链脲佐菌素STZ诱导I型糖尿病

链脲佐菌素STZ诱导I型糖尿病
链脲佐菌素STZ诱导I型糖尿病

小剂量多次链脲佐菌素腹腔注射诱导1型糖尿病小鼠模型及模型鉴定

摘要:目的考察对C57BL/6J小剂量多次链脲佐菌素腹腔注射诱导1型糖尿病模型的成模率、

模型鉴定及稳定性。方法雄性C57BL/6J小鼠随机分为正常对照组、链脲佐菌素50mg/kg多次

给药组,考察多次给药后链脲佐菌素对小鼠血糖、血清胰岛素、IL-10、IFN-γ、胰腺组织的影响。

结果50mg/kg多次给药诱导C57BL/6J小鼠成模率为83.64%,空腹血糖值显著升高(P<0.01),

血清胰岛素和IL-10值明显下降(P<0.01),血清IFN-γ含量明显增加(P<0.01),胰腺组织中胰岛数

目显著减少,胰岛周围及胰岛内出现胰岛炎。结论小剂量(50mg/kg)多次链脲佐菌素腹腔注射

C57BL/6J可诱导稳定可靠的1型糖尿病小鼠模型。

关键词:链脲佐菌素;1型糖尿病模型;腹腔注射;小剂量多次

Multiple low dose intraperitoneal injection of streptozotocin-induced type 1 diabetes mice

and model identification

Abstract:Objective To investigate the molded rate of type 1 diabetes and model stability of C57BL/6J

induced by intraperitoneal injection of multiple low dose strptozotocin. Method Male C57BL/6J were

randomly divided into normal control group and streptozotozin 50mg/kg dose group, blood glucose,

serum insulin, IL-10 and IFN-γ were measured after repeated administration of streptozotocin. Results

The molded rate of multiple 50mg/kg dose group was 83.64%, the fasting blood glucose serum IFN-γ

level were significantly higher than the normal group while the serum insulin and IL-10 values

decreased significantly (P<0.01). The number of islets of pancreatic tissue was significant reduction

and insulitis occurs surrounding the islets. Conclusion Multiple low dose (50mg/kg) intraperitoneal

injection of streptozotocin in C57BL/6J can induce stable mouse model of type 1 diabetes.

Key words: streptozotocin; type 1 diabetes model; intraperitoneal injection; multiple low dose

胰岛素依赖型糖尿病又名1型糖尿病,是由于机体自身反应性免疫应答攻击胰岛β细胞,使其遭破坏、功能缺失,从而导致胰岛素绝对缺乏所引起的糖尿病。由于β细胞具有产生胰岛素和调节血糖的功能,β细胞群的毁坏最终导致了血糖的失调和高糖血症的发生。这种疾病的发生通常被认为是由于遗传易感性以及免疫系统对环境的免疫应反应答亢进而引起。因此,可以说1型糖尿病是由遗传和环境因素相互作用而引起的一种代谢异常综合征。胰岛素依赖型糖尿病已成为危害青少年健康最主要的慢性病之一,其治疗仍然是全球医疗的棘手问题。糖尿病带来的危害,几乎都来自它的并发症。血糖控制良好与否与并发症密切相关,因此治疗目标是达到最佳血糖控制,以延缓或防止并发症。[1]。建立可靠的动物模型是治疗1型糖尿病的必备条件。目前诱导1型糖尿病模型的方法众多,如化学诱导法、T细胞介

