,应加入硫酸至PH <2,置4℃保存,时间不能多余5天。采集水样的体积不得少于100ml。 ④悬浮物:所用聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶要用洗涤剂洗净。在采样之前,再用即将采集的水 样清洗三次。然后采集水样500—1000ml,盖严瓶塞。 ⑤总磷:采集500ml水样后加入1ml硫酸调节样品的PH值,使之低于或等于1,或不加 任何试剂于冷处保存。 ⑥PH值:最好现场测定。否则应在采样后把样品保持在0—4℃,并在采样后6小时内进 行测定。 ⑦水温:最好现场测定。否则,应在采样后把样品保持在0~4,并在采样后6h之内进行测 定 ⑧氯化物:采集代表性水样,放在干净且化学性质稳定的玻璃瓶或聚乙烯瓶内。保存时不 必加入特别的防腐剂 ⑨色度:所用于样品接触的玻璃器皿都要用盐酸或表面活性剂溶液加以清洗,最后用蒸馏 水或去离子水洗净、沥干。样品采集在容积至少为1L的玻璃瓶内,在采样后尽快进行测定。 ⑩总氮:将采集好的样品储存在聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶中,用浓硫酸调节PH值至1~2,常温下可保存7天。储存在聚乙烯瓶中,-20℃冷冻,可保存一个月。 ⑾五日生化需氧量:采集的样品应充满并密封于棕色玻璃瓶中,样品量不小于1000ml,在0~4℃的暗处运输和保存,并与24小时内尽快分析。24小时不能分析可冷冻保存。 ⑿粪大肠菌群:采样瓶使用500ml已灭菌的磨口玻璃塞广口瓶,采集水样时应避免瓶盖及瓶子颈部受杂菌污染。灭菌后的采样瓶2周内未使用需重新灭菌 采集好的水样需放置约4℃冷藏设备内保存运输,一般要求在采集4小时内测定。

临床血液标本采集指南 (一医院资料)

临床血液标本采集指南 一、检验申请 规范填写检验申请单 项目填写齐全,用词规范、字迹清楚、避免涂改。不同标本类型最好分开申请对于被检者的特殊情况,应当在申请单上注明,供检验人员判断结果参考。 检验科要求检验人员加强与临床医护人员沟通,及时解决检验项目申请和送检标本存在的问题和疑问;对于不合格检验申请单和不合格送检标本按照“医学检验工作制度”进行登记、处理。对于漏填或错填申请科室的检验申请单,检验科一律禁止发送检验报告,必要时送交医务科处理。 二、病人准备 医护、检验人员指导病人做好准备 考虑饮食、运动、生理周期、疾病及药物等对检验结果可能产生的影响,指导病人正确采集标本。 (一) 控制饮食 (1)大多数检验项目都要求在早晨空腹采血,咖啡、浓茶、高糖及可乐类饮料也应禁食。 (2)肝功、血脂、凝血等项目要求禁食12-16小时,且提前一天的晚餐应当避免饮酒、禁止高脂肪、高蛋白饮食。 (3)饮食对血脂检验影响重大,至少应当在抽血前的三天内注意保持正常饮食。

(4)在做内生肌酐清除率测定之前,待检者应禁食肉类3天,不饮咖啡和茶,停用利尿剂,实验前避免剧烈运动,饮足量的水。(二)避免药物影响 许多药物(如VitC、雌激素、降血脂药等)对检验结果尤其是血、尿、便的生化检验结果产生影响,抗生素应用将对微生物培养检验结果产生直接的影响。申请检验前医生应该了解待检者近期及当前相关药物使用情况并给予适当指导,在对检验结果可能产生明显影响时,应当在检验申请单上注明,或以电话或其他方式告知相关检验人员。 举例:降血脂、避孕药、噻嗪类利尿剂、§-受体阻滞剂、免疫抑制剂、某些降压药、降糖药、胰岛素及其它激素制剂等可影响血脂检验结果;应根据药物特性,在作血脂检验前停药数天至数周。如不能停药,应记录用药情况,恰当评估药物及检验结果的影响。(三)避免运动影响 (1)剧烈运动可以使许多血液成分发生变化,甚至持续24小时以上,因此剧烈运动之后不能立即抽血;快步行走之后至少应休息10-15分钟后再抽血。 (2)应在平静状态抽血,避免情绪激动。 (四)注意生理差异 临床医生申请检验项目及评估检验报告时,应考虑性别、年龄、昼夜节律、季节变动、生理周期(如怀孕、月经)等因素对检验结果的影响,并给与必要指导。

