感受态细胞制备及各种感受态的特点

感受态细胞制备及各种感受态的特点
感受态细胞制备及各种感受态的特点

感受态细胞制备

制备感受态常用得方法就是电击法与CaCl2制备法,以下介绍CaCl2制备法:

1、可以从-80℃冰柜中,取出一支冻存菌株,于事先照过紫外得超净台中,用无菌得接种环轻轻蘸取菌种后,在无抗平板(由于Rocetta含有氯霉素抗性,需要涂布在氯霉素抗性得平板,后面得都就是如此)上划线,并将菌种迅速放回-80℃保存,在划线板上做好相应标记,于37℃培养过夜。

2、从37℃培养过夜得新鲜平板上挑取一个单克隆,接种于2mlEP管中,37℃,220rpm震荡培养约6个小时至对数生长中后期;将该菌悬液以1:100得比例接种于50ml LB液体培养基(2瓶)中,37℃振荡培养2、5小时至OD600=0。5。

注意:接种比例不得大于1:10。

3、在无菌条件下将细菌转移到一个无菌、预冷得离心管(50ml)中,在冰上放置5~10min; 注意:划板、接种为了防止意外发生最好多划一块平板与多接一根试管,划板、接种、转接均要严格按照无菌操作。

4、4℃5000g离心5分钟。用预冷得去离子水洗涤沉淀,4℃ 5000g离心5分钟;

Note:此步主要就是为了洗去培养基中得盐等

5、沉淀加入2ml预冷得0、05mol/L CaCl2—15%甘油混合溶液,轻吹散,冰浴5分钟,4℃5000g离心5分钟;

6、沉淀加入2ml预冷得0.05mol/L CaCl2—15%甘油混合溶液,轻吹散,即成为感受态细胞悬液。分装成50~100μl得小份,贮存于-70℃可保存半年。

含15%甘油得0.05mol/L CaCl2制备方法:

称取0。28g CaCl2(无水,分析纯),溶于50ml重蒸水中,加入15ml甘油,定容至100ml,高压灭菌。

感受态细胞得特征

感受态:通过特殊处理使细胞处于能够吸收外源DNA得状态。感受态细胞得特征:

(1)细胞表面暴露出一些可接受外来DNA得位点(以溶菌酶处理,可促使受体细胞得接受位点充分暴露)。(2)细胞膜通透性增加(用钙离子处理,可使膜通透性增加,使DNA直接穿过质膜进入细胞)。(3)受体细胞得修饰酶活性最高,而限制酶活性最低,使转入得DNA分子不易被切除或破坏、

实验室常用得感受态细胞

1。DH5α菌株?克隆菌株:DH5α就是一种常用于质粒克隆与高拷贝质粒得稳定复制得菌株。

E、coli DH5α在使用pUC系列质粒载体转化时,其φ80lacZΔM15基因产物可与载体编码得β—半乳糖苷酶氨基端实现α-互补,可用于蓝白斑筛选鉴别重组菌株、RecA1与end A1得突变有利于克隆DNA得稳定与高纯度质粒DNA得提取。

基因型:F-、φ80dlacZΔM15、Δ(lacZYA-argF)U169、deoR、recA1、endA1、hs dR17(rk—,mk+)、phoA、supE44、λ—、thi—1、gyrA96、relA1

2。TOP10菌株?克隆菌株:该菌株适用于高效得DNA克隆与质粒扩增,能保证高拷贝质粒得稳定遗传。?基因型:F-、mcrAΔ(mrr-hsdRMS—mcrBC)、φ80 、lacZΔM15、△l acⅩ74、recA1、araΔ139Δ(ara—leu)7697、galU 、galK 、rps、(S trr) endA1、nupG

3。BL21(DE3) 菌株:

蛋白表达菌株:该菌株用于高效表达克隆于含有噬菌体T7启动子得表达载体(如pET系列)得基因。该菌株用于T7 RNA聚合酶为表达系统得高效外源基因得蛋白表达宿主,T7噬菌体RNA聚合酶基因得表达受控于λ噬菌体DE3区得acUV5启动子,该区整合于BL21得染色体上。该菌株适合于非毒性蛋白得表达、

基因型:F-、ompT、hsdS(rB-mB—)、gal、dcm(DE3)

4。BL21(DE3) pLysS菌株?蛋白表达菌株:该菌株含有质粒pLysS,因此具有氯霉素抗性。PLysS含有表达T7溶菌酶得基因,能够降低目得基因得背景表达水平,但不干扰目得蛋白得表达。该菌适合表达毒性蛋白与非毒性蛋白。

基因型:F—、ompT、hsdS(r B-m B—)、gal、dcm(DE3)、pLysS、Camr

5、Rocetta感受态特征:

蛋白表达菌株

Rosetta系列菌株来源于BL21系列宿主菌,该系列菌株含有原本在大肠杆菌中稀少得真核细胞密码子,增加了真核细胞得蛋白表达水平。

(1)Rocetta (DE3)

该菌株通过一个相容性氯霉素抗性质粒补充大肠杆菌缺乏得6种稀有密码子(AUA、AGG、AGA、CUA、CCC、GGA)对应得tRNA,这样Rocetta菌株提供了“万能”得翻译,从而避免因大肠杆菌密码子使用频率导致得表达限制,提高外源基因尤其就是真核基因在原核系统中得表达水平。tRNA基因由它们得天然启动子驱动。

基因型: F- 、ompT、hsdSB (r B -m B - )、gal、dcm、lacY1(DE3)、pRARE(argU,argW,

ileX,glyT,leuW,proL)(Cmr )

补充:稀有密码子对蛋白表达得影响:数氨基酸都有一个以上得密码子,对E.coli密码子应用情况分析表明一些密码子很少使用,尤其就是精氨酸密码子AGA, AGG , CGG ,CGA;异亮氨酸得密码子AUA;亮氨酸得密码子CUA与甘氨酸得密码子GGA与脯氨酸得密码子CCC很少被用到。目得基因中含有过多得稀有密码子被认为就是低表达水平与产生不完全产物得一个原因、当在氨基端附近出现多个稀有密码子得时候,情况更为严重,许多研究表明,精氨酸得密码子AGA与AGG得高频出现可能大大影响蛋白得产量、当这些密码子出现在N-端附近时候,这种影响将达到最大。?多个实验室报道,在宿主菌中增加同类tRNA时那些含有稀有密码子基因得蛋白产量将大大提高。RosettaTM菌株可以增加精氨酸稀有密码子AGG 与AGA,异亮氨酸得密码子AUA;亮氨酸得密码子CUA与甘氨酸得密码子GGA与脯氨酸得密码子CCC。因此,很适合用于表达那些含E.coli稀有密码子基因得目得蛋白、

(引用自网址)

(2)Rosetta 2 (DE3) pLySs来源于Rosetta(DE3),本菌株含有pRARE2质粒,除了能够提供原Rosetta(DE3)宿主菌含有AUA, AGG,AGA, CUA, CCC, 与GGA六个稀有密码子得tRNA外,还提供了第七个稀有密码子CGG得tRNA、同时,pRARE2质粒具有氯霉素抗性。Rosetta2(DE3)pLySs载体通过提供稀有密码子,使得该宿主菌相对于其她大肠杆菌,能够提供更加“通用”得蛋白质表达,从而提升目得蛋白表达水平。DE3就是溶源性得λDE3,所以带有T7RNA聚合酶得染色体拷贝、该菌株适用于pET系列载体,及其她T7启动子系列载体。含有pLSs质粒,pLySs质粒能够产生T7溶菌酶,可以有效降低目得基因得基础表达水平。pLySs质粒使得该菌株具有氯霉素抗性。pLySs质粒得起始复制位点就是p15 Origin,这使得该质粒能够与pUC-及pBR322-衍生得质粒互相共存。

