最新家兔动脉血压的神经和体液调节
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科目动物生理学实验同组者***、*** 日期***********
家兔动脉血压的神经和体液调节
【实验目的】
1. 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。
2. 观察神经、体液因素对心血管活动的影响。
【实验原理】
在正常生理状况下，人和高等动物的动脉血压（arterial blood pressure，ABP）是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈总动脉-主动脉弓压力感受性反射尤为重要。此反射既可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。
本实验是应用液导系统直接测定动脉血压。即由动脉插管与压力传感器连通，其内充满抗凝液体，构成液导系统，将动脉插管插入动脉内，动脉内的压力及其变化，可通过封闭的液导系统传递到压力传感器，并由计算机采集系统记录下来。
【实验材料】
1.材料：家兔。
2.器具：兔体手术台，常用手术器械，剪毛剪，解剖刀，咬骨钳，止血钳，气管插管，动
脉插管，三通管，动脉夹，压力传感器，计算机采集系统，照明灯，注射器，棉花，棉线，银丝电极（双电极）。
3.试剂：20﹪氨基甲酸乙酯，4﹪柠檬酸钠溶液，肝素钠溶液，生理盐水。
【实验步骤】
（一）实验仪器的准备
1. 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从控制界面的菜单“实验项目”中选取“循环实验”的“家兔血压的调节”条，或者直接将相应采集通道的模式调整为“压力”模式。使图线显示压力读数。
2. 连接液导系统并制压
将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4％柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力的变化。当加压到120mmHg（1mmHg=1.33×102Pa）左右即可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显地反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素钠溶液。
（二）动物准备
1. 麻醉动物：取一只家兔，称重并剪去耳缘静脉上的被毛。用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注20﹪氨基甲酸乙酯（5g/1kg体重）进行麻醉。
2. 固定与剪毛：将动物背位固定于手术台上，用剪毛剪将颈部手术野的被毛剪去，即可进行手术。
（三）手术
1. 切开皮肤：一手的拇指和食指按住家兔颈部两侧，另一只手持手术刀，在紧靠喉咙下缘，沿颈部正中线作一长5~7cm的皮肤切口。
2. 分层分离肌肉：持止血钳轻轻提起少许气管正上方的肌肉，然后用止血钳将肌肉纵向打开一个小口，用止血钳将创口扩大，直至看见肌肉层下方的气管。用止血钳向两侧拉开肌肉，暴露气管。
3. 气管插管：先在甲状腺后方的气管背面穿过一条棉线，并打一活结备用，然后在气管上方作一倒“T”型切口，将与气管口径相近的气管插管，沿向心方向插入气管，并扎紧备用线，将线固定于气管插管的分叉处，以防气管插管松脱。
4. 分离颈总动脉、神经：家兔颈部的神经、颈总动脉被结缔组织膜包在一起，形成血管神经束，位于气管两侧。用弯头玻璃分针轻轻划开局部结缔组织束膜，仔细辨认3种神经与颈总动脉：颈总动脉呈红色，有波动，壁有较强的弹性；迷走神经最粗，有较好的韧性，色洁白，一般位于外侧；交感神经较细，略呈灰色，一般位于内测；主动脉神经最细，一般位于两神经之间。在一侧颈总动脉下穿线，打一活结备用，分离同侧3根神经：用一玻璃分针将3根神经挑起，向外拉，使3根神经分开，用另一玻璃分针沿纵向先分开最细的2条神经（颈减压神经和颈交感神经），在分离最粗的神经（颈迷走神经），然后在3根神经下分别穿2
条线分别打活结备用；在对侧分离出2~3cm长的颈总动脉，穿2条线，分别打活结，将2条线分别拉至分离出的动脉两端备用。
5. 动脉插管：首先用注射器吸1-2ml生理盐水，再吸100ul肝素钠溶液，从耳缘静脉注入肝素钠溶液，以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。方法如下：将动脉远心端的备用线尽可能靠头端结扎（务必扎紧，以防漏血），然后在另一备用线的向心端，用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线，用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方，沿向心方向斜向剪开动脉上壁。另一只手将准备好的动脉插管，顺势轻轻推进6-8mm，用备用线将动脉联通进入的插管扎紧，并将余线系在插管的固定侧支上，以免滑脱。轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉血与插管内液体混合，血液在小管内搏动。再取下通向压力感受器的止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。
【实验观察及结果】
实验中所用到的实验动物体重2.6公斤，注射麻醉剂的量为13ml。
（1）观察正常血压曲线：调节扫描速度与增益，可明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩、舒张压的度数。有时可以观察到血压曲线随呼吸变化，心搏为一级波，呼吸波为二级波。然后将扫面速度调慢，观察正常血压曲线。
心脏跳动呼吸波
图1 正常血压曲线
结果分析：此时观察到家兔血液波动的收缩压约为100mmHg，舒张压约为80mmHg。由于插管处血液轻微渗漏，可能会使血压的值略有降低。在血压曲线上，可清楚分辨心脏跳动波和呼吸波。
（2）刺激迷走神经：使刺激输出端连接保护电极，轻轻提起迷走神经上的备用线，小心地将神经置于保护电极之上。纪录对照血压曲线后，再用中等强度的连续电脉冲信号通过保护电极刺激神经。血压出现明显下降后即可停止刺激（如果血压下降很快、很低，应立即停止刺激），并待血压恢复。
图2 刺激迷走神经对血压的影响
结果分析：刺激迷走神经后，血压迅速下降，且频率变慢，说明迷走神经具有减压以及降低心脏活动的作用。停止刺激后，血压渐渐恢复到初始值。
（3）分别刺激迷走神经中枢端和外周端：双结扎迷走神经后（务必扎紧），从两结扎线之间剪断神经。记录对照血压后，同法分别刺激神经的中枢端和外周端，观察并记录血压变化。
图3 刺激迷走神经中枢端对血压的影响
图4 刺激迷走神经外周端对血压的影响
结果分析：刺激迷走神经中枢端与外周端都能引起减压反射。是因为：迷走神经为自主神经，刺激外周端时，能够引起效应器官的反应，如血压降低、心率变慢；刺激中枢端时，也可以通过中枢神经系统后，传至外周端，产生效应。
（4）刺激交感神经：用同样的方法刺激交感神经，观察血压曲线是否有变化。