导法等,其中化学诱导法由于简单易操作得到较为广泛的应用。链脲佐菌素(STZ)是诱导糖尿病动物模型的最常用药物之一[2],链脲佐菌素即2-甲基-2-(3-亚硝基脲)-D-吡喃糖,结构类似于N-乙酰葡糖糖胺,最初是作为抗生素和抗肿瘤药物从细菌中分离得到的,生物半衰期为5-15分钟,STZ诱导1型糖尿病模型分为两种方法:一次大剂量腹腔注射和多次小剂量腹腔注射,一次大剂量造模短时间内造成大量胰岛β细胞破坏往往使动物容易死亡,而应用小剂量多次腹腔注射STZ造成小批量持续性的胰岛β细胞损坏,这种渐进的方式使动物模型易发生胰岛炎症,最终导致胰岛素分泌绝对不足和高血糖的发病过程与人类1型糖尿病十分相似[3, 4]。目前研究认为GlcNAcase[5]、多聚(ADP-核糖)转移酶(PARP)[6]、K ATP通道[7]、活性氧(ROS)[8, 9]、iNOS[10]等可能与STZ对β细胞的毒性作用有关。不同品系的小鼠对STZ的敏感性是不同的,C57BL/6小鼠是近交系小鼠,因其实验结果精度高、可比性好以及应激反应均一等优点收到较多应用[11, 12]。雄性小鼠比雌性小鼠更倾向于被STZ诱导,产生细胞毒性[13]。本研究考察了50mg/kg剂量的STZ对C57BL/6J多次腹腔注射后诱导的1型糖尿病小鼠血糖、成模率和模型稳定性,探讨STZ对小鼠血清胰岛素、细胞因子及胰岛炎症的影响。

1材料与方法

1.1材料

1.1.1实验动物100只4周龄C57BL/6J小鼠,雄性,体重17±3g,购自扬州大学比较医

学中心,许可证号:SCXR(苏)2012-0004;

1.1.2主要试剂链脲佐菌素(STZ,南京百世金进口分装),小鼠胰岛素ELISA试剂盒、小

鼠IL-10 ELISA试剂盒、小鼠IFN-γELISA试剂盒均购自于南京百世金生物技术有限公司;

1.1.3主要仪器博仕珑血糖仪,博仕珑血糖试纸(台湾厚美德生物科技有限公司),Bio-Rad

550型酶标仪(美国Bio-Rad公司)。

1.2方法

1.2.1STZ造模

100只雄性C57BL/6J小鼠适应性喂养2周,随机分为2组,造模组90只,正常对照组10只。正常对照组腹腔注射柠檬酸钠缓冲溶液(0.1mol/L新鲜柠檬酸钠缓冲溶液,pH 4.5)0.1mL/只,模型组腹腔注射同等体积STZ-柠檬酸钠缓冲溶液,剂量为50mg/kg,每日1次,连续5天。造模前,小鼠禁食不禁水12h。

1.2.2造模前后小鼠血糖变化

在STZ注射前,分别用血糖仪测定正常对照组和模型组小鼠的血糖,并于造模后第1、2、3、4、7、13周测定对照组和模型组小鼠的血糖,观察STZ注射前后小鼠血糖的变化,以末次注射STZ第7天和14天,空腹血糖(禁食8h)≥11.1mmol/L视为模型成功。

1.2.3血清胰岛素、IL-10、IFN-γ含量的测定

分别选取造模前正常小鼠以及造模后第2、4、13周空腹血糖值≥11.1mol/L 的小鼠眼镜脉丛取血,室温静置待血凝固后,4000r/min 离心10min 后分离血清,-70℃冻存。血清胰岛素、IL-10、IFN-γ含量的测定方法均为酶联免疫分析法(ELISA),操作过程按照试剂盒说明书进行。

1.2.4 胰腺组织病理学分析

采用常规HE 染色法观察胰岛的组织学改变,选择正常对照组小鼠以及造模后空腹血糖≥11.1mmol/L 且持续2周的模型组小鼠,脱颈法处死送于南京百世金生物技术有限公司做H&E 染色分析,主要步骤为去胰腺组织固定于10%福尔马林溶液内,脱水,石蜡包埋,制片(4μm 厚),HE 染色,光学显微镜观察胰岛:0级,胰岛完整,胰岛周围及内部均为炎细胞浸润;1级,胰岛外周有轻度炎细胞浸润;2级,以岛内有炎细胞浸润,面积<50%;3级,胰岛岛内炎细胞浸润,面积>50%;4级,炎细胞完全浸润胰岛,胰岛萎缩、坏死、消失。

1.3 统计学分析

实验数据均以平均值±SD 值表示,使用SPSS 13.0进行统计学分析,对实验结果进行t 检验,生存率的比较用卡方检验,P <0.05为有统计学意义,实验结果用origin 8.0作图。 2 结果