转化

1、转化得原理:溶液中得Ca离子与细菌细胞膜结合,在低温下形成液晶结构,在42℃,90

s热激下,这种液晶结构收缩,将细胞膜扯开孔道,使DNA进入细菌细胞中、

2、转化得步骤:

(1)取感受态细胞置于冰浴中,如需分装可将刚融化得细胞悬液分装到无菌预冷得离心管中,置于冰浴中、

(2)向感受态细胞中加入目得DNA(50ul感受态细胞能够被1ng超螺旋DNA所饱与),轻弹混匀,在冰浴中静置30min;

注意:一次转化感受态细胞得建议用量为50ul,可以根据实际情况分装使用,应注意所用DNA体积不能超过感受态细胞悬液体积

得十分之一,也有说法就是不能超过5%。不能加入太多DNA,会影响转化效率,体积不能超过10ul,所以连接时做10ul连接体系可用一半做转化,剩下得放在4°C、

(3)将离心管置于42度水浴中放置90s,然后快速转移到冰浴中,使细胞冷却2—3min(一般2min),该过程不要摇动离心管;

(4)向每个离心管中加入500ul无菌得LB培养基(不含抗生素),混匀后置于37度摇床震荡培养45min(150rpm),目得就是使质粒上相关得抗性标记基因表达,使菌体复苏。

(5)将离心管内容物混匀,可吸取适量(可吸取200-300ul,也可据情况而定)转化产物涂布平板,而如果预计得克隆较少,可通过离心(4000rpm,2min)后,吸掉部分上清,悬浮菌体后将其涂布于一个平板中。

注意:涂布剩余得菌液可置于4度保存,如果次日得转化菌落过少可以将剩下得菌液再涂布新得培养板。

2、转化得注意事项:

(1)感受态细胞需放置于-70°C,不可冻融与放置时间过长,以避免降低感受态细胞得转化效率;

(2)进行转化操作时,应根据相应温度与无菌操作得要求进行,尽量在超净台操作;

(3)为防止转化实验不成功,可以保存部分连接反应液,以重新转化,将损失降到最低、

感受态细胞的制备步骤和原理

实验目的 为了获得大量的质粒作为克隆载体,我们需要将购买来的质粒通过转化的方法导入细菌的细胞内。制备出感受态的细胞,我们就可以方便的将需克隆的质粒导入其中,使其繁殖,就能获得大量质粒。本次实验的目的就是增加质粒的数量。同时,我们能掌握大肠杆菌感受态细胞的制备及转化的基本原理和实验技术方法。 实验原理及过程 实验步骤 1挑取一个JM109单菌落于3ml LB(无抗生素)培养基中,37℃,180rpm培养过夜。 [让菌复苏,进入对数期的早中期。此时更容易制得感受态细胞。] 2取过夜培养物加入到40mL LB(无抗生素)培养基中,37℃250rpm大约小时。 [减少达到所需亮的均所需繁殖的世代数,以减少菌的变异。] 3取培养物置于40mL的灭菌离心管中,冰浴10min,4000rpm4℃离心 10min,弃上清。(将所有上清倒光,可以将离心管倒过来) [使细菌的生长停止,代谢减慢。因为这时已经没有培养基了,如果细菌仍有很高的代谢效率,则有大量细菌死亡。] 4菌体重悬于10mL100mmol/L冰冷CaCl2中,轻吹,4℃30min,4000rpm 离心5min弃上清。 [细菌处于0度,CaCl2低渗溶液中,菌细胞膨胀成球形,外源DNA形成抗DNA酶的羟基-钙磷酸盐混合物黏附于细胞表面(羟基来源于细胞壁上的糖,磷酸来源于DNA),经短时间420C热激处理,促进细胞吸收DNA复合物。(一

定要轻吹,这时细胞壁打开,十分脆弱)]5菌体重悬于1mL 100mmol/L冰冷的CaCl2中,轻吹,用于转化。 [除去所有的LB以及细胞破损后释放出来的细胞内含物。防止细胞分裂,以致大量细胞死亡。(一定要轻吹,这时细胞壁打开,十分脆弱)] 6取感受态细胞100uL,加入2uLpET-21a质粒,冰浴30 min受体菌:感受态细胞100uL,加入2 uL无菌双蒸水阴性对照:LCaCl2溶液100uL,加入2 uL阴性对照 [第一个阴性对照是为了验证LB中的抗生素有活性;第二个阴性对照是为了验证CaCl2溶液和pET-21a质粒未被污染。] [冰浴是为了降低细胞代谢率,防止细胞大量死亡。] 7热激42度,90s 【在低温处理后,热激,可以使细胞壁热胀冷缩,再低温,使细胞壁上黏附的质粒进入细胞体内。】 8冰浴2 min 9加入800 uL无抗生素的LB,37℃复苏1h 【用LB复苏细胞,使细胞恢复活力,从而使细胞中的质粒表达抗抗生素的基因,只有这样才能使转化成功的细菌在有抗生 素的LB平板上生长。】 10取100ul细胞直接在含50ug/mLCarbenicillin(羧苄西林)的LB培养基上铺平板,将平皿放置37 oC温箱30min至液体被吸收。倒置平皿37 oC培养过夜,出现菌落。 【这些菌落为转化成功的菌落,而对照组应该没有菌落。在目的菌落的旁边有可能出现卫星菌落,这是因为亩的菌落的抗性基因似的菌落周围的抗生素失效,长出了转化为成功的菌落。用羧苄西林因其对酸稳定、不易被细菌降解,所以可以降低卫星菌落的数量。

大肠杆菌感受态细胞的制备实验具体步骤及说明

大肠杆菌感受态细胞的制备实验具体步骤及详细说明 带有外源DNA 的重组质粒,在体外构建后,导入宿主细胞,随着细胞的大量复制、繁殖,才能够有机会获得纯的重组质粒DNA,该过程称之为转化过程。受体细胞经过一些特殊方法(如:CaCl2,RuCl 等化学试剂)的处理后,细胞膜的通透性发生变化,能容许外源DNA 的载体分子通过。 带有外源DNA 的重组质粒,在体外构建后,导入宿主细胞,随着细胞的大量复制、繁殖,才能够有机会获得纯的重组质粒DNA,该过程称之为转化过程。受体细胞经过一些特殊方法(如:CaCl2,RuCl 等化学试剂)的处理后,细胞膜的通透性发生变化,能容许外源DNA 的载体分子通过。 具体步骤 1、从37℃培养16-20 h的平板中挑取一个单菌落(直径2-3 mm),转到一个含有100 ml LB或SOB培养基的1L烧瓶中。于37℃剧烈振摇培养3 h。一般经验,1 OD600约含有大肠杆菌DH5α 109个/mL。 2、将细菌转移到一个无菌、一次性使用的、用冰预冷的50 ml聚丙烯管中,在冰上放置10 min,使培养物冷却至0℃。 3、于4℃用Sorvall GS3特头(或与之相当的转头)以4 100 r/min离心10 min,以回收细胞。 4、倒出培养液,将管倒置1 min以使最后的痕量培养液流尽。