结果分析：在实验过程中，无论如何刺激交感神经，血压曲线都无明显变化。原因：刺激交感神经使心脏的活动加强，血压应该有一定程度上升，然而交感神经对血压进行的是微调，变化并不明显，因此很难记录到血压曲线的变化。
在实验中，并未剪断主动脉神经，分别刺激中枢端和外周端。
（5）刺激主动脉神经（减压神经）：用同样的方法刺激主动脉神经，观察血压曲线是否有变化。
结果分析：在实验过程中，无论如何刺激主动脉神经，血压曲线都无明显变化，说明刺激的并非主动脉神经，或主动脉神经受到了损坏，神经冲动的传导受到阻断，失去了其生理活性。经查阅资料得知：刺激主动脉神经会导致血压下降。原因：当电刺激主动脉神经时：主动脉神经传入冲动增多，使心迷走中枢兴奋、心交感中枢抑制、缩血管中枢抑制，使迷走神经传出冲动增加，交感神经传出冲动减少，而至心率减慢、心收缩力减弱、小静脉舒张，回心血量减少，心输出量减少，外周阻力降低，最终导致血压下降。
由于刺激完整的主动脉神经，血压曲线无明显变化，在实验中，并未剪断主动脉神经，分别刺激中枢端和外周端。后来得知：刺激整体主动脉神经，血压曲线无明显变化，并不代表分别刺激中枢端和外周端，血压曲线不会出现变化。很遗憾，实验结果缺少了部分实验结果。
（6）闭气：纪录对照血压曲线后，用棉花堵住气管插管的两个开口，观察并记录血压曲线变化。当血压明显上升时，打开气管插管的开口，并记录血压的恢复过程。
图5 O2含量减少对血压的影响
结果分析：阻塞呼吸后，血压虽略有升高，且出现了血压的周期性搏动。分析出现这一现象的原因为：阻塞呼吸后，血液中O2的含量下降，CO2的含量增加，***导致血压升高。由于阻塞呼吸，家兔呼吸困难，身体出现规律性挣扎，因此对血压造成了周期性的影响。
（7）生理盐水对血压的影响：纪录对照血压曲线后，用20ml注射器，从而缘静脉注入15-20ml 生理盐水，观察并记录血压变化及恢复曲线。
图6 注射生理盐水后血压的变化
结果分析：注射生理盐水后血压有一定程度的升高，过一段时间后恢复到正常水平。原因为：注射大量生理盐水后，血管内液体的量增加，循环血量增加，血压出现一定程度的上升，刺激压力感受器，引起减压反射，使血压最终恢复到正常水平。
（8）按压颈动脉窦：纪录对照血压曲线后，用手指按压颈动脉窦（下颌下方内侧），观察并记录血压变化。当血压明显下降时，则停止按压，待血压恢复。（如果血压反而升高，说明按压的是血管，需要重新寻找按压位置）。
图7 按压颈动脉窦后血压的变化
结果分析：按压颈动脉窦后，血压由正常状态下的收缩压100mmHg，舒张压为80mmHg，下降到收缩压80mmHg以下，舒张压60mmHg以下。是因为：在外界压力刺激下，颈动脉窦压力感受器感受到压力的上升，并引起减压反射，致使血压降低。解除外在压力后血压逐渐恢复到正常值。
（9）夹闭对侧颈总动脉：轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线，用棉线结扎（于结扎前纪录动脉通常时的血压曲线），观察并记录血压变化。
图8 结扎颈总动脉对血压的影响
结果分析：结扎一侧颈总动脉后，动脉中的血量减少，血压降低，导致同侧的颈动脉窦压力感受器感受到的压力减小，引起增压反射，导致家兔血压升高：由正常状态下的收缩压100mmHg，舒张压80mmHg，升高到收缩压120mmHg，舒张压100mmHg。一段时间后，收缩压和舒张压都有所降低，但由于是对颈总动脉进行的不可回复性结扎，血压恢复稳定后，仍然略高于最初血压，在接下来的实验中，初始值会受到一定程度的影响。
【注意事项】
1. 注射时注意：先从耳缘静脉尽可能远心端注射（第一次注射不成功时，可稍向近心一些注射。注射时速度要缓慢，并随时观察动物情况。当动物四肢松软、呼吸变深变慢、角膜反应迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。
2. 手术时，注意切口不可偏离气管上方，不可横向剪断肌肉，以免造成血管断裂而出血。切口也不要过于扩大，以免造成气胸。
3. 气管插管时，切勿损伤甲状腺及其血管，否则会出血不止。
4. 分离神经、颈总动脉时，要小心，避免将神经、血管弄断。
5. 在动脉上壁剪开口时，不可只剪开血管外包膜，也切勿剪断整个动脉，剪口的大小约为管径的一半。
6. 动脉插管时，插管应与动脉血管的方向一致，以防止插管尖端扎破动脉管壁。如果手感滞涩，说明插管并未进入动脉，必须退出插管，重新剪口再插。
7. 动脉插管不可因扎线松动而滑出，亦不可漏液。
8. 按压颈动脉窦时，如血压升高，说明按压的是血管，需重新寻找按压位置。
参考文献
[1]解景田，刘燕强，崔庚寅.家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导.生理学实验，96-98
[2]解景田，刘燕强，崔庚寅.家兔动脉血压的神经和体液调节.生理学实验，98-105
[3]王玢，左明雪.中枢神经系统对运动的控制和调节.人体及动物生理学（第3版）.高等教育出版社，101-102
机能综合实验报告——动脉血压调节
一、实验名称——动脉血压调节和失血性休克（一） 二、实验目的 掌握动脉血压的神经和体液调节 三、合作同学 四、实验原理 ( 1 )神经调节 每搏输出量 血压升高主动脉窦心率 颈动脉体 缩血管中枢舒张外周阻力减小血压下降 五、实验对象 家兔（新西兰大白兔），2.5公斤，雄性。 六、实验器材和药品 手术器械一套，计算机多导生理记录仪一台、刺激电极、微循环观察装置，带三通针头的细塑料管2个，注射器若干，20%乌拉坦，0.3%肝素，去甲肾上腺素针剂，0.02g/L 肾上腺素，0.03g/L去甲肾上腺素，0.01g/L异丙肾上腺素，5g/L酚妥拉明。 七、实验方法 1.家兔称重后背位交叉固定于手术台，颈部备皮。 2.20%乌拉坦耳缘静脉注射麻醉，沿兔颈部正中皮肤作6~8cm切口，分离气管，再沿气管 分离两侧颈总动脉、一侧迷走神经和减压神经，穿线备用。 3.自耳缘静脉注入0.3%肝素5ml/kg抗凝。 4.一侧颈总动脉插管并与计算机多导生理记录仪相连。 5.观察正常血压并记录曲线带血压稳定后开始实验。 6.按下列顺序注入药品 肾上腺素去甲肾上腺素异丙肾上腺素酚妥拉明5分钟后去甲肾上腺素肾上腺素异丙肾上腺素。 说明：给药体积均为0.2ml/kg；每次给药后可住生理盐水，将死腔内的药液注入静脉； 给药后待血压平稳后再给另一种药物。 （1）夹闭一侧颈总动脉 （2）刺激一侧减压神经，双侧结扎剪断后再分别刺激减压神经中枢端和外周端
（3）结扎并剪断一侧迷走神经观察 八、实验结果及结论 1.正常波形 2. 注射肾上腺素 3. 去甲肾上腺素
4. 异丙肾上腺素 5.酚妥拉明 6.去甲肾上腺素
家兔动脉血压的调节(新)教学内容
实验日期：2015年12月16日 带教教师：米鍇 小组成员：彭佳杏（201402534）钟佳冀（201401197），陈靖珊（201401328），周丹婷（201401370），郭碧润（201401385） 专业班级：2014级临床十三大班，临床法语班 家兔动脉血压的调节 一、实验目的 1.掌握心血管活动调节的神经、体液机制 2.进一步熟悉家兔颈部解剖结构、学习直接测定家兔动脉血压的急 性实验的方法。 3.观察神经、体液因素对心血管活动的影响。 二、实验原理 在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种