昆虫标本采集制作及保存方法(最全)

昆虫标本的采集、制作及保存方法(全) 采集、制作及保存昆虫标本是从事农林昆虫学研究的基本技术。由于自然界的各种昆虫生活方式和环境各异,其活动能力和行为千差万别,有的昆虫形态也常模拟环境,因而必需有丰富的生物学和有关的采集知识,才能采得完好的所需标本。采集和制作大量标本后,还必须有科学的保管方法,使标本经久不坏。 第一节昆虫标本的采集方法 一、采集用具的构造和使用 (一)捕虫网是采集昆虫最常用的工具,按结构和用途不同,可分为以下四种类型。 1. 空网(图1) 用来采集蝴蝶、蜂类、蜻蜓等善飞的昆虫。网圈用粗铁丝弯成,直径约33cm,两端长出的末端弯成小钩,固定在网柄上。为了携带方便也可作成对折形。网柄长约1m,用木棍、竹竿制成。网袋用透气、坚韧、淡色的尼龙纱、珠罗纱、纱布等制成。网的长度应超过网圈直径的一倍。袋底略圆,以利于将捕获的昆虫装进毒瓶。袋口用布镶边,内穿网圈。 图1 捕虫网 1. 空网的装置 2. 网圈连接网柄的方法 3. 网袋的裁制 4. 可拆卸、折叠的网圈 2. 扫网制作方法与空网相同。但因用来扫捕树丛、杂草丛中隐蔽的昆虫,因而要用较结实的白布或亚麻布制作网袋,网框、网柄都要选择坚固的材料,以承受网扫时较大阻力。扫网的网底也可做成开口式,用时将网底扎住,网扫后打开网底,可将昆虫直接倒入容器或毒瓶。 3. 刮网(图2)在树皮上采集昆虫时,可用粗铝丝作架,前面连接上一段有弹性的钢条,缝上白布的网袋,底端可捆扎上个小瓶,以便接虫。 4. 水网(图3)用来采集水生昆虫。根据水域深浅,河、溪的宽狭,水草的稀密及所采的昆虫种类来选择网的规格和种类。作水网的材料要坚固耐用,用

血液样本采集和血涂片制备

血液样本采集和血涂片制备 1、抽血时针栓只能外抽,不能内推,以免静脉内注入空气形 成气栓,造成严重后果。 2、属于酸性染料的是:伊红属于酸性染料,通常为钠盐,有 色部分为阴离子。 3、疟原虫检查常用的染色方法是:吉姆萨染液对细胞核、 寄生虫(如疟原虫等)找色较好,结构更清晰,但对细胞质的着色能力略差。 4、手工推片法,推片与载玻片的夹角为25°~30°。 5、血液黏度与血细胞比容和血浆黏度有关,其中,血浆黏度 受血浆中纤维蛋白原、球蛋白等大分子蛋白质的影响,它们的浓度越高,血浆黏度越高。 6、涂片瑞氏染色时,缓冲液常用的pH为6.4~6.8。 7、瑞氏染料是由酸性染料伊红和碱性染料亚甲蓝(又名美 蓝)组成。染色原理既有物理的吸附作用,又有化学的亲和作用。血红蛋白、嗜酸性颗粒为碱性蛋白质,与酸性染伊红结合,染粉红色;细胞核蛋白、淋巴细胞、嗜碱性粒细胞胞质为酸性,与碱性染料亚甲蓝或天青结合,染紫蓝色或蓝色; 中性颗粒呈等电状态与伊红和亚甲蓝均可结合,染淡紫红色;原始红细胞、早幼红细胞胞质、核仁含较多酸性物质,染成较浓厚的蓝色;中幼红细胞既含酸性物质,又含碱性物