5、每50 ml初始培养液用30 ml预冷的0.1 mol/LCaCl2-MgCl2溶液(80 mmol/L MgCl2,20 mmol/L CaCl2)重悬每份细胞沉淀。 6、于4℃用Sorvall GS3转头(或与之相当的转头)以41 00 r/min离心10 min,以回收细胞。 7、倒出培养液,将管倒置1 min以使最后的痕量培养液流尽。 8、每50 ml初始培养物用2 ml用冰预冷的0.1 mol/L CaCl2(或TFB)重悬每份细胞沉淀。 9、此时,可以用新鲜制备的感受态细胞直接做转化实验,也可以将细胞冻存于- 70℃。 注意事项 1. 为达到高效转化,活细胞数务必少于108个细胞/mL,对于大多散大脑杆菌来说,这相当于OD值为0.4左右。为保证细菌培养物的生长密度不致过高,可每隔15-20 min测定OD600值来监测,用监测的时间及OD值列一个图表,以便预测培养物的OD600值到0.4的时间,当OD600值达到0.35时,收获细菌培养物。 2. 在菌株与菌株之间,OD值与每毫升中活细胞散间的关系变化很大,因此有必要通过漶量特定脑杆菌的生长培养物在生长周期的不同时相的OD600值,并

高效制备感受态

在科研实验中,为了获得纯的重组质粒DNA,需要允许外源DNA分子进入的细胞。经过一些特殊方法(电击法、CaCl2法)等处理后,细胞膜的通透性发生了暂时性的改变,成为能允许外源DNA分子进入的细胞,即感受态细胞。 基本制备步骤 1.从37℃培养16-20 h的平板中挑取一个单菌落(直径2-3 mm),转到一个含有100 ml LB或SOB培养基的1L烧瓶中。于37℃剧烈振摇培养3 h。一般经验,1 OD600约含有大肠杆菌DH5α 109 个/mL。 2.将细菌转移到一个无菌、一次性使用的、用冰预冷的50 ml聚丙烯管中,在冰上放置10 min,使培养物冷却至0℃。 3.于4℃用Sorvall GS3特头(或与之相当的转头)以4 100 r/min离心10 min,以回收细胞。 4.倒出培养液,将管倒置1 min以使最后的痕量培养液流尽。 5.每50 ml初始培养液用30 ml预冷的0.1 mol/LCaCl2-MgCl2溶液(80 mmol/L MgCl2,20 mmol/L CaCl2)重悬每份细胞沉淀。 6.于4℃用Sorvall GS3转头(或与之相当的转头)以41 00 r/min离心10 min,以回收细胞。 7.倒出培养液,将管倒置1 min以使最后的痕量培养液流尽。 8.每50 ml初始培养物用2 ml用冰预冷的0.1 mol/L CaCl2(或TFB)重悬每份细胞沉淀。 9.此时,可以用新鲜制备的感受态细胞直接做转化实验,也可以将细

胞冻存于- 70

℃。 洁净是最重要的~ 无菌都无所谓,在操作台上可正常操作。离心力要注意不要超过2500g,建议1500-2000g 5min。 涂板要注意,不要觉得不匀而多次反复。 轻轻在平板上带一下感觉板上大部分地方走过即可,特别在冰箱中保存过或在温箱中温浴2小时以上的板。涂完后建议空气晾干(20-30分钟)这样会减少卫星菌落出现。 预冷是必要的。 整个过程的低温也并非特别重要,只要注意就行了,我在去残液时经常在室温倒置1min,对感受态效率提高有帮助,第一次多加一点缓冲液,我经常加至20ml,效果不错。 关于感受态的制备方法~ 关于大肠杆菌的感受态制备及转化的方法很多,最复杂的莫过于电转化,而最简单的则是将LB平板上的菌落直接挑入装有缓冲液的EP管冰箱即开始转化。对于做克隆工作的人而言,高而稳定的感受态可减轻不少麻烦。

(完整版)大肠杆菌感受态细胞的制备

大肠杆菌感受态细胞的制备 标签: tr..,Ca..,co.. 分类:细胞技术> 感受态细胞 来源: 实验管理实验概要 大肠杆菌感受态细胞的CaCl2法制备及质粒转化 实验原理 处于对数生长期的细菌经CaCl2 处理后接受外源DNA的能力显著增加。细菌处于容易吸收外源DNA的状态叫感受态。 在自然条件下,很多质粒都可通过细菌接合作用转移到新的宿主内,但在人工构建的质粒载体中,一般缺乏此种转移所必需的mob基因,因此不能自行完成从一个细胞到另一个细胞的接合转移。如需将质粒载体转移进受体细菌,需诱导受体细菌产生一种短暂的感受态,以摄取外源DNA。 转化(Transformation)是将外源DNA分子引入受体细胞,使之获得新的遗传性状的一种手段,它是微生物遗传、分子遗传、基因工程等研究领域的基本实验技术。转化过程所用的受体细胞一般是限制修饰系统缺陷的变异株,即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变体 (R-,M-),它可以容忍外源DNA分子进入体内并稳定地遗传给后代。受体细胞经过一些特殊方法(如电击法,CaCl2 ,RbCl(KCl)等化学试剂法)的处理后,细胞膜的通透性发生了暂时性的改变,成为能允许外源DNA分子进入的感受态细胞(Compenent cells)。进入受体细胞的DNA分子通过复制、表达实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。将经过转化后的细胞在筛选培养基中培养,即可筛选出转化子(Transformant,即带有异源DNA 分子的受体细胞)。目前常用的感受态细胞制备方法有CaCl2和RbCl(KCl)法,RbCl(KCl)法制备的感受态细胞转化效率较高,但CaCl2法简便易行,且其转化效率完全可以满足一般实验的要求,制备出的感受态细胞暂时不用时,可加入占总体积15%的无菌甘油于-70℃保存(半年),因此CaCl2法使用更广泛。 主要试剂 (1)0.1mol/L CaCl2溶液 (2)LB液体培养基