2.1 造模后小鼠血糖的变化

与正常小鼠相比,造模后的小鼠出现多饮、多食、多尿等糖尿病病症,空腹血糖值明显升高,与正常组比较具有极显著性差异(P <0.01),同时模型组小鼠的空腹血糖能够维持高血糖水平(图1)。以末次注射STZ 后,连续两周空腹血糖≥11.1mmol/L 为模型成功,即在注射STZ 完毕后第2周,有76只小鼠血糖≥11.1,死亡12只,模型成功率为83.64%,死亡率为13.33%。

血糖(m m o l /L )注射STZ后时间(周))

图1 造模前后小鼠血糖变化

Fig.1 Effect of STZ on blood glucose level of mice

2.2 造模前后血清胰岛素、IL-10和IFN-γ的变化

选取造模后第2、13周成模小鼠和造模前正常小鼠血清测定血清胰岛素、IL-10和IFN-γ含量。与造模前正常小鼠相比,刚成模小鼠血清胰岛素水平显著降低(P <0.01),直到造模后第13周,胰岛素水平能够维持在较低水平,与正常小鼠具有极显著性差异(P <0.01)(如图2所示)。与造模前正常小鼠相比,血清IL-10的水平显著降低,直到造模后13周时,IL-10一直在较低水平(P <0.01)(如图3所示)。与正常小鼠相比,血清IFN-γ的水平显著升高,到造模后13周,血清IFN-γ一直在较高水平(P <0.05)。 12

14

161820

22

**13

2

血清胰岛素(m )U /L 注射STZ后时间(周))0**

图2 造模前后血清胰岛素变化

Fig.2 Effect of STZ on blood insulin of mice

**P <0.01,*P <0.05, compared with 0 week

400

600

800

13

2

注射STZ后时间(周)**I L -10(p g /m L )**

图3 造模前后血清IL-10变化

Fig.3 Effect of STZ on blood IL-10 of mice

**P <0.01,*P <0.05, compared with 0 week 600

800

100012001400

132

*

I F N -γ(n g /L )注射STZ后时间(周)*0

图4 造模前后血清IFN-γ变化

Fig.4 Effect of STZ on blood IFN-γ of mice

**P <0.01,*P <0.05, compared with 0 week

2.3 胰岛病理切片分析

图5A 为缓冲液组,HE 染色细胞着色浅、胰岛排列呈团索状,边缘规则,数目多。胰岛细胞无坏死,胰岛周围及胰岛内无炎细胞浸润。低倍镜下每视野胰岛数目较多,平均 5.14个。与缓冲液组相比,图5B 为模型组小鼠,低倍镜每视野下胰岛数目明显减少,平均胰岛数目为1.05个,胰岛周围以及胰岛内出现炎症,少数为2级。

图5 正常小鼠及模型小鼠胰腺HE染色

Fig.5 Photomicrographs of representative islets from pancreas tissue

A:control group B:model group

3讨论

本研究考察了小剂量多次腹腔注射链脲佐菌素诱导1型糖尿病模型,结果显示,STZ连

续多次小剂量注射后,小鼠出现多饮、多食、多尿等典型糖尿病“三多一少”的症状,胰腺病理切片显示模型组小鼠胰腺组织内出现炎性细胞浸润,血糖值升高。同时从小鼠血清胰岛素水平和细胞因子水平对模型成功与否进行鉴定,结果表明血清胰岛素水平显著下降,IL-10水平显著降低,IFN-γ水平显著升高,说明Th2介导的免疫应答下降,Th1介导的免疫应答升高,Th1/Th2失衡,造成胰岛β细胞损伤,导致1型糖尿病的发生,这符合人类1型糖尿

病的发病机制[3, 4],说明成功诱导了1型糖尿病动物模型。

参考文献:

[1] Chang C, Chen Y-C, Chen H-M, Yang N-S, Yang W-C. Natural cures for type 1 diabetes: a review of phytochemicals, biological actions, and clinical potential. Current medicinal chemistry. 2013;20:899-907.