相对稳定性是通过神经调节，体液调节和自身调节来实现的。神经调节主要通过颈动脉窦主动脉弓压力感受性反射来实现。原理如下图。 体液调节包括肾素血管紧张素系统，肾上腺素和去甲肾上腺素（主要），血管升压素。 心血管活动的变化可以通过血压的变化间接加以判断。血压的变化可通过血压换能器和Mdelab 系统记录并处理，得出结果。 二、 实验仪器设备 生物信号采集系统，兔手术台，兔手术器械、塑料动脉插管及三通开关、动脉夹、注射器、双凹夹、铁支架、保护电极、丝线、 1 mg/Kg 的肝素钠注射液、乌拉坦溶液、去甲肾上腺素、眼科剪
四、实验方法与步骤 1、称重、麻醉、固定、剪毛 2、颈部手术 1)气管插管 2)分离右侧减压神经（穿2根线备用）、交感神经、迷走神经（穿1 根线备用）、颈总动脉（穿1根线备用） 注意：减压神经、交感神经、迷走神经、颈总动脉位于气管两旁深层肌肉内的血管神经鞘内。 按先神经后血管，先细后粗的顺序分离 按减压神经、交感神经、迷走神经的顺序分离神经，穿线，末端打结备用。 3)分离左侧颈总动脉（穿2根线打结备用），1mg/Kg 的肝素钠注射 液全身抗凝，做颈总动脉插管，连接血压换能器 颈总动脉插管： 血管游离2以上（注意避开分支），穿2根线备用 远心端（头端结扎） 近心端用动脉夹夹闭动脉（留出一定的操作空间）靠近结扎点（头端）于血管前壁做V型切口 插入动脉插管固定 轻轻松开动脉夹（先不要拿开），观察是否渗血，结扎是否紧 换能器用胶布粘在桌子上，专人照看 五、实验结果
家兔血压调节实验报告解读
实验报告 专业班级：康复治疗技术2班实验小组：第四组姓名：卢锦锟实验日期：2015年11月10日 （一）实验项目：家兔动脉血压调节 （二）实验目的： 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等）。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 （三）基本原理：（要求对写出关键点） 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL 、1mL ）等；3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、 0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品
1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素：去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素：异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管（在全身血管中比例较大）持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素：肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。 5、静脉注射1%酚妥拉明：α受体阻断剂，α受体的作用：α受体为传出神经系统的受体，根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。 α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管，以及部分内脏血管，激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌，激动时瞳孔开大肌收缩，瞳孔扩大。 α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上，受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少，对其产生负反馈调节作用。 （四）实验主要设备和仪器、药品和用品（要求分类、简洁、清晰表述）
生理学实验 家兔动脉血压的调节
实验二十 家兔动脉血压的调节 Regulation of Arterial B1ood Pressure in Rabbit 【实验目的】 学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法，观察神经和体液因素对心血管活动的调节。 【实验原理】 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强，传导加速，从而 使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经，兴奋时心率减慢，心脏收缩力减弱， 传导速度减慢，从而使心输出量减少。 支配血管的自主神经绝大多数属于交感缩血管神经，兴奋时血管收缩，外周阻力增加。 同时由于容量血管收缩，促进静脉回流，心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用调节心血管的活动，改变心输出量和外周阻力，从而调节动 脉血压。 心血管活动除受神经调节外，还受体液因素的调节，其中最重要的为肾上腺素和去甲 肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。肾上腺素对α受体与β受体均有激 活作用，使心跳加快，收缩力加强，传导加快，心输出量增加。它对血管的作用取决于两种 受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活α受体，对β受体作用很小，因而使外周阻力 增加，动脉血压增加，其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时，血 压升高，启动减压反射，可反射性地引起心跳减慢。本实验通过动脉血压的变化来反映心血 管活动的变化。 【实验对象】 家兔。 【实验材料】 哺乳类动物手术器械，兔手术台，BL-410 生物信号采集处理系统，压力换能器，刺激 电极，照明灯，万能支台，双凹夹，烧瓶夹，试管夹，气管插管，动脉夹，三通开关，动脉 导管，注射器(1ml、5ml、20ml)，有色丝线，纱布，棉花，1.5％戊巴比妥钠，1000U/ml 肝 素生理盐水，1:10000 肾上腺素溶液，1:10000 去甲肾上腺素溶液，1:10000 乙酰胆碱溶液， 生理盐水。 【实验步骤】 1．连接实验仪器装置 将压力换能器固定在铁支架上，换能器的位置大致与心脏在同 一水平。将动脉导管经三通开关与压力换能器正中的一个输入接口相接。压力换能器的输入 信号插头与生物信号采集处理系统的信号放大器输入盒的某通道相连。 用注射器通过三通开 关向压力换能器及动脉导管内注满肝素生理盐水，排尽气泡，然后关闭三通开关备用。 将刺激电极输入端与生物信号采集处理系统的刺激输出口相连。 2．手术 (1)动物的麻醉与固定 用 1.5％戊巴比妥钠以 2.0ml／kg 的剂量由耳缘静脉缓慢注入。 动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上。 (2)气管插管 剪去颈部的毛，沿颈正中线作5~7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉， 暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线，于甲状软骨下方 2～3cm处作“⊥”形切口，插入 气管插管，以丝线结扎固定。 (3)分离颈部神经和血管 在气管两侧辨别并分离颈总动脉、迷走神经、交感神经和减 压神经。三条神经中，迷走神经最粗，交感神经次之，减压神经最细，常与交感神经紧贴在 一起。分别在各神经下方穿以不同颜色的丝线备用。分离时特别注意不要过度牵拉，并随时 用生理盐水湿润。颈总动脉下方穿两条线备用。 (4)插动脉插管 静脉注射肝素(1000U／kg)以抗血凝。在左侧颈总动脉的近心端夹一动