原核表达--宿主菌株选择指南

作为原核表达地宿主,对外源基因地表达会产生一定地影响,是勿庸置疑地.每一个宿主细胞都像一个微观地小工厂,按照细胞固有地程序完成“你给它们安排地生产任务”――因为很难亲眼观察微观世界中表达是如何进行地,当出现问题时,我们需要经验判断问题所在.宿主细胞对原核表达可能会产生哪些影响呢? 知其然还要知其所以然.比如,菌株内源地蛋白酶过多,可能会造成外源表达产物地不稳定,所以一些蛋白酶缺陷型菌株往往成为理想地起始表达菌株.堪称经典地系列就是和蛋白酶缺陷型,也是我们非常熟悉地表达菌株.大名鼎鼎地()融源菌则是添加聚合酶基因,为表达系统而设计.文档收集自网络,仅用于个人学习 真核细胞偏爱地密码子和原核系统有不同,因此,在用原核系统表达真核基因地时候,真核基因中地一些密码子对于原核细胞来说可能是稀有密码子,从而导致表达效率和表达水平很低.改造基因是比较麻烦地做法,系列就是更好地选择―― 这种携带质粒地衍生菌,补充大肠杆菌缺乏地七种(及)稀有密码子对应地,提高外源基因、尤其是真核基因在原核系统中地表达水平.(已经携带有氯霉素抗性质粒)文档收集自网络,仅用于个人学习 当要表达地蛋白质需要形成二硫键以形成正确地折叠时,可以选择衍生菌系列,()和()两条主要还原途径双突变菌株,显著提高细胞质中二硫键形成几率,促进蛋白可溶性及活性表达.(卡那霉素敏感)文档收集自网络,仅用于个人学习 ? 则是综合上述两类菌株地优点,既补充种稀有密码子,又能够促进二硫键地形成,帮助表达需要借助二硫键形成正确折叠构象地真核蛋白.(卡那霉素敏感)文档收集自网络,仅用于个人学习 是衍生自突变地菌株,这个突变能根据地浓度精确调节表达产物,使得表达产物量呈现浓度依赖性.(四环素敏感)文档收集自网络,仅用于个人学习 在决定试用这些名字古怪地菌株时,有几个小要注意地,一个是不同菌株有时已经携带某个质粒或者已经具有某种抗生素抗性,要注意自己地表达质粒是否能与之兼容.比如已经携带有氯霉素抗性质粒,不能再用氯霉素筛选等等.文档收集自网络,仅用于个人学习 现象 可能原因 改进方案 建议菌株 无蛋白表达出现截短蛋白 . 地密码子偏移性 补充稀有密码子地;将稀有密码子突变为普通大肠杆菌密码子 包涵体 二硫键形成困难 降低宿主胞质地还原性;利用促进二硫键形成地各种载体标签 表达过快,表达量过高 控制优化表达水平:降温,浓度优化

感受态细胞的制备(DH5α大肠杆菌)

感受态细胞的制备(DH5α) 一、准备工作 所有试剂、容器均需提前预冷。 1、实验器械 4℃离心机(50ml离心管),37℃恒温箱,37℃摇床,超净台(使用前需要紫外消毒15min 至少);0.22μm的滤器2个(过滤灭菌TfB2种溶液),10ml注射器2个;冰盒;高压灭菌的1.5mlEP管1盒,与离心机配套的50ml离心管6个(高压灭菌),高压灭菌的500ml 锥形瓶2个,高压灭菌的100ml玻璃瓶2个,高压灭菌的1ml枪头和200μl枪头各一盒。 2、试剂配制(甘油特别难吸,用蓝枪头慢慢吸吧) ① LB平板:单纯LB平板,加有amp或有kana的(制板时需标注好类型,时间)。 ② SOB培养基(Super Optimal Broth) ③ TfBⅠ:(100ml制备量)分别称取乙酸钾0.294g,MnCl2 0.99g,KCl 0.146g,CaCl2 0.111g,置于200ml烧杯中,加入15ml甘油和85mlDDW,摇晃,使其全部溶解。然后在安全橱中用孔径为0.22μm的滤器过滤混合液,置于高压灭菌的100ml玻璃瓶中,4℃保存,使用前必须预冷。(装在50ml离心管,封口4度保存) ④ TfBⅡ(20ml制备量,每次现用现配,装在50ml离心管):分别称取MOPS 0.046g,CaCl2 0.167g,KCl 0.015g,置于50ml烧杯中,加入3ml甘油和17mlDDW, 摇晃,使其全部溶解。然后在安全橱中用孔径为0.22μm的滤器过滤混合液,使用前必须预冷。

配制量 1 L 配制方法 1.配制250 mM KCl溶液。(50ml离心管分装) 在90 ml的去离子水中溶解l.86 g KCl后,定容至100 ml。 2.配制2 M MgCl2溶液。(50ml离心管分装) 在90 ml去离子水中溶解4.06g MgCl2 6H2O后,定容至100 ml,高温高压灭菌。 5.量取10 m1 250 mM KCl溶液,加入到烧杯中。 6.滴加NaOH小块,调节pH值至 7.0。 7.加入去离子水将培养基定容至l L。 8.高温高压灭菌后,4℃保存。 9.使用前加入5 ml灭菌的2 M MgCl2溶液。 LB培养基 配制量 1 L 配制方法 3.滴加固体NaOH,调节pH值至7.0。 4.加去离子水将培养基定容至1 L。 5高温高压灭菌后,4度保存。

CaCl2感受态细胞的制备实验步骤

CaCl2感受态细胞的制备实验步骤 ?1、从新活化的E.coli DH5α平板上挑取一单菌落,接种于3~5ml LB液 体培养中,37℃振荡培养至对数生长期(12h左右); ? 2、将该菌悬液以1:100~1:50转接于100ml LB液体培养基中,37℃振 荡扩大培养,当培养液开始出现混浊后,每隔20~30min测一次OD600,至OD600为0.3~0.5时停止培养,并转装到1.5 mL离心管中; ? 3、培养物于冰上放置20min; ? 4、 0~4℃,4000g离心10min,弃去上清液,加入1 mL冰冷的 0.1mo1/L CaCl2溶液,小心悬浮细胞, 冰浴20分钟; ?5、0~4℃, 4000g离心10min,倒净上清培养液,再用1.0 mL冰冷的 0.1mo1/L CaCl2溶液轻轻悬浮细胞,冰浴20min; ? 6、 0~4℃, 4000g离心10min,弃去上清液,加入100 μL冰冷的 0.1mo1/L CaCl2溶液,小心悬浮细胞,冰上放置片刻后,即制成了感 受态细胞悬液; ? 7、制备好的感受态细胞悬液可直接用于转化实验,如果在4℃放置 12~24h,其转化效率可以增高4~6倍;也可加入占总体积15%左右 高压灭菌过的甘油,混匀后分装于1.5ml离心管中,置于-70℃条件下, 可保存半年至一年。

CaCl2感受态细胞的制备实验步骤 1.前夜接种受体菌(DH5α或DH10B),挑取单菌落于LB培养基中 37℃摇床培养过夜(约16小时); 2 .取1ml过夜培养物转接于100ml LB培养基中,在37℃摇床上剧烈振 荡培养约2.5-3小时(250-300rpm); 3 .将0.1M CaCl2溶液置于冰上预冷;以下步骤需在超净工作台和冰上 操作; 4 .吸取1.5ml培养好的菌液至1.5ml离心管中,在冰上冷却10分钟; 5 .4℃下3000 g冷冻离心5分钟; 6 .弃去上清,加入100μl预冷0.1M CaCl2溶液,用移液枪轻轻上下吸动 打匀,使细胞重新悬浮,在冰放置20分钟; 7 . 4℃下3000 g冷冻离心5分钟; 8 .弃去上清,加入100μl预冷0.1M CaCl2溶液,用移液枪轻轻上下吸动 打匀,使细胞重新悬浮; 9 .细胞悬浮液可立即用于转化实验或添加冷冻保护剂(15% - 20%甘油)后超 低温冷冻贮存备用(-70℃)。 注意事项 1.细菌的生长状态:实验中应密切注视细菌的生长状态和密度,尽量使 用对数生长期的细胞(一般通过检测OD600来控制。DH5α菌株OD600为0.5时细胞密度是5×107/ml); 2 .所有操作均应在无菌条件和冰上进行; 3 .经CaCl2处理的细胞,在低温条件下,一定的时间内转化率随时间的 推移而增加,24小时达到最高,之后转化率再下降(这是由于总的 活菌数随时间延长而减少造成的); 4 .化合物及无机离子的影响:在Ca2+的基础上联合其他二价金属离子 (如Mn 2+或Co 2+)、DMSO或还原剂等物质处理细菌,可使转化效率大大提高(100-1000倍); 5 .所使用的器皿必须干净。迹量的去污剂或其它化学物质的存在可能 大大降低细菌的转化效率; 6 .质粒的大小及构型的影响:用于转化的应主要是超螺旋的DNA; 7 .一定范围内,转化效率与外源DNA的浓度呈正比;