[2] Sun N, Yang G, Zhao H, Savelkoul HF, An L. Multidose Streptozotocin Induction of Diabetes in BALB/c Mice Induces a Dominant Oxidative Macrophage and a Conversion of T H 1 to T H 2 Phenotypes During Disease Progression. Mediators of inflammation. 2005;2005:202-9.

[3] Kolb-Bachofen V, Epstein S, Kiesel U, Kolb H. Low-dose streptozocin-induced diabetes in mice: electron microscopy reveals single-cell insulitis before diabetes onset. Diabetes. 1988;37:21-7.

[4] Djordjevic P, Lalic N, Bumbasirevic V, Jotic A, Paunovic I, Colovic R, et al. Human fetal islet transplantation in type 1 diabetics: comparison of immunological effects between multiple implantation regimens. Transplantation proceedings: Elsevier; 2005. p. 4440-5.

[5] Konrad R, Mikolaenko I, Tolar J, Liu K, Kudlow J. The potential mechanism of the diabetogenic action of streptozotocin: inhibition of pancreatic β-cell O-GlcNAc-selective N-acetyl-β-D-glucosaminidase. Biochem J. 2001;356:31-41.

[6] Masutani M, Suzuki H, Kamada N, Watanabe M, Ueda O, Nozaki T, et al. Poly (ADP-ribose) polymerase gene disruption conferred mice resistant to streptozotocin-induced diabetes. Proceedings of the National Academy of Sciences. 1999;96:2301-4.

[7] Tsuura Y, Ishida H, Okamoto Y, Kato S, Sakamoto K, Horie M, et al. Glucose sensitivity of ATP-sensitive K+ channels is impaired in β-cells of the GK rat: a new genetic model of NIDDM. Diabetes. 1993;42:1446-53.

[8] Prasad K, Mantha S, Muir A, Westcott N. Protective effect of secoisolariciresinol diglucoside against streptozotocin-induced diabetes and its mechanism. Molecular and cellular biochemistry. 2000;206:141-50.

[9] Chen H, Carlson EC, Pellet L, Moritz J T, Epstein PN. Overexpression of metallothionein in pancreatic β-cells reduces streptozotocin-induced DNA damage and diabetes. Diabetes. 2001;50:2040-6.

[10] Flodstr?m M, Tyrberg B, Eizirik DL, Sandler S. Reduced sensitivity of inducible nitric oxide synthase-deficient mice to multiple low-dose streptozotocin-induced diabetes. Diabetes. 1999;48:706-13.

[11] Like AA, Rossini AA. Streptozotocin-induced pancreatic insulitis: new model of diabetes mellitus. Science. 1976;193:415-7.

[12] Rossini AA, Appel MC, Williams RM, Like AA. Genetic influence of the streptozotocin-induced insulitis and hyperglycemia. Diabetes. 1977;26:916-20.

[13] Kolb H. Mouse models of insulin dependent diabetes: Low‐dose streptozocin‐induced diabetes and nonobese diabetic (NOD) mice. Diabetes/metabolism reviews. 1987;3:751-78.

STZ诱导的小鼠糖尿病模型

STZ诱导的小鼠糖尿病模型 糖尿病(diabetes mellitus,DM)是胰岛素抵抗和胰岛素缺乏导致的以高血糖为主要特征表现的代谢紊乱综合征,易发生心、脑、肾等并发症。糖尿病状态下血浆游离脂肪酸异常增高,心肌耗能增加,葡萄糖代谢下降,脂肪酸代谢增加,心脏内过量的脂肪酸摄取和氧化导致心肌内脂肪代谢产物的积聚引起心脏脂质毒性,并在此基袖上出现氧化应激,导致细胞调亡、内皮功能紊乱、炎症反应增加,同时出现心肌的损伤,心肌的结构和功能均发生改变,最后导致糖尿病患者的死亡。 1.实验动物 SPF级Balb/C小鼠,雄性,周龄为4w~6w,体重为20g~22g。 2.实验分组: 实验分六组:正常对照组、模型组、阳性药组、受试药组三个剂量组,每组15只动物。 3.模型周期 24W 4.主要试剂及配制方法 柠檬酸、柠檬酸三钠、链脲佐霉素(Streptozocin,STZ) 1.柠檬酸钠缓冲液配制:将 2.10g柠檬酸加入双蒸水100ml配成柠檬酸母液,称为A液;将2.94g柠檬酸三钠加入双蒸水100ml配成柠檬酸钠母液,称为B液;将A、B液按1:1.32比例混合,pH计测定pH值,调定溶液pH=4.0,即是所需配制STZ的0.1mol/L柠檬酸钠缓冲液。 2.STZ溶液的配制:将STZ溶于0.1mol/L柠檬酸钠缓冲液中,新鲜配制成10mg/mL浓度的STZ溶液,并用0.22μm滤菌器过滤除菌。注意避光配制,现用现配。 5.建模方法 1.术前12h禁食 2.模型组小鼠按照120mg/kg剂量的STZ进行腹腔注射,对照组给予给予相同剂量的柠檬酸钠缓冲液。 3.STZ注射3d后,测空腹血糖,选择血糖高于16.7mmol/L纳入正式实验。