家兔动脉血压的神经体液调节(动静脉)
家兔动脉血压的神经体液调节 【实验目的】 1.学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法 2.观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响 【实验材料】 家兔 器材：手术台，止血钳，眼科剪，BL420E+生物机能分析系统，气管插管，动脉套管，动脉夹，保护电极，照明灯，纱布，棉球，丝线，注射器 试剂：生理盐水，肝素，乌来糖（麻醉剂），肾上腺素，乙酰胆碱 【实验步骤】 1.手术 （1）麻醉取家兔一只，称重，耳缘静脉注射麻醉剂（1g/kg）进行麻醉。麻醉过程要缓慢，当动物角膜反应迟钝，掐其大腿无反应，即可停止注射，避免过度麻醉致死。 （2）将动物背位交叉固定，将颈部喉结下部毛剪掉。 （3）仅靠喉结下缘，沿颈部正中线做一长约5-7cm的皮肤切口，将皮下结缔组织钝性分离，至露出气管，穿线，用手术刀在气管上做一横切口，插入气管插管，结扎。 （4）分离颈部神经血管：分离胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌及其周围结缔组织，在接近气管外侧，有一条较细，壁厚的血管，即为主动脉血管（可看出里面血流规律性搏动）。与主动脉伴行的有两条较粗的神经，最粗的为迷走神经，其次为交感神经，两者之间有一条很细的神经，减压神经。但减压神经的位置不固定，两条较粗的神经附近的细小神经都有可能是减压神经，可以进行刺激试探。确定迷走神经和减压神经后，分离出减压神经，迷走神经，主动脉血管，分别穿线备用。 （5）动脉套管插入：动脉套管插入前，需准备好压力换能器记录血压的装置。用注射器将肝素生理盐水注入套管，至将其中所有空气由插孔处排出，用肝素生理盐水代替。注入处用止血钳将胶管夹住。保证其中不能有空气。准备好动脉套管装置后，用动脉夹夹住近心端，远心端动脉结扎，在两者之间剪一小口，迅速插入动脉套管（动作迅速，否则动脉管腔急剧收缩，难以插入套管），用线将动脉插管固定于动脉内，并挂在套管（缠一圈胶布）上，以免滑脱。 （6）松开动脉夹，即可看到少量动脉血液冲入动脉套管。此时即可开始进行试验，记录曲线。 2.曲线描记 （1）描记一段正常曲线，识别一级波（心波），二级波（呼吸波）。 （2）提起另一侧颈总动脉的备用线，动脉夹夹闭5-10s，观察记录血压变化，分析原因。（3）中等强度的点刺激刺激另一侧减压神经，观察血压变化。双结扎后切断，再刺激减压神经神经的中枢端和外周端，观察记录血压变化。 （4）对另一侧迷走神经进行同样处理，分别观察双结扎切断神经前、后的血压变化。（5）耳缘静脉注射肾上腺素，观察血压变化。 （6）耳缘静脉注射乙酰胆碱，观察血压变化。
家兔血压变化
结果讨论分析： 1血压的二级波是由于呼吸运动引起的血压波动。心搏为一级波，呼吸波为二级波。吸气时先是下降，继则上升；呼气时先是上升，继则下降，频率与呼吸频率一致。 2.夹闭对侧颈总动脉血压升高 3.刺激迷走神经血压下降 刺激迷走神经后，家兔的血压、心率恢复较快，说明迷走效应持续时间不长。 4. 刺激减压神经血压下降 刺激减压神经后，心率并不是预料中的无明显变化，变化明显，但不如刺激迷走神经显着。验证了刺激交感神经引起了迷走中枢的活动。 5.静脉注射0.1g/L去甲肾上腺素0.5ml，血压升高 注射去甲肾上腺素后，血压和心率都保持了长时间的变化，说明可能去甲肾上腺素对血压和心率的调节能力持续性好。 6.静脉注射10-2g/L乙酰胆碱（0.1ml/kg体重），血压下降 首先，乙酰胆碱作用与心脏的M受体，引起心率减慢，心肌收缩力减弱，房室传导减慢甚至阻滞，心输出量明显减少，血管舒张血压下降。其次，乙酰胆碱还作用于血管内皮的M受体，使血管内皮细胞释放“松弛因子”，引起血管平滑肌舒张，外周阻力下降。最后，乙酰胆碱激活交感神经的突触前M-R，产生突触前调制效应，导致交感神经末梢释放去甲肾上腺素减少，从而减少交感缩血管紧张效应。这不但可降低外周阻力，减少心输出量，还可扩张容量血管而减少循环血量，最终也导致了血压的下降。 注射乙酰胆碱后，血压急剧下降，而心率暂时没有减慢，可能是因为血压通过血压感受器对心率本身有调节效应，之后血压较快恢复之后，心率才明显减慢。这里血压和心率是交错受到乙酰胆碱调节的，但最终心率调节持续时间更长，说明乙酰胆碱更趋向于以调节心率为目的。 实验结论： 1.从以上实验分析中可以发现，无论是血管壁的被动收缩还是刺激不同的神经，其本质都是通过心交感神经与心迷走神经对心血管系统产生影响。即直接支配心血管活动的神经为交感神经和迷走神经。由于这两种神经节后神经末梢分别释放肾上腺素（去甲肾上腺素）和乙酰胆碱作为递质，因此肾上腺素（去甲肾上腺素）和乙酰胆碱所产生的效应与刺激两种神经是相对应的。 2.从以上实验分析中，可以总结出心输出量是影响动脉血压的因素：心输出量由两个因素决定：心搏出量和心率。心搏出量增加时，心脏射血增多，动脉血压会升高（主要是收缩压），心率增加时，心舒期缩短，流向外周的血液不充分，因此心舒末期留于主动脉的血量增多，致使血压增大。心迷走神经或心交感神经兴奋，作用于心肌细胞，控制心输出量，会影响血压的升降。
兔子实验报告
生理兔子实验报告 主题：血压测量、呼吸运动调节 实验班级：151541 实验小组：第三组 实验日期：2016年5月31日 具体分工：主刀：李睿哲 副手：朱梦洁、周紫星 麻醉：陈海芹、谢明思 器械管理：李部 实验数据记录整理：毕长鹏 一、实验目的： 通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。 二、实验原理： 正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显着影响各组织、器官的正常活动。动脉血压是心血管功能活动的综合指标。通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。 呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适