感受态细胞制备及各种感受态的特点

感受态细胞制备及各种 感受态的特点 Company Document number:WUUT-WUUY-WBBGB-BWYTT-1982GT

感受态细胞制备制备感受态常用的方法是电击法和CaCl2制备法,以下介绍CaCl2制备法: 1、可以从-80℃冰柜中,取出一支冻存菌株,于事先照过紫外的超净台中,用无菌的接种环轻轻蘸取菌种后,在无抗平板(由于Rocetta含有氯霉素抗性,需要涂布在氯霉素抗性的平板,后面的都是如此)上划线,并将菌种迅速放回-80℃保存,在划线板上做好相应标记,于37℃培养过夜。 2、从37℃培养过夜的新鲜平板上挑取一个单克隆,接种于2mlEP管中,37℃, 220rpm震荡培养约6个小时至对数生长中后期;将该菌悬液以1:100的比例接种于 50ml LB液体培养基(2瓶)中,37℃振荡培养小时至OD600=。 注意:接种比例不得大于1:10。 3、在无菌条件下将细菌转移到一个无菌、预冷的离心管(50ml)中,在冰上放置 5~10min; 注意:划板、接种为了防止意外发生最好多划一块平板和多接一根试管,划板、接种、转接均要严格按照无菌操作。 4、4℃ 5000g离心5分钟。用预冷的去离子水洗涤沉淀,4℃ 5000g离心5分钟;Note:此步主要是为了洗去培养基中的盐等 5、沉淀加入2ml预冷的L CaCl2-15%甘油混合溶液,轻吹散,冰浴5分钟,4℃5000g 离心5分钟; 6、沉淀加入2ml预冷的L CaCl2-15%甘油混合溶液,轻吹散,即成为感受态细胞悬液。分装成50~100μl的小份,贮存于-70℃可保存半年。 含15%甘油的L CaCl2制备方法: 称取 CaCl2(无水,分析纯),溶于50ml重蒸水中,加入15ml甘油,定容至100ml,高压灭菌。

高效感受态细胞的制备

感受态细胞的制备 一、实验原理 受体细胞通过一些特殊方法(如电击法,CaCl2,MnCl2,MgCl2等化学试剂法)的处理后,使细胞膜的通透性发生了暂时性的改变,成为能允许外源DNA分子进入的状态,成为感受态细胞。 本方案介绍的方法为TSS法和KCM转化法。 二、材料及准备工作 一)材料准备

二)试剂配制 1、液体LB培养基(200ml,高压灭菌,4℃保存备用) 蛋白胨 2.0g 酵母提取物 1.0g 氯化钠(NaCl) 2.0g 2、固体LB培养基(2×100ml,高压灭菌) 蛋白胨2×1.0g 酵母提取物2×0.5g 氯化钠(NaCl)2×1.0g 琼脂粉2×1.5g 温度降低到45℃后(不烫手),取其中一瓶加入氨苄至终浓度100μg/ml(100mlLB加100μl 100mg/ml的氨苄)后铺平皿,另一瓶直接铺平皿。4℃保存备用。 3、TSS液(100ml)(有效期2周) 聚乙二醇(PEG8000)10g 终浓度10% DMSO 5ml 终浓度5%

MgCl2(1mol/L)5ml 终浓度50mmol/L LB 85ml 终浓度85% 去离子水补足100ml,0.22μm过滤器过滤后,4℃保存备用 注:聚乙二醇分子量可以为3000-8000 4、5×KCM液(10ml)(可-20℃长期保存备用) KCl(2mol/L) 2.5ml CaCl2(1mol/L) 1.5ml MgCl2(1mol/L) 2.5ml 水补足到10ml, 0.22μm过滤器过滤后,4℃保存备用(不要高压消毒) 5、氨苄青霉素(amp)(100mg/ml) 取0.5g氨苄青霉素,溶解于5ml去离子水中,0.5ml分装,-20℃ 保存备用 三)仪器设备 1、低温大容量离心机 2、恒温水浴锅 3、超净台 4、高压锅 5、37℃孵育箱 6、恒温摇床 7、制冰机 8、分光光度计

农杆菌感受态细胞的制备原理和实验步骤及验证

农杆菌感受态细胞的制备原理和实验步骤发布日期:2010-04-28 发布 人:technew最后更新时间:2010-04-28 浏览次数:889 一、目的及要求 了解和掌握农杆菌感受态细胞制备的原理和方法。 二、实验原理 在利用根癌农杆菌介导的基因转化中,首先要获得含有目的基因的农杆菌工程菌株。 在基因工程操作中,感受态细胞的制备和质粒的转化是一项基本技术。感受态是细菌细胞具有的能够接受外源DNA 的一种特殊生理状态。农杆菌的感受态可用CaCl2 处理而诱导产生。将正在生长的农杆菌细胞在加入到低渗的氯化钙溶液中,0℃下处理便会使细菌细胞膜的透性发生改变,此时的细胞呈现出感受态。 制备好的农杆菌感受态细胞迅速冷冻于70℃可保存相当一段时间而不会对其转化效率有太大影响。 三、实验仪器、材料和试剂 仪器:超净工作台,恒温摇床,冷冻高速离心机,高压灭菌锅,冰箱,70℃超低温冰柜,分光光度计,接种针,10ml 试管,50ml 离心管,1.5ml 离心管,冰浴,微量进样器及吸头。以上玻璃仪器和离心管需在用前灭菌,灭菌条件:120℃,15分钟。 材料:土壤农杆菌LBA4404菌株或其它农杆菌菌株 试剂: YEB液体培养基(1升):酵母提取物1g,牛肉膏5g,蛋白胨5g,蔗糖5g, MgSO4.7H2O 0.5g, pH7.0,高压灭菌; 链霉素(Sm)储液:125mg/ml 0.15 N NaCl,高压灭菌。 20mM CaCl2,高压灭菌。