质,染成红蓝色或灰红色;完全成熟红细胞,酸性物质彻底消失后,染成粉红色。瑞氏染色法是最经典、最常用染色法。 8、瑞氏染料亚甲蓝容易氧化为一二三甲基硫堇等次级染料 (即天青)。将适量伊红、亚甲蓝溶解在甲醇中,即为瑞氏染料,由酸性染料伊红(E-)和碱性染料亚甲蓝(M+)组成。 Ⅱ液磷酸盐缓冲液pH为6.4~6.8。在偏碱性环境中负电荷增多,易与亚甲蓝结合,所有细胞呈灰蓝色,颗粒呈深暗,嗜酸 颗粒呈暗褐,甚至棕黑色,中性颗粒偏粗,呈紫黑色。 9、细胞各种成分均属蛋白质,由于蛋白质系两性电解质,所带电荷随溶液pH而定,在偏酸环境中正电荷增多易与伊红结合染色偏红;在偏碱环境中负电荷增多易与亚甲蓝或天青结合偏蓝。因此,细胞染色对氢离子浓度十分敏感,所以在瑞氏染色中缓冲液起到恒定pH作用。 10、染色原理:既有物理的吸附作用,又有化学的亲和作用。各种细胞成分化学性质不同,对各种染料的亲和力也不一样。11、血清与血浆的差别是:血清中缺少某些凝血因子,如凝血因子Ⅰ(纤维蛋白原)、凝血因子Ⅱ(凝血酶原)、凝血因子Ⅴ、凝血因子Ⅷ等。 12、正常成人血量约为(70±10ml)/kg体重,成人4~5L,占体重的6%~8%,其中血浆占55%,血细胞占45%。

标本采集试题

常用标本采集法试题科室姓名得分 一、填空题(本大题20小题,每题3分,共60分,每一道试题下面有A、 B、C、D、E五个备选答案。请从中选择一个最佳答案。) 1.为了保证化验标本的质量、采集标本时避免( ) A.方法正确 B.采集准确 C.放置时间过久 D.特殊标本注明时间 E.量准确、 2.李女士,急性肠炎入院,留取便培养标本查致病菌,下列叙述不正确的是( ) A.取粘液部分粪便送检 B.至于带盖容器内送检 C.置于加温容器中送检 D.如无便意,可以无菌棉签有肛门插入6-7cm处取标本 E.用无菌棉签取标本 3.以下有关标本采集不正确的是( ) A.找癌细胞的痰标本应置于清洁容器中 B.24小时痰标本是指留取晨起7点至次晨7点的全部痰夜 C.找癌细胞的痰标本应立即送检 D.留取24小时痰标本时应将唾液、漱口水一起送检 E.痰常规标本应用清水漱口后取 4.小林,男,11岁,白血病,化疗过程中因口腔溃疡需做咽拭纸真菌培养,采集标本部位为 A.咽部 B.双侧腭弓 C.溃疡面 D.扁桃体 E.舌面 5.血气分析时,标本的采集处理中,以下做法错误的( ) A.采集动脉血B.以肝素抗凝C.立即送检D.不需与空气隔绝E.抽血后将针头刺入胶塞摇匀血液 6. 下列哪项属于血清标本采集法:( ) A、PaCO2 B、APTT C、HGB D、心肌酶 E.WBC 7.长期留置尿管者,应在()留取尿标本。 A、随时 B、大量饮水后 C、更换新导尿管后 D、拔出导尿管后 E.输入抗生素后 8.成人动脉采血时选取的动脉常有:()