应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。 三、实验器材： 实验动物：一只健康兔子（ 实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素? 实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针 四、实验步骤 1.实验仪器的准备 首先打开计算机采集系统，通道1接通压力换能器，通道2接通呼吸流量换能器，从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的（学生)实验”，使显示器显示压力和呼吸的读数，并调节至合适比率。 2.连接压力传感器和液体传递系统 用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水，使之充满液体。 3.动物准备 1)术前准备
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经体液调节 实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要。 本实验应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器。 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管
内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。 3、动物的准备 （1）按照实验4-9方法，麻醉家兔并进行颈部手术，插入气管插管、分离主动脉神经。同时分离迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过，轻轻张开止血钳，分离出2~3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁，外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线，分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经（一侧动脉用于插管侧压，另侧动脉实验用）。由于家兔的品种不同，个体之间也有差异，常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认，蓄意对血压的影响为准。 （2）动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素（200U？kg体重）以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下：将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎（务必扎紧，以防渗血），然后在另一备用线的向心侧（尽可能近心端），用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线，用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方，沿向心方向斜向剪开动脉上壁（注意：不可只剪开血管外膜，也切勿剪断整个动脉，剪口大小约为管径的一半）。一手持弯头眼科镊，将其一个弯头从剪口处插进动脉少许，轻轻挑起剪开的动脉上壁，另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅，可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁，另一手拿住动脉插管，顺势轻轻推进至6~8mm左右（如果手感滞涩，说明插管并未进入动脉，必须退出插管，重新剪口再插），用备用线将动脉连同进入的插管扎紧（插管不可因扎线松动而滑出，亦不可漏液），并将余线系在插管的固定侧支上，以免滑脱。注意：插管应与动脉血管的方向一致，以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。 4、实验观察
家兔呼吸运动神经的调节(实验报告)
家兔呼吸运动神经的调节 【实验目的】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。 3.学习哺乳类动物的手术操作，掌握气管插管和神经血管分离术 4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制 5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理 【实验器材】 1.1 动物体重 2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄不拘。 1.2 器材BL420E+生物信号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer） 1.3 药品试剂20%乌来糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2。 【实验步骤】 1. 家兔称重，按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔，家兔麻醉后将其仰卧，固定四肢和头。 2. 颈部手术颈正中切口5～7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用，用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。 3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管，结扎固定。 4.将气管插管一端连接呼吸换能器。
5观察记录（observations) 1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量 2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化 3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，观察家兔呼吸运动的变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量，按4 ml/min速度静脉注射，观察呼吸变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 【实验结果】 图1.正常呼吸曲线
优质《家兔动脉血压的神经体液调节》实验报告