四、实验步骤 1. 挑取根癌农杆菌LBA4404 单菌落于3ml 的YEB液体培养基(含Sm 125mg/l)中,28°C振荡培养过夜; 2. 取过夜培养菌液0.5ml接种于50mlYEB(Sm 125mg/l)液体培养基中,28°C振荡培养至OD600为0.5; 3. 5000rpm, 离心5min; 4. 加入10ml 0.15N NaCl,使农杆菌细胞充分悬浮,5000rpm, 离心5min; 5. 弃上清,置于冰上,加入1ml预冷的20mM CaCl2,充分悬浮细胞,冰浴中保存,24小时内使用,或分装成每管200ml,液氮中速冻1 分钟,置70°C保存备用。 一.农杆菌感受态细胞的制备 二.双元载体转化农杆菌EHA105 三.杆菌转化子的鉴定 A.农杆菌转化子的PCR鉴定 B.农杆菌转化子的酶切鉴定 关键词:农杆菌感受态细胞转化子 一.农杆菌感受态细胞的制备(同大肠杆菌质粒DNA的提取),然后将其转化大肠杆菌,再提取大肠杆菌的质粒DNA进行酶切鉴定。 取-70℃保存的EHA105于含有50μg/ml链霉素平板划线,28℃培养2天。挑单 菌落接种于5ml YM(0.5g/L KH 2 PO 4 ,10 g/L Mannitol,2 g/L L-Glutamine,0.2 g/L NaCL,0.2 g/L MgSO 4,0.3 g/L Yeast extract,PH 7 .0)液体培养基中,220rpm, 28℃振荡培养18 hr 左右。将5ml菌液转接于100ml YM液体培养基中, 28℃,220rpm,振荡培养至OD 600 =0.5。转入无菌1.5ml的EP管,5000g离心5min, 去上清液。加入1ml预冷的0.1M的CaCl 2 溶液,轻轻悬浮细胞,冰上放置20min, 4℃下,5000g离心5min,去上清。加入200μl预冷的含15%甘油的0.1M的CaCl 2溶液,轻轻悬浮。混匀后立即冻存于-80℃。 二.双元载体转化农杆菌EHA105 取1μg左右的质粒DNA加入到200μl EHA105感受态细胞中,混匀后,冰浴30min;-70℃放置10min ;取出后37℃水浴5min或42℃水浴1min;冰浴2min;加入800μl YM液体培养基,28℃,175rpm摇培3hr;取出后涂在含50μg/ml Kanamycin 的YM平板上,28℃培养到形成单菌落。

实验室常用的细菌作用及其选择

第一篇:JM109,DH5a,BL21这些感受态有何区别 1:DH5a菌株 DH5a是一种常用于质粒克隆的菌株。E.coli DH5a在使用pUC系列质粒载体转化时,可与载体编码的β-半乳糖苷酶氨基端实现α-互补。可用于蓝白斑筛选鉴别重组菌株。 基因型:F-,φ80dlacZΔM15,Δ(lacZYA-argF)U169,deoR,recA1,endA1,hsdR17(rk-,mk+),phoA,supE44,λ-,thi-1,gyrA96,relA1 2:BL21(DE3) 菌株 该菌株用于高效表达克隆于含有噬菌体T7启动子的表达载体(如pET系列)的基因。T7噬菌体RNA聚合酶位于λ噬菌体DE3区,该区整合于BL21的染色体上。该菌适合表达非毒性蛋白。 基因型:F-,ompT, hsdS(rBB-mB-),gal, dcm(DE3) 3:BL21(DE3) pLysS菌株 该菌株含有质粒pLysS,因此具有氯霉素抗性。PLysS含有表达T7溶菌酶的基因,能够降低目的基因的背景表达水平,但不干扰目的蛋白的表达。该菌适合表达毒性蛋白和非毒性蛋白。 基因型:F-,ompT hsdS(rBB-mB-),gal, dcm(DE3,pLysS ,Camr 4:JM109菌株 该菌株在使用pUC系列质粒载体进行DNA转化或用M13 phage载体进行转染时,由于载体DNA产生的LacZa多肽和JM09编码的LacZΔM15进行α-互补,从而显示β-半乳糖苷酶活性,由此很容易鉴别重组体菌株 基因型:recA1,endA1,gyrA96,thi-1,hsdR17,supE44,relA1,Δ(lac -proAB)/F’[traD36,proAB+,lacIq,lacZΔM15] 5:TOP10菌株 该菌株适用于高效的DNA克隆和质粒扩增,能保证高拷贝质粒的稳定遗传。 基因型:F- ,mcrAΔ(mrr-hsd RMS-mcrBC),φ80 ,lacZΔM15,△lacⅩ74,recA1 ,araΔ139Δ(ara-leu)7697, galU ,galK ,rps, (Strr) endA1, nupG 6:HB101菌株 该菌株遗传性能稳定,使用方便,适用于各种基因重组实验

大肠杆菌感受态细胞的制备和转化原理

大肠杆菌感受态细胞的制备和转化(原理) 感受态细胞的概念重组DNA分子体外构建完成后,必须导入特定的宿主(受体)细胞,使之无性繁殖并高效表达外源基因或直接改变其遗传性状,这个导入过程及操作统称为重组DNA分子的转化。在原核生物中,转化是一个较普遍的现象,在细胞间转化是否发生,一方面取决于供体菌与受体菌两者在进化过程中的亲缘关系,另一方面还与受体菌是否处于一种感受状态有着很大的关系。 1、感受态细胞的概念 所谓的感受态,即指受体(或者宿主)最易接受外源DNA片段并实现其转化的一种生理状态,它是由受体菌的遗传性状所决定的,同时也受菌龄、外界环境因子的影响。cAMP可以使感受态水平提高一万倍,而Ca2+也可大大促进转化的作用。细胞的感受态一般出现在对数生长期,新鲜幼嫩的细胞是制备感受态细胞和进行成功转化的关键。 制备出的感受态细胞暂时不用时,可加入占总体积15%的无菌甘油或-70℃保存(有效期6个月)。 2、转化的概念及原理 在基因克隆技术中,转化特指将质粒DNA或以其为载体构建的重组DNA导入细菌体内,使之获得新的遗传特性的一种方法。

它是微生物遗传、分子遗传、基因工程等研究领域的基本实验技术之一。 受体细胞经过一些特殊方法(如:电击法,CaCl2等化学试剂法)处理后,使细胞膜的通透性发生变化,成为能容许外源DNA分子通过的感受态细胞。进入细胞的DNA分子通过复制、表达实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。 大肠杆菌的转化常用化学法(CaCl2法),该法最先是由Cohen 于1972年发现的。其原理是细菌处于0℃,CaCl2的低渗溶液中,菌细胞膨胀成球形,转化混合物中的DNA形成抗DNase(DNA酶)的羟基--钙磷酸复合物粘附于细胞表面,经42℃短时间热冲击处理,促使细胞吸收DNA复合物,在丰富培养基上生长数小时后,球状细胞复原并分裂增值。被转化的细菌中,重组子中基因得到表达,在选择性培养基平板上,可选出所需的转化子。 Ca2+处理的感受态细胞,其转化率一般能达到5×106--2×107转化子/质粒DNA,可以满足一般的基因克隆试验。如在Ca2+的基础上,联合其它的二价金属离子(如Mn2+、Co2+)、DMSO或还原剂等物质处理细菌,则可使转化率提高100--1000倍。 化学法简单、快速、稳定、重复性好,菌株适用范围广,感受态细菌可以在-70℃保存,因此被广泛用于外源基因的转化。