A.颈动脉B.肱动脉C.股动脉D.足背动脉E.尺动脉 9.判断机体低氧血症最敏感的指标为:( ) A.发绀B.静脉血氧分压C.动脉血氧分压 D.动脉血氧饱和度E弥散功能测定 10.标本采集法是指采取病人少许的()经过物理、化学和生物学的实验室技术和方法对其进行检验,。作为判断患者有无异常存在的依据。A. 血液、排泄物(粪、尿)B.分泌物(痰、鼻分泌物)C.呕吐物、体液(胸腔积液、腹腔积液) D.脱落细胞(食道、阴道) E.以上都是 11、某患者要做粪便潜血试验,应给患者哪一组食谱( ) A. 卷心菜、五香牛内 B. 菠菜、红烧青鱼 C. 茭白、鸡蛋 D. 油豆腐、鸡血汤 E. 炒肝 12尿常规检查需何时留取尿标本( ) A. 饭前半小时 B. 晨起第一次 C. 12 小时尿 D. 24 小时时 E. 随时收集尿液 13.检查粪便中的寄生虫卵应() A.取中间部位的粪便 B.取边缘部位的粪便 C. 取不同部位的粪便 D. 随机取少许粪便 E. 留取全部粪便 14.作尿艾迪计数时,第一次留120ml尿液需加何种防腐剂,其量是多() A. 40%甲醛4滴 B. 浓盐酸210ml C. 甲苯10ml D. 40% 甲醛3 滴 E. 甲苯数滴 15.采用血标本做乙肝七项检查需用() A. 清洁干试管 B. 普通抗凝管 C. 肝素抗凝管 D. 0.1ml 草酸钠试管 E. 10% 草酸钾试管 16.糖尿病患者,需留尿作尿糖定量检查。合适的尿标本采集方法是() A. 留清晨第1次尿约100ml B. 随时留尿100ml C. 饭前留尿100ml D. 留24 小时尿 E. 用中段尿法留尿5ml 17.取血查血丝虫微丝蚴标本的时间应于 A. 清晨起床前 B. 晚间入睡前 C. 晚间熟睡时 D. 用抗生素前

检验标本的采集与运送规范

检验标本的采集与运送规范(护理) 一、血液常规采集与运送规范 (一)、常用真空采血管的种类 1、促凝管/分离胶促凝管(橙色/黄色):用于医学检验中生化学、免疫学、 血清学、各种病毒检测及血库检查血液标本的采集与盛装。管壁经特殊处理,防止挂壁及溶血现象。 2、枸橼酸钠1:9(蓝色)管:用于凝血机制等检查,按抗凝剂与血样体积比为 1:9设定的真空采血管,具有准确的血液量与抗凝剂总量,配比精度较高。 3、肝素钠/锂(绿色/墨绿色)管:用于急诊生化、血液流变学、全血铅测定 的血液标本采集。对血液成份干扰少,不影响红细胞体积,不引起溶血。具有血浆分离速度快,与血清标本指标兼容性强等优点。 4、EDTA(紫色)管:抗凝剂为乙二胺四乙酸(EDTA,分子量292)及其盐, 适用于一般血液学检验,不适用于凝血试验及血小板功能检查,亦不适用于钙离子,钾离子,钠离子,铁离子,碱性磷酸酶,肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR试验。 (二)多管采样时采集次序 多管采血时一般按下列顺序:凝血试验→血沉→血常规→其它。以防止凝血因子活化,或者血小板聚集而影响检验结果。 多项检测同时采血时应按下列顺序采血:①血培养;②无添加剂管或促凝管;③凝血管;④有添加剂管的顺序为:a.橼酸盐管;b.肝素管;c.EDTA管;d.草酸盐/氟化钠管。 (三)各种血标本的采集及注意事项 1、血常规检验标本 一般用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O) 1.5~2.2mg/ml抗凝(EDTA抗凝管,紫色帽)采血。 采血注意事项: 1)应按抗凝管刻度准确采静脉血至2ml。 2)采血后立即上下颠倒混匀(5~10次,不可用强力震荡,以免造成溶血。);