优质《家兔动脉血压的神经体液调节》实验报告实验目的：探讨神经和体液因素对动脉血压的调节作用。 实验方法：采用液压传递系统直接测量和记录动脉血压的急性实验方法。结果夹闭右颈总动脉，血压升高（P<0.01），电刺激减压神经，血压降低（P>0.05），电刺激迷走神经，血压降低（P<0.05），注射去甲肾上腺素，血压升高（P<0.01）。结论夹闭右颈总动脉和静脉注射去甲肾上腺素使血压升高，刺激减压神经和迷走神经使血压下降。 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常情况下，人和高等动物的动脉血压在神经和体液因素的调节下保持相对稳定，因此可以通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反应各种因素对心血管功能活动的调节及影响。本实验即是探讨神经和体液因素对动脉血压的调节作用。 1、实验材料： 家兔，哺乳动物手术器械；血压换能器，生物信号采集处理系统，输液装置；氨基甲酸乙酯，生理盐水，去甲肾上腺素，乙酰胆碱 2、实验方法： 2.1 实验数据连接及参数设置动脉插管固定于血压换能器上，血压换能器固定于铁支柱上，高度与心脏处于同一水平面。压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。参数如下：开启RM6240系统，在“实验”菜单中选择“兔动脉血压调节”，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12kPa，采样频率800Hz，扫描速度2s/div。连续单刺激方式，刺激强度5-10V，刺激波宽2ms，刺激频率30Hz。 2.2 手术准备 2.2.1 家兔称重后，按1g/kg体重的剂量于耳缘静脉注射200g/L的氨基甲酸乙酯麻醉。动物麻醉后仰卧于手术台上，固定四肢，前肢交叉固定，用棉绳勾住兔门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁架上。 2.2.2 减去颈部被毛，切开颈部皮肤5-7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘，用玻璃分针仔细分离右侧减压神经、右侧迷走神经和右侧颈总动脉，穿线备用，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，各穿两根线备用。 2.2.3 颈外静脉插管先用血管夹夹住右侧颈外静脉近心端，再在远心端用线
影响家兔血压的因素
影响家兔血压的因素 福建医科大学教案 （首页） 课程名称：机能学 授课系别：临床本科 年级： 对象班级：临床本科 实验五动脉血压的调节 教学目的观察一些因素对动脉血压的影响 本单元（章节） 9 学时数课程大课（）类型实验课（√）讨论课（） 教学内容 1. 实验目的原理 2. 操作步骤 3. 观察项目与预计结果夹闭颈总动脉；牵拉颈总动脉；电刺激迷走神经；电刺激减压神经； 静脉注射去甲肾上腺素；静脉注射肾上腺素；静脉注射异丙肾上腺素；静脉注射乙酰胆碱 4. 学生操作 5. 总结 6. 整理实验室 重点（△）时间难点（○）分配疑点（）（分钟） 举例/教具 10 45 20 255 15 15 讨论、思考题、作业：参考书目： 1.生理学朱大年编着第8版北京：人民卫生出版社 2.机能学实验林默君等编着 授课教师：张明芳 2015年9月24日 实验动脉血压的调节 一、目的：观察一些因素对动脉血压的影响 二、材料：家兔、血压换能器、手术器械、D-951实验系统、20%乌拉坦、生理盐水、%肝素、1/10000去 甲肾上腺素、1/10000肾上腺素、1%立其丁、%心得安、1/1000多巴胺、1/10000异丙肾上腺素、1/10万乙酰胆碱、1%阿托品三、实验方法： 1、麻醉
2、固定 3、气管插管 4、分离右颈总动脉、减压神经、迷走神经 5、左颈总动脉插管 6、装置及仪器联接 四、观察项目、结果、讨论 1、刺激支配心脏的迷走神经，引起心率下降、心输出量下降，导致动脉血压下降；刺激减压神经，导致动脉血压下降，减压神经为主动脉弓压力感受器传入神经，刺激模拟压力感受器传入增加，经减压反射引起动脉血压下降；牵拉颈总动脉刺激颈动脉窦压力感受器，压力感受器传入增加，经减压反射引起动脉血压下降；夹闭颈总动脉，使颈动脉窦压力感受器所受的刺激减弱，经减压反射引起动脉血压上升。 2、NA主要作用于α受体，使外周阻力增加，心输出量增加，血压上升。Adr主要作用于β受体，使心输出量增加，外周阻力增加，血压上升。 3、立其丁阻断α受体，使外周阻力下降，引起舒张压下降。使用立其丁后NA主要作用的α受体被阻断，使 NA缩血管作用减弱，而NA 对β受体的作用因β1、β2受体作用相反，可能互相抵消，所以NA升血压作用很弱。Adr主要作用于β受体，阻断α受体对其影响较小，其作用以β1受体为主，血压上升。异丙肾上腺素主要作用于β受体，其效应与被立其丁阻断后的Adr相似。心得安为β受体阻断剂，其主要作用为扩张血管、抑制交感中枢、抑制肾素分泌，使血压下降。 4、多巴胺兴奋β1、α、DA受体，因立其丁和心得安已经阻断α、β受体，这时主要作用于DA受体，使血压下降。Ach主要作用于M受体，使心率下降，血压下降。当M受体被阿托品阻断后，Ach主要作用于N1受体，出现类似于交感神经兴奋的作用。 5、放血后，血容量下降，血管充盈压下降，动脉血压下降；经过一段时间以后，机体出现代偿：⑴通过减压反射，使血压有一定的恢复⑵血压下降通过容量感受器，引起ADH分泌增加，再使尿量减少、外周阻力增加、容量血管收缩，使血压增加。由于阻力血管收缩大于容量血管收缩，毛细血管血压下降，组织液回收增加，有利于血容量恢复。以上因素都有利于血压逐渐恢复。 回输血后，血容量减少现象得到彻底纠正，血压恢复正常。
家兔血压实验报告
家兔血压实验报告文件排版存档编号：[UYTR-OUPT28-KBNTL98-UYNN208]
家兔血压实验报告 家兔血压实验报告 实验报告 实验次序:一实验项目:家兔血压调节 班级:11临本姓名:符宏展学号:112号 实验类型: 二、实验操作原始记录及实验结果的分析 实验时间:2016年4月11日 马健明符宏展朱佛妹叶超群黄小花张鹏黄锦霞 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲 反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器 连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器, 由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照 明灯,纱布,棉球,丝线,注射器,生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素,肾上腺素,已酰胆碱 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器
家兔动脉血压调节实验讲课教案
家兔动脉血压调节实 验