实验七 感受态细胞的制备和重组质粒的转化

实验七感受态细胞的制备和重组质粒的转化 【实验目的】 1.掌握用CaCl2法制备感受态细胞的原理和方法。 2.学习和掌握质粒DNA的转化和重组质粒的筛选方法。 【实验原理】 质粒在不同的细菌之间转移是微生物世界中一种普遍的现象,一个细菌品系通过吸收另一个细菌品系的质粒DNA而发生了遗传性状的改变,这种现象叫做转化,获得了外源DNA的细胞称为转化子。 在基因克隆技术中,所谓转化是指质粒或重组质粒被导入受体细胞,表达相应的选择标记基因,并在一定的培养条件下,在选择性培养基上长出转化子的过程。质粒必须通过转化进入细菌细胞内,才能进行扩增和表达,从而获得大量的克隆基因,使我们能够进行进一步的DNA操作,如亚克隆等;或者获得其表达产物。转化效率的高低与受体菌的生理状态有关。细菌吸收外源DNA的能力最高时的状态被称为感受态细胞(competent cell)。有些种类的细菌在其生长的任一阶段都处于感受态,而另一些细菌只有处于某个生长时期时(一般为对数生长早、中期),才会处于感受态,如本实验所用的大肠杆菌。用一定浓度的CaCl2 处理对数生长早中期的细菌可以大大提高细菌吸收周围环境中的DNA分子的能力。对这种现象的一种解释是CaCl2能使细菌细胞壁的通透性增强,从而提高转化率。这种转化方法称为“化学法”。目前还可以使用电激的方法,通过瞬间的高压电流,在细胞上形成孔洞,使外源DNA进入胞内,从而实现细胞的转化。电激转化的效率往往比化学法高出1到2个数量级,达到1 x 108转化子/μg DNA,甚至1 x 109转化子/μg DNA,所以常用于文库构建时的转化或遗传筛选。 微生物转化是基因工程的常用技术,大肠杆菌是基因工程中最常用的受体菌,本实验即是用前面实验获得的重组质粒转化大肠杆菌细胞。 【试剂与器材】 〈一〉试剂 1.LB液体培养基: 参见附录 每组配200mL, 其中100mL分装于500mL三角瓶中,另各取3mL装于2只大试管中,其余装于装于500mL三角瓶中,121℃高压蒸汽灭菌20分钟。 2.LB/Amp/IPTG/X-Gal平板(1): 配1L LB液体培养基,加入20g琼脂粉和1支搅拌棒,同上高压灭菌,趁热取出置搅拌器上冷却,待冷至55℃左右, 加氨苄青霉素(Ampicillin)至终浓度100μg/ml (Amp储存液一般为100mg/mL), 倒平板,每皿倒约15 mL,室温放置过夜至冷凝水挥发干净。使用前半小时在培养基表面加20μL 50mg/mL X-gal 和100μL 0.1mol/L IPTG,涂匀,待这两种化合物渗入琼脂后,即可用于转化菌的涂布。 每组制备LB平板2个,LB/Amp 平板5个,LB/Amp/IPTG/X-Gal平板6个。 3.IPTG储存液(0.1mol/L):1.2g IPTG加水至50ml,过滤除菌,4℃储存。 4.X-gal储存液:50mg/ml溶于二甲基甲酰胺溶剂中,过滤除菌,4℃储存。 5.1 mol/L CaCl2储存液,使用浓度为0.1mol/L,CaCl2应使用分析纯,配100mL,高压灭菌,全班用。6.甘油(灭菌),全班50mL,同上高压灭菌。 7.酸洗无菌玻璃珠,涂布平板用,用50mL三角瓶分装,同上高压灭菌,烘干备用。 〈二〉器材 1. 37℃温箱、水浴锅、恒温振荡器等 2. 高速冷冻离心机 3. 微量移液器等

实验室离心机的选择和分类

实验室离心机的选择和分类 离心机是一种结构复杂的高速旋转机械,它是利用离心力,不同物质在离心场中沉淀速度的差异,对混合溶液进行快速分离的专门设备,是一种将装有样品溶液的离心管、瓶或袋韵转头置于离心轴上,利用转头绕轴高速旋转所产生的强大离心力,使样品中不同性质颗粒相互分离的特殊装置。,可以实现样品的分析、分离。 离心机自问世以来,历经低速、调整、超速的变迁,其进展主要体现在离心机设计和离心技术两方面,二者相辅相成。由于台式离心机结构简单,造价低,体积小,很快成为实验室的常规仪器,国内外知名离心机厂商几乎都生产台式离心机,如近几年来在我国比较活跃的德国Hheraeus,eppendof,Sigma,Hettich,Hermle,法国的Jouran,美国的Beckman,Sorvall,IEC,日本的Hitachi,Kukna,Sanyo/Mse等,国内的北京医用离心机厂、湖南凯达科学仪器有限公司、上海安亭科学仪器厂等。从转速看,台式离心机基本属于低速、高速离心机的范畴,因此,具有低速、高速离心机的特点。与落地式离心机相比,只不过只是尺寸和容量小一些。 离心机的式样和型号很多,有国产的和进口的,按用途可分为分析式离心机和制备式离心机;按转速可划分为: 普通离心机(低速)<8000r/min; 高速离心机8000 ~30000r/rain; 超速离心机30000 ~80000r/min; 超高速离心机>80000r/min; 按生物高分子量来选用离心机: 分子量>10。,用普通离心机和高速离心机;

分子量10 ~10。,用超速离心机; 分子量<10 ,用离心和超离心分离效果不好,必须采用另外的分离方法。 可以根据实验目的和实验需要,选择不同容量、不同转速、不同温度控制的离心机。例如,需要常温、微量、快速离心时,可使用手掌型离心机(LX—100型,江苏海门麒麟医用仪器厂生产)和微型离心机(DW一41型,韩国KOREA);如需要的转速不大于16000rpm,可使用台式离心机(德国Hettich,MIKRO12—24型;做质粒DNA少量提取、cDNA提取实验,蛋白提取,及从植物中提取RNA时,转速需要12000—140000rpm,经常使用高速冷冻台式离心机(德国Hettich,16R型和32R型)、台式高速离心机(德国HettichMIKRO12—24型)及高速冷冻离心机(法国JOURN BR4i型);在制备感受态细胞和大量提取质粒DNA时,经常使用到自动高速冰冻离心机(日本HITACHI,日立工机株式会社,20PR-52D型)和超高速冷冻离心机(美国Beckman A vantU一301)型;如需要大量离心,例50mL、100mL或100mL以上,且转速需要20000~70000rpm,则可以使用自动超速冰冻离心机(日本HITACHI,日立工机株式会社,70P一72型)。在上述离心机当中,比较先进的是美国Beckman A vanti J一301型超高速冷冻离心机,其性能较优越,集真空、高速和冷却于一身,可以用于大量的细胞、亚细胞、细菌、病菌的快速分离,是常见的实验室设备,通常将转速在5000 ~30000RPM(转/分钟)范围内的离心机称为高速离心机,Beckman A vanti J一301型离心机的最高转速是30000RPM,因此属于高速离心机的范围。

感受态细胞的制备步骤和原理

感受态细胞的制备步骤和原理 实验目的 为了获得大量的质粒作为克隆载体,我们需要将购买来的质粒通过转化的方法导入细菌的细胞内。制备出感受态的细胞,我们就可以方便的将需克隆的质粒导入其中,使其繁殖,就能获得大量质粒。本次实验的目的就是增加质粒的数量。同时,我们能掌握大肠杆菌感受态细胞的制备及转化的基本原理和实验技术方法。 实验原理及过程 实验步骤 1挑取一个JM109单菌落于3ml LB(无抗生素)培养基中,37℃,180rpm培养过夜。 [让菌复苏,进入对数期的早中期。此时更容易制得感受态细胞。] 2取0.4mL过夜培养物加入到40mL LB(无抗生素)培养基中,37℃250rpm大约2.5小时。 [减少达到所需亮的均所需繁殖的世代数,以减少菌的变 GAGGAGAGGAFFFFAFAF