血液样本的采集与保存

实用帖血液样本的采集与保存 在脊椎动物中,外周血一直被认为是侵害性较小、富有价值的检测样本。在许多生物样 本库中,由于血液样本的常规收集、处理及保存方法简便、成本低且富含可利用成分和生物分子,因此是进行多种项目分析的理想实验材料。然鹅,科研僧们历经千辛万苦最后发现获 得的血液样本RNA降解了。。。。额,这就很惆怅了。 所以呢,在样本采集、处理及储存过程中必须格外注意,从根本上确保获得高质量的 RNA 今天小编和大家一起来聊一聊在进行RNA实验时血液样本如何进行收集与保存。 血液的组成 首先来熟悉一下血液的组成。 人类的血液由血浆和血细胞组成。其中血浆约占血液的55%是水,糖,脂肪,蛋白质, 钾盐和钙盐等的混合物。血细胞约占血液的45%主要分为红细胞、白细胞和血小板。而哺 乳动物成熟的红细胞和血小板是无核的。

11^ 血浆和血清 血浆是离开血管的全血经抗凝处理后,通过离心沉淀,所获得的不含细胞成分的液体, 其中含有纤维蛋白原,不含游离的 Ca 2+ ,若向血浆中加入 ,血浆会发生再凝固。 血清是离体的血液凝固之后, 经血凝块聚缩释出的液体, 其中已无纤维蛋白原, 游离的Ca 2+ ,血清中少了很多的凝血因子但多了很多的凝血产物。 不加卿赛 mm BW. 血囲 其他有形咸分 但含有 血浆 有形成分

采血管的选择 采血管,大家都不陌生,去医院抽个血,一定会用到采血管,那么问题来鸟,这么多颜 色的采血管,有什么区别呢?下面小编来给大家介绍一下采血管的分类及不同颜色试管帽代 表的含义。 1. 蓝色头盖管(含有柠檬酸钠抗凝剂的采血管) 2. 黑色头盖管(含有0.109mol/L 柠檬酸钠) 3. 紫色头盖管(含有乙二胺四乙酸以及其盐的采血管 ) 4. 绿色头盖管(肝素抗凝管) 5. 灰色头盖管(含有草酸钾/氟化钠) 6. 橘红色头盖管(促凝管) 7. 金黄色头盖管(含有惰性分离胶及促凝剂的采血管) 8.红色头盖管(无添加剂的干燥真空管) f l m ■ M M ■ ■ 机 ■ 忡-M M

血液标本的采集方法及注意事项

血液标本的采集方法及注意事项 生化检验用的血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本,静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童,血气分析多使用动脉血。 (一)静脉采血法 1.采血步骤 采血前要核对病人姓名、年龄、性别、编号及检验项目等,按试验项目要求,准备好相应的容器,如空白试管、抗凝管或促凝管等。病人应取坐位或卧位,采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。若用普通采血法,采血后应取下针头,将血液沿管壁缓慢注入试管内。 2.注意事项 (1)很多生化成分受膳食影响,因此,采血前要确认病人是否空腹。 (2)避免充血和血液浓缩:采血时应动作迅速,尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟,否则将使生化结果升高或下降。 (3)若病人正在进行静脉输液,不宜在输液同侧手臂采血;若女性病人做了乳腺切除术,应在手术对侧手臂采血。 (4)采血的体位:体位改变可引起一系列的生理变化,使血液中的许多指标发生改变。一般采取直立位采血,其二标本的测定值比卧位高5%~15%。因此,采血时要注意保持正确的体位(坐位或卧位),以及体位的一致性。 (5)采血时只能向外抽,决不能向静脉内推,以免注入空气,形成气栓而造成严重后果。 (6)防止溶血:造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁;穿刺不顺利,组织损伤过多;淤血时间过长;抽血速度太快;血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫;震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后,未取针头直接将血注入真空管内,也易造成溶血。体内溶血属合格标本,但应在报告单上注明。 (二)动脉采血法 肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点,但多选择肱动脉和桡动脉。在摸到明显搏动处,按常规消毒,左手固定搏动处,右手持注射器,针头成60°角刺入,血液将自动进入注射器内。 (三)真空采血法 双向针一端插入真空试管内,另一端在持针器的帮助下刺入静脉,血液在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血,避免了血液外溢引起的污染,并有利于标本的转运和保存。标准真空采血管采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和试验用途。