一、家兔动脉血压调节 （一）实验目的 本实验通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化。目的在于间接地观察心血管活动的神经体液性调节和学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法。 （二）实验原理 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强，传导加速，从而使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经，兴奋时心率减慢，心房收缩力减弱，房室传导减慢，从而使心输出量减少。 支配血管的植物性神经，绝大多数属于交感缩血管神经，兴奋时使血管收缩，外周阻力增加。同时由于容量血管收缩，促进静脉回流，心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用，调节心血管的活动，改变心输出量和外用阻力，从而调节动脉血压。 心血管活动除受神经调节外，还受体液因素的调节，其中最重要的为肾上腺素和去甲肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。肾上腺素对α与β受体均有激活作用，使心跳加快，收缩力加强，传导加快，心输出量增加。它对血管的作用取决于两种受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活受体α，对β受体作用很小，因而使外周阻力增加，动脉血压增加。其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时，血压升高，可反射性地引起心动过缓。 （三）实验材料 1.实验对象：兔。
2.器材：四道生理记录仪、血压换能器、电刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、照明灯、铁支架、双凹夹、烧瓶夹、试管夹、气管插管、动脉夹、三通管、塑料动脉插管、放血插管、注射器（lml、5ml、 20ml），有色丝线、纱布、棉花、1％戊巴比妥钠、1：1000肝素、1：10000去甲肾上腺素、12．5U/ml肝素生理盐水，生理盐水。 （四）实验方法 1.实验记录装置 将血压换能器固定在铁支架上，换能器的位置大致与心脏在同一水平。将换能器电缆与二道生理记录仪的血压放大器输人插座相连（图6－18）。按照前述二道记录仪的使用方法调整记录仪。对血压放大器定标，校正选择开关拨至 13.3kPa（100mmHg），灵敏度置于50，记录描笔上移2cm。通过三通管向换器压力小室及动脉插管内注满肝素生理盐水，排尽气泡，并预先加压至 13.3kPa，检查有无漏液。 四道生理记录仪——血压换能器装置 记录仪灵敏度一般置于 50或 100档，计时置 10s，走纸速度 0.5～lmm／s。 2.手术 动物的麻醉与固定：用l％戊巴比妥钠以30～35mg／kg体重的剂量由耳缘静脉缓慢注入。动物麻醉后，背位固定于手术台上。 气管插管：剪去颈部的毛，沿颈正中线作5～7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉，暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线，于甲状软骨下方2～3cm处作”“⊥”形切口，插入气管，以丝线结扎固定。
【实验报告】家兔动脉血压的神经体液调节-影响尿生成的因素
实验六：家兔动脉血压的神经体液调节 影响尿生成的因素 【实验目的】 1. 间接观察心血管活动的神经体液性调节 2. 学习哺乳动物动脉血压的直接测定方法 3. 学习用膀胱插管法记录尿量的方法 4. 观察与分析几种因素对尿生成的影响 【实验原理】 在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经体液因素的调节而实现的。参与支配心血管活动的神经主要有心交感神经和副交感神经。体液因素主要为肾上腺素和去甲肾上腺素。他们的作用主要是通过对心脏收缩力、心率、房室传导速度、心输出量、外周阻力等的调节来实现的。 尿的生成过程包括三个相互联系的环节： 肾小球的滤过：血浆中除了红细胞和绝大部分血浆蛋白以外的成分，都从肾小球滤过而到达肾小囊的囊腔，形成原尿。 肾小管与集合管的重吸收：原尿进入肾小管，经过肾小管、集合管的重吸收处理，约99％的水分及Na+、K+和葡萄糖等成分被重洗手回血液中。 肾小管和集合管的分泌：在重吸收的同时，肾小管与集合管还能通过分泌活动，使某些血浆成分清除到管腔中，最后从尿中流出。 凡能影响这三个过程的神经体液等因素，都可影响尿的生成，引起尿量的变化。 【实验材料和器材】 仪器：兔手术台，生理记录仪，压力传感器，保护电极。 器材：哺乳动物手术器械，铁支架，双凹夹，气管插管，动脉夹，动脉插管，止血钳，注射器，棉线，纱布，棉花。 材料：家兔。 试剂：25％乌拉坦，1：10000肾上腺素，12.5U/ml肝素生理盐水，生理盐水（台式液）【实验步骤】 1. 连通液导系统 将压力传感器的一侧支管，通过输液管连接动脉插管。用装有20mL12.5U/ml肝素的注射器向另一侧支管内推注，使整个液导系统充满液体后，用止血钳夹住推注肝素端的侧管。 注意：液导系统内不可有气泡。 2. 动物的麻醉与固定 取一只动物，称重，2.3kg。用25％乌拉坦以4 mL/kg体重的剂量，由耳缘静脉远端缓慢注入，共注入约8ml的药量。动物麻醉后背位固定于兔手术台上。
兔血压实验报告
实验题目：传出神经系统药物对家兔心血管系统 的影响 班级：12级临七3班姓名：廖梦宇学号： 2012021320 一、实验原理： 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受 体而产生心血管效应，导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化，分析肾上腺素受体 激动剂与拮抗剂之间的相互作用。 二、实验目的： 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率 的影响 三、实验步骤： 1.麻醉：取家兔，称重，用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉 注射； 2. 备皮：麻醉后，将家兔仰位固定于手术台上，剪去颈部的毛，
正中切开颈部皮肤； 3. 气管插管：分离气管，在气管上作一倒“T”型切口，插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管：自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm，动脉下穿两根丝线。结扎远心端，近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压：将压力传感器连接于主机前面板的1通道，打开BL-410生物机能实验系统，将1通道设置成血压和心电，点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min，记录正常血压和心率。 7. 给药：按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药：按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药：按下列顺序静脉给药
家兔动脉血压调节