链脲佐菌素STZ诱导I型糖尿病

小剂量多次链脲佐菌素腹腔注射诱导1型糖尿病小鼠模型及模型鉴定 摘要:目的考察对C57BL/6J小剂量多次链脲佐菌素腹腔注射诱导1型糖尿病模型的成模率、 模型鉴定及稳定性。方法雄性C57BL/6J小鼠随机分为正常对照组、链脲佐菌素50mg/kg多次 给药组,考察多次给药后链脲佐菌素对小鼠血糖、血清胰岛素、IL-10、IFN-γ、胰腺组织的影响。 结果50mg/kg多次给药诱导C57BL/6J小鼠成模率为83.64%,空腹血糖值显著升高(P<0.01), 血清胰岛素和IL-10值明显下降(P<0.01),血清IFN-γ含量明显增加(P<0.01),胰腺组织中胰岛数 目显著减少,胰岛周围及胰岛内出现胰岛炎。结论小剂量(50mg/kg)多次链脲佐菌素腹腔注射 C57BL/6J可诱导稳定可靠的1型糖尿病小鼠模型。 关键词:链脲佐菌素;1型糖尿病模型;腹腔注射;小剂量多次 Multiple low dose intraperitoneal injection of streptozotocin-induced type 1 diabetes mice and model identification Abstract:Objective To investigate the molded rate of type 1 diabetes and model stability of C57BL/6J induced by intraperitoneal injection of multiple low dose strptozotocin. Method Male C57BL/6J were randomly divided into normal control group and streptozotozin 50mg/kg dose group, blood glucose, serum insulin, IL-10 and IFN-γ were measured after repeated administration of streptozotocin. Results The molded rate of multiple 50mg/kg dose group was 83.64%, the fasting blood glucose serum IFN-γ level were significantly higher than the normal group while the serum insulin and IL-10 values decreased significantly (P<0.01). The number of islets of pancreatic tissue was significant reduction and insulitis occurs surrounding the islets. Conclusion Multiple low dose (50mg/kg) intraperitoneal injection of streptozotocin in C57BL/6J can induce stable mouse model of type 1 diabetes. Key words: streptozotocin; type 1 diabetes model; intraperitoneal injection; multiple low dose 胰岛素依赖型糖尿病又名1型糖尿病,是由于机体自身反应性免疫应答攻击胰岛β细胞,使其遭破坏、功能缺失,从而导致胰岛素绝对缺乏所引起的糖尿病。由于β细胞具有产生胰岛素和调节血糖的功能,β细胞群的毁坏最终导致了血糖的失调和高糖血症的发生。这种疾病的发生通常被认为是由于遗传易感性以及免疫系统对环境的免疫应反应答亢进而引起。因此,可以说1型糖尿病是由遗传和环境因素相互作用而引起的一种代谢异常综合征。胰岛素依赖型糖尿病已成为危害青少年健康最主要的慢性病之一,其治疗仍然是全球医疗的棘手问题。糖尿病带来的危害,几乎都来自它的并发症。血糖控制良好与否与并发症密切相关,因此治疗目标是达到最佳血糖控制,以延缓或防止并发症。[1]。建立可靠的动物模型是治疗1型糖尿病的必备条件。目前诱导1型糖尿病模型的方法众多,如化学诱导法、T细胞介