样品采集保存和运输

基因芯片样品的采集、保存和运输 基因芯片实验、microRNA芯片实验、 PCR芯片实验和实时定量PCR实验的样品准备 一、动物组织样品保存与运输(每张芯片需50-100mg组织) 1、新鲜组织样品的保存与运输 A、使用RNA later试剂 →取新鲜组织(注:生物体死亡后尽快在10分钟内取材),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,所用组织必须切至厚度在 0.5 cm以下(长宽不限),然后放入装有5倍体积RNA later的离心管(或冻存管)中。 →4℃孵育过夜,此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNA later,然后转入- 20℃中保存。样品在- 20℃不会冻结,但是溶液中可能有一些晶体出现,这并不影响后续的RNA抽提。冻存样品也可以反复冻溶,其RNA含量和完整性不受影响。 →RNAlater处理的标本可用常规冰袋4℃低温运输(无需使用干冰- 70℃运输)。 B、使用Trizol试剂 Trizol试剂可抑制RNA酶活性,破坏细胞膜结构以裂解细胞释放出RNA。 →取新鲜组织(注:生物体死亡后1分钟内取材料并保存好),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,每50~100 mg组织加1 ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品,操作最好在冰上进行。 →匀浆的裂解液4℃短期保存(1个月),-20度或- 70℃长期保存。干冰运输,短期(5天以内)冷藏(4℃)运输亦可。 2、冻存组织的保存与运输 生物体死亡后尽快(最好在10分钟内)切取新鲜组织,以PBS或生理盐水清洗干净切为小块,立刻放入液氮中冷冻2-3小时后可转入-70℃冰箱保存或着一直保存在液氮中。冻存组织可放入干冰中直接运输,或者以Trizol 4℃下匀浆:冻存的组织块以液氮研磨后加Trizol或直接加Trizol以电动匀浆器匀浆,匀浆的裂解液干冰运输或短期(5天以内)冷藏(4℃)运输。 二、哺乳动物培养细胞样品采集、保存与运输——使用Trizol试剂(不建议使用RNAlater) 1、悬浮细胞 →悬浮细胞培养液倒入离心管中,离心沉淀细胞,弃去上清液。 →细胞沉淀(1×107个细胞)中加入1 ml的Trizol裂解液。 →反复吸打几次后,目视可见细胞层溶解完全。- 70℃保存或干冰运输。注:Trizol处理的标本冷藏(4℃)运输,短期(5天以内)亦可。 2、贴壁细胞 →从培养容器中吸出并弃去培养液。 →培养瓶中直接加入Trizol试剂,Trizol用量与细胞贴壁面积有关,约15 cm2细胞贴壁面积加入1 ml Trizol。 →反复吸打几次后,目视可见细胞层溶解完全。- 70℃保存或干冰运输。注:Trizol处理的标本冷藏(4℃)运输,短期(5天以内)亦可。 注: 1、上海市内细胞样品也可以直接常温运送,运送时在培养瓶中装满培养液并以封口膜封口,然而某些实验条件中包含时间限制,建议以Trizol处理。 2、所使用的1.5 ml冻存管或离心管、枪头等必须高温灭菌,装好样品后管口需要以封口膜封好。 3、如需干冰,快递运输所用干冰量至少为8公斤,且运输用泡沫箱需用封箱带密封。

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