异。] 3取培养物置于40mL的灭菌离心管中,冰浴10min,4000rpm 4℃离心10min,弃上清。(将所有上清倒光,可以将离心管倒过来) [使细菌的生长停止,代谢减慢。因为这时已经没有培养基了,如果细菌仍有很高的代谢效率,则有大量细菌死亡。] 4菌体重悬于10mL 100mmol/L冰冷CaCl2中,轻吹,4℃30min,4000rpm离心5min弃上清。 [ 细菌处于0度,CaCl2低渗溶液中,菌细胞膨胀成球形,外源DNA形成抗DNA酶的羟基-钙磷酸盐混合物黏附于细胞表面(羟基来源于细胞壁上的糖,磷酸来源于DNA),经短时间420C热激处理,促进细胞吸收DNA复合物。(一定要轻吹,这时细胞壁打开,十分脆弱)] 5菌体重悬于1mL 100mmol/L冰冷的CaCl2中,轻吹,用于转化。 [除去所有的LB以及细胞破损后释放出来的细胞内含物。防止细胞分裂,以致大量细胞死亡。(一定要轻吹,这时细 胞壁打开,十分脆弱)] GAGGAGAGGAFFFFAFAF

CaCl2法制备感受态细胞知识讲解

C a C l2法制备感受态 细胞

大肠杆菌感受态细胞的CaCl2法制备及质粒转化 实验原理 处于对数生长期的细菌经CaCl2 处理后接受外源DNA的能力显著增加。细菌处于容易吸收外源DNA的状态叫感受态。 在自然条件下,很多质粒都可通过细菌接合作用转移到新的宿主内,但在人工构建的质粒载体中,一般缺乏此种转移所必需的mob基因,因此不能自行完成从一个细胞到另一个细胞的接合转移。如需将质粒载体转移进受体细菌,需诱导受体细菌产生一种短暂的感受态,以摄取外源DNA。 转化(Transformation)是将外源DNA分子引入受体细胞,使之获得新的遗传性状的一种手段,它是微生物遗传、分子遗传、基因工程等研究领域的基本实验技术。转化过程所用的受体细胞一般是限制修饰系统缺陷的变异株,即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变体(R-,M-),它可以容忍外源DNA分子进入体内并稳定地遗传给后代。受体细胞经过一些特殊方法(如电击法,CaCl2 ,RbCl(KCl)等化学试剂法)的处理后,细胞膜的通透性发生了暂时性的改变,成为能允许外源DNA分子进入的感受态细胞(Compenent cells)。进入受体细胞的DNA分子通过复制、表达实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。将经过转化后的细胞在筛选培养基中培养,即可筛选出转化子(Transformant,即带有异源DNA 分子的受体细胞)。目前常用的感受态细胞制备方法有CaCl2和RbCl(KCl)法,RbCl(KCl)法制备的感受态细胞转化效率较高,但CaCl2法简便易行,且其转化效率完全可以满足一般实验的要求,制备

出的感受态细胞暂时不用时,可加入占总体积15%的无菌甘油于-70℃保存(半年),因此CaCl2法使用更广泛。 主要试剂 (1)0.1mol/L CaCl2溶液 (2)LB液体培养基 (3)30%甘油:30mL甘油溶于100mL蒸馏水,高压灭菌。 主要设备 (1)超净工作台 (2)冷冻离心机 (3)恒温摇床 (4)-70℃冰箱 (5)10mL移液管 (6)吸耳球 (7)1mL、200μL移液枪(配套枪头) (8)50mL 离心管 (9)1.5mL离心管 实验材料 (1)大肠杆菌DH5α(R-,M-,Amp-) 实验步骤 (一)受体菌的培养

感受态细胞的制备步骤和原理

感受态细胞的制备步骤和原理 实验目的为了获得大量的质粒作为克隆载体,我们需要将购买来的质粒通过转化的方法导入细菌的细 胞内。制备出感受态的细胞,我们就可以方便的将需克隆的质粒导入其中,使其繁殖,就能 获得大量质粒。本次实验的目的就是增加质粒的数量。同时,我们能掌握大肠杆菌感受态细 胞的制备及转化的基本原理和实验技术方法。实验原理及过程实验步骤 1挑取一个JM109单菌落于3ml LB(无抗生素)培养基中,37C, 180rpm培养过夜。[让菌复苏, 进入对数期的早中期。此时更容易制得感受态细胞。] 2取0.4mL过夜培养物加入到40mL LB(无抗生素)培养基中,37C 250rpm大约2.5小时。 [减少达到所需亮的均所需繁殖的世代数,以减少菌的变异。] 3取培养物置于40m L的灭菌离心管中,冰浴10min , 4000rpm 4C离心10min,弃上清。(将所 有上清倒光,可以将离心管倒过来) [使细菌的生长停止,代谢减慢。因为这时已经没有培养基了,如果细菌仍有很高的代谢效率,则有大量细菌死亡。] 4菌体重悬于10mL 100mmol/L 冰冷CaCl2中,轻吹,4 C 30min , 4000rpm离心5min弃上 [细菌处于0度,CaCl2低渗溶液中,菌细胞膨胀成球形,外源DNA形成抗DNA酶的羟基 -钙磷 酸盐混合物黏附于细胞表面(羟基来源于细胞壁上的糖,磷酸来源于DNA ),经短时 间420C热激处理,促进细胞吸收DNA复合物。(一定要轻吹,这时细胞壁打开,十分脆弱)] 5 菌体重悬于1mL 100mmol/L冰冷的CaCl2中,轻吹,用于转化。 [除去所有的LB以及细胞破损后释放出来的细胞内含物。防止细胞分裂,以致大量细胞死亡。 (一定要轻吹,这时细胞壁打开,十分脆弱)] 6取感受态细胞100uL,加入2uLpET-21a质粒,冰浴30 min受体菌:感受态细胞100uL, 加入2 uL 无菌双蒸水阴性对照:0.1mol/LCaCl2溶液100uL,加入2 uL阴性对照 [第一个阴性对照是为了验证LB中的抗生素有活性;第二个阴性对照是为了验证CaCl2溶 液和pET-21a质粒未被污染。][冰浴是为了降低细胞代谢率,防止细胞大量死亡。] 7热激42度,90s 【在低温处理后,热激,可以使细胞壁热胀冷缩,再低温,使细胞壁上黏附的质粒进入细胞体内。】8冰浴2 min 9加入800 uL无抗生素的LB, 37 C复苏1h 【用LB复苏细胞,使细胞恢复活力,从而使细胞中的质粒表达抗抗生素的基因,只有这样才能使 转化成功的细菌在有抗生素的LB平板上生长。】 10取100ul细胞直接在含50ug/mL Carbenicillin(短节西林)的LB培养基上铺平板,将平皿放置 37 oC温箱30min至液体被吸收。倒置平皿37 oC培养过夜,出现菌落。 【这些菌落为转化成功的菌落,而对照组应该没有菌落。在目的菌落的旁边有可能出现卫星菌落,这是因为亩的菌落的抗性基因似的菌落周围的抗生素失效,长出了转化为成功的菌 落。用短节西林因其对酸稳定、不易被细菌降解,所以可以降低卫星菌落的数量。 因为抗生素高温易失活,所以应等到LB600C时(热而不烫),加入抗生素。】

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