STZ糖尿病模型(来自丁香园)

造模方法 (1)链脲佐菌素(Streptozotocin)诱导大鼠糖尿病模型方法 将大鼠禁食12h,按60mg/kg体重腹腔注射STZ,每日1次,连续2次,成功制备Ⅰ型糖尿病大鼠模型,并且该模型具有高血糖、体重减轻、多饮多食多尿的特点,与临床Ⅰ型糖尿病吻合;但在此实验中,若造模组只腹腔注射STZ一次,并给予高热量饲料饲养12周,则可制备Ⅱ型糖尿病动物模型,且按该法制备出的模型具有超重、糖耐量减低、血脂升高、血清胰岛素升高及胰岛素受体结合力降低伴胰岛素抵抗的特点,类似于Ⅱ型糖尿病病人的临床特征。Ⅰ型糖尿病与Ⅱ型糖尿病动物模型的制备可能与STZ注射的剂量有关系:大剂量(常为120mg/kg)注射时,由于直接引起胰岛β细胞的广泛破坏,可造成Ⅰ型糖尿病模型;而注射较少量STZ时,由于只是破坏一部分胰岛β细胞的功能,造成外周组织对胰岛素不敏感,同时给予高热量饲料喂养,两者结合便诱导出病理、生理改变都接近于人类Ⅱ型糖尿病的动物模型。 https://www.360docs.net/doc/4816267058.html,/bbs/actions/archive/post/5636508_0.html (2)你还是采用腹腔的比较好!按65或是70给都可以。最好是给STZ后7天开始测定血糖分组为好,这样血糖已经稳定了! 我给我的一个朋友用ALLOXAN,尾静脉。大鼠,50mg/kg,全都死亡了! 给STZ前有的说禁食,有的说不用,但还是禁的好些,给STZ后,也不要立即给予食物,1小时后再给。还有腹腔注射的手法要正确!!给STZ要快,最好在冰水中冷却溶液! https://www.360docs.net/doc/4816267058.html,/bbs/actions/archive/post/672237_0.html (3)链脲霉素(STZ)诱导的高血糖动物模型 STZ水溶液不稳定,对小鼠的生物半衰期仅有5min左右,需要快速静脉注射。造型剂量犬50mg/kg,静注,可引起糖尿病,动物死亡率较高;如15mg/kg,连续3天也可。大鼠60-80mg/kg,iv或ip,小鼠100-200mg/kg,iv或ip。STZ诱导的高血糖动物模型一般不自发缓解。需要注意的是,给药时常把STZ溶解于0.1mol/L的柠檬酸缓冲液中,临用前配制。注射后72h血糖可稳定升高,有三多症状。血糖在11.1mmol/L以上可作为成功模型选用。造型时STZ应新鲜配制,分组时各组动物的平均血糖值相差不宜大于20mg/dl,血糖值升高不符合要求的动物应剔除。 https://www.360docs.net/doc/4816267058.html,/bbs/actions/archive/post/2191173_0.html (4)STZ是一种广谱抗癌药,曾用来治疗巨胰岛瘤。能破坏胰岛B细胞,大剂量可诱导1型糖尿病,小剂量反复注射可致2型糖尿病。 STZ造模: 大鼠(Sprague Dawley 或Wistar)一般是i.p. 50~60mg/kg,剂量太大死亡率高,如果打到160mg/kg以上基本上死光。 小鼠一般是i.p. 80mg/kg以上,可打到120mg/kg也挺好的。可耐受到160mg/kg左右,状态尚可。这是常见的KM种小鼠所用剂量。如果用C57BL/6J近交系小鼠(被毛褐色),据文献报道用30~40mg/kg就可以了,因其对STZ很敏感。 关于糖尿病模型成功的标准:文献报道有以造模五天或一周后血糖值高于11.1mmol/L (200mg/dL)或16.7mmol/L(300mg/dL)为标准的。 正常KM小鼠血糖值:常见为85~90mg/dL,可在60~170之间波动; 正常大鼠血糖值:常见为70~80mg/dL,可在50~135之间波动。 据上,我个人认为以血糖高于16.7mmol/L(300mg/dL)为标准较好。 关于禁食:

环孢菌素A对链脲佐菌素诱导的糖尿病大鼠肾脏组织中MIP-1α mRNA表达的影响

[ 文章编号] 1671-587Ⅹ(2012)04-0683-04[收稿日期] 2012-03- 06[基金项目] 天津市卫生局科技基金资助课题(2010ky 04)[作者简介] 穆 媛(1975-) ,女,天津市人,主治医师,主要从事内分泌及代谢性疾病研究。[通信作者] 穆 媛(Tel:022-26183637,E-mail:myuany@126.com)环孢菌素A对链脲佐菌素诱导的糖尿病大鼠肾脏组织中 MIP-1αm RNA表达的影响穆 媛,庄映辉 (天津市第四中心医院内分泌科,天津300140 )[摘 要] 目的:探讨环孢菌素A(CsA)对链脲佐菌素(STZ)诱导的糖尿病大鼠肾脏巨噬细胞炎性蛋白-1α (MIP-1α)mRNA表达的影响,阐明其相关机制。方法:雄性SD大鼠(Sprague-Dawley)按50mg·kg-1尾静脉 注射STZ诱导建立糖尿病大鼠模型。按随机原则分为正常对照组(CON组)、糖尿病模型组(DM组) 、胰岛素干预8周组(AMI组)及CsA 1mg·kg-1·d-1干预组(AML组)、CsA 4mg·kg-1·d-1干预组( AMM组)和CsA8mg·kg-1·d-1干预组( AMH组),每组10只。采用RT-PCR法检测MIP-1α的表达水平;比较CsA各干预组MASSON阳性染色面积和光密度值。结果:与CON组比较,DM组大鼠淋巴细胞MIP-1αmR NA表达水平明显升高(P<0.05)。CsA各干预组与DM组比较,MASSON阳性染色面积和光密度值均明显降低,差异有统计学 意义(P<0.01)。结论:糖尿病肾脏组织MIP-1αmR NA表达增加,肾脏纤维化明显。CsA干预可以使肾脏MIP-1αmR NA表达降低,减轻肾脏纤维化进展。[关键词] 糖尿病肾病;环孢菌素A;巨噬细胞炎性蛋白-1α ;肾纤维化[中图分类号] R-332;R587.1 [文献标志码] A Influence of cyclosporine A in exp ression of MIP-1αmRNAin kidney  tissue of STZ-induced diabetic ratsMU Yuan,ZHUANG Ying -hui(Department of Endocrinology,Fourth Central Hospital,Tianj in 300140,China)Abstract:Objective To study  the influence of cyclosporin A(CsA)in the expression of macrophage inflammatoryprotein-1α(MIP-1α)mRNA in kidney  tissue of streptozotocin(STZ)-induced diabetic rats,and to explore therelated mechanism.Methods Male SD rats were used to set up diabetes models with 50mg·kg-1 body  weight bytail vein injection of STZ.The diabetic rats were randomly  divided into 6groups:CON(control group),DM(diabetic model),AMI(administrated with insulin),AML(administrated with CsA 1mg·kg-1·d-1) ,AMM(administrated with CsA 4mg·kg-1·d-1),AMH(administrated with CsA 8mg·kg-1·d-1)group s(n=10).The expression levels were detected by RT-PCR.The MASSON positive staining  areas and optical densitiesbetween various CsA groups were compared.Results Compared with CON group,the exp ression level of MIP-1αmRNA of rat lympthocyte in DM group was significantly  increased(P<0.05).Compared with DM group,theMASSON positive staining areas and optical density values in CsA groups were significantly  decreased(P<0.05).Conclusion The MIP-1αmRNA expression in kidney  tissue of diabetic rats is increased and renal fibrosis isobvious.CsA intervention can decrease the MIP-1mRNA expression in kidney  tissue and reduce renal fibrosis.Key  words:diabetic nephropathy;cyclosporine A;macrophage inflammatory protein-1α;renal fibrosis3 86第38卷 第4期 2012年7月吉 林 大 学 学 报 (医 学 版)Journal of Jilin University(Medicine Edition)Vol.38No.4 Jul.2012

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