不同因素对家兔动脉血压的影响 摘要：目的掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法，以及家兔动脉血压的体液因素（去甲肾上腺素、乙酰胆碱）与神经因素（迷走神经及主动脉神经）对心血管活动的影响。方法运用动脉插管的方法，分别静脉注射NE和Ach、改变血容量、电刺激迷走神经和主动脉神经的中枢端及外周端，并用生物信号采集处理系统RM6240记录家兔动脉血压的变化情况。结果加入NE后，平均动脉压升高，心率减慢；加入Ach后，心率变慢，平均动脉压下降；突然夹闭一侧颈总动脉后，观察到兔动脉血压升高，突然松开后，血压下降，回复到正常水平；刺激完整减压神经及其中枢端均可引起血压下降，而刺激该神经外周端基本不变；刺激迷走神经和迷走神经外周端都能引起明显的减压反应，而刺激迷走中枢端则没有减压反应，只是血压稍有抬升变化。结论体液因素与神经因素最终都通过产生与α受体β受体以及Μ受体的作用产生对心血管活动的影响，NE能使血压上升；Ach，刺激迷走和减压神经能使血压下降；同时证明减压神经是传入神经，迷走神经是传出神经。 关键词家兔；动脉血压；动脉插管；NE；Ach；迷走神经；主动脉神经 1.材料与方法 1.1.实验对象：家兔； 1.2.实验仪器：RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，电 刺激连线，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，铁架台，婴儿秤，输液装置，照明灯，有色丝线，纱布； 1.3.实验药品和试剂：20%氨基甲酸乙酯，1000 U/mL肝素，0.1g/L去甲肾上腺素，0.01g/L 乙酰胆碱，生理盐水； 1.4.实验方法 1.4.1.动物准备： 1.4.1.1.麻醉固定：家兔称重后，按5ml/kg体重剂量耳缘静脉注射20%氨基甲酸乙酯。待 兔麻醉后，将其仰卧放置于兔台上，先后固定四肢及兔头。 1.4.1. 2.手术：用手术剪剪去颈部皮肤被毛并切开颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌肉暴露 颈部气管和血管神经鞘，用玻璃分针仔细分离右侧主动脉神经和迷走神经，穿细线 备用，用玻璃分针分离两侧颈总动脉，各穿一线备用。 1.4.1.3.动脉插管：在左颈总动脉中枢端结扎，外周端用动脉夹夹住，并在动脉下端预先穿 以细线备用。用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字型切口，将动脉插管向 心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。打开动脉夹。 1.4. 2.实验装置与连接： 1.4. 2.1.将压力换能器固定于铁支架上，使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平 面上。然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。压力换能器的另一 端与三通管相连。三通管的一个接头与动脉插管相连。在将动脉插管插入左颈总动 脉前，先用盛有肝素的注射器与三通管另一接头相连，旋动三通管上的开关，使动 脉插管与注射器相通，推动注射器，排空动脉插管中的气体，使动脉插管内充满肝 素溶液，然后关闭三通管。 1.5.实验观察： 1.5.1.记录正常血压曲线。 1.5.1.1.静脉注射去甲肾上腺素：家兔耳缘静脉注射0.3ml去甲肾上腺素，记录观察血压变 化，待血压曲线显示正常后再进行下一个实验。 1.5.1. 2.静脉注射乙酰胆碱：家兔按0.1ml/mg体重剂量耳缘静脉注射0.01g/L乙酰胆碱，
家兔动脉血压调节实验解读
一、家兔动脉血压调节 (一实验目的 本实验通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化。目的在于间接地观察心血管活动的神经体液性调节和学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法。 (二实验原理 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强, 传导加速, 从而使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经,兴奋时心率减慢,心房收缩力减弱, 房室传导减慢,从而使心输出量减少。 支配血管的植物性神经, 绝大多数属于交感缩血管神经, 兴奋时使血管收缩, 外周阻力增加。同时由于容量血管收缩,促进静脉回流,心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用, 调节心血管的活动, 改变心输出量和外用阻力, 从而调节动脉血压。 心血管活动除受神经调节外, 还受体液因素的调节, 其中最重要的为肾上腺素和去甲肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性, 又有特殊性。肾上腺素对α与β受体均有激活作用,使心跳加快,收缩力加强,传导加快,心输出量增加。它对血管的作用取决于两种受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活受体α,对β受体作用很小,因而使外周阻力增加,动脉血压增加。其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时, 血压升高,可反射性地引起心动过缓。 (三实验材料 1. 实验对象:兔。 2. 器材:四道生理记录仪、血压换能器、电刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、照明灯、铁支架、双凹夹、烧瓶夹、试管夹、气管插管、动脉夹、三通管、塑料动脉插管、放血插管、注射器(lml 、 5ml 、 20ml ,有色丝线、
纱布、棉花、 1%戊巴比妥钠、 1:1000肝素、 1:10000去甲肾上腺素、 12. 5U/ml 肝素生理盐水,生理盐水。 (四实验方法 1. 实验记录装置 将血压换能器固定在铁支架上,换能器的位置大致与心脏在同一水平。将换能器电缆与二道生理记录仪的血压放大器输人插座相连(图 6-18 。按照前述二道记录仪的使用方法调整记录仪。对血压放大器定标,校正选择开关拨至 13.3kPa(100mmHg ,灵敏度置于 50,记录描笔上移 2cm 。通过三通管向换器压力小室及动脉插管内注满肝素生理盐水,排尽气泡,并预先加压至 13.3kPa,检查有无漏液。 四道生理记录仪——血压换能器装置 记录仪灵敏度一般置于 50或 100档,计时置 10s,走纸速度 0.5~lmm /s 。 2. 手术 动物的麻醉与固定 :用 l %戊巴比妥钠以 30~35mg /kg 体重的剂量由耳缘静脉缓慢注入。动物麻醉后,背位固定于手术台上。 气管插管 :剪去颈部的毛,沿颈正中线作 5~7cm 的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉, 暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线,于甲状软骨下方 2~3cm 处作”“⊥”形切口,插入气管,以丝线结扎固定。 分离内脏大神经:将动物右侧卧位。在腰三角作一长 4~5cm 的斜行切口,逐层分离肌肉,直至见到腹膜, 然后从腹膜后找到左肾, 将左肾向下推压,在其右上方可见到一粉红色黄豆大小的肾上腺。沿肾上腺向上寻找内脏大神经.分离后穿 分离颈部神经和血管 :在气管两侧辨别并分离颈总动脉、迷走神经、交感神经和降压神