紫草素综述

紫草素的提取分离、定性定量分析

摘要：紫草素是一类萘醌类化合物，主要存在于常用中药紫草中。主要对紫草素的研究状况，包括紫草素的资源分布、紫草素的提取分离、定性定量分析等多种方法的现状进行综述。

关键词:紫草素; 紫草素的资源分布; 提取分离; 定性定量分析

前言：紫草素是一类脂溶性萘醌类成分，主要来源于我国常用中药紫草中，其结构式如图所示: O O H O

O H C H O R

C H 2C H C (C H 3)2

紫草素的颜色会随 pH 增加而发生改变，具有挥发性，能随水蒸汽蒸馏。在酸性溶液中稳定，对热稳定，对亚硫酸钠、铁离子、镁离子较敏感，日光对色素有一定的降解作用。紫草素主要有效成分为紫草宁衍生物 ( β，β － 丙乙烯酰阿卡宁、乙酰紫草素为紫草色素的主要成分) ，多结合成酯而存在，具有电子传递作用，促进或干扰某些生化反应过程，表现多种生物活性，如抗炎、抗肿瘤、保肝和免疫调节、抗生育、降血糖、杀菌抗病毒等 作用。除此之外，紫草素还是良好的天然色素，已广泛应用于食品、化妆品和印染工业中，需求量巨大。近年来，国内外对紫草素的研究越来越多，可见其具有潜在的可开发利用价值。现在从紫草素的资源的概况、紫草素的提取、分离、鉴定及含量测定等方法进行综述。 1 紫草资源在国内的分布概况

紫草 ( Arnebiae Radix) 是我国常用中药材，味甘、咸，性寒，归心、肝经。具有清热凉血，活血解毒，透疹消斑等功效。《中华人民共和国药典》( 2010 年版) 收载的紫草来源于紫草科 ( Bor-aginaceae) 多年生草本植物新疆紫草 Arnebia eu-chroma ( Royle) Johnst 或内蒙紫草 Arnebia ． guttataBunge 的干燥根。国内紫草传统入药的有 3 种，即新疆紫草、滇紫草和紫草。紫草喜凉爽、湿润的气候条件。新疆紫草为国家三级重点保护野生药材，是新疆野生植物中的优势类群，几乎在新疆各地都有分布。由于其品质佳，目前新疆紫草已成为紫草的主要商品。由于无节制采挖，野生资源破坏严重，加之人工种植难度大，导致紫草资源日益减少。滇紫草主产云南，生于荒山岩地向阳山坡，在我国西南地区广为应用，为我国商品紫草的第二大来源。紫草习称硬紫草，生于山野草丛中，资源较少除以上 3 种外，还有分布于新疆阿勒泰、天山南北和内蒙古大部分地区的黄芪紫草和分布于西藏的西藏紫草，但资源都较少。

云南地理生态环境的多样性和复杂性，构成了紫草资源种类的多样性，含紫草宁 ( 即紫草素，shikonin) ，51616O H C ) 及其衍生物的紫草植物达 6种之多，均属于滇紫草属，是潜的优势生物资源，它们是: 滇紫草 ( Onosma paniculatum) 、矩叶滇紫草( O ． oblongifolum) 、沧怒滇紫草 ( O ．wardii) 、密花滇紫草 ( O ． confertum) 、昆明滇

紫草( O．cingulatum) 、露蕊滇紫草( O．exser-tum)等。

2 紫草素的现代提取和分离工艺技术

紫草素是一类脂溶性很强的萘醌类色素。对该类物质的提取应根据其理化性质进行。紫草传统的提取有效成分的方法有水蒸汽蒸馏法、减压蒸馏法、溶剂萃取法等，其工艺复杂、产品纯度不高。而通常用有机溶剂提取，提取物中常含有微量有机溶剂残留，并且回收溶剂等工艺过程会严重影响操作环境。现有报道中除了以上传统的提取法外，逐步发展了一批新方法。

2.1 微波提取的若干方法:

微波提取的方法很多,主要是根据微波提取的有关参数的不同而设计出的不同提取方案。下面举类说明如兰卫等[1]选取微波提取的功率、温度和时间3个因素进行正交实验，并且以所提取的紫草素的吸光度作为评价提取率高低的标准。最后得出了影响紫草素的因素的次序依次是提取的时间、温度和功率即功率为700W,温度为55℃,时间为45 min；也有李洪玲等［2］采用正交设计法进行筛选，选取了乙醇液的浓度、提取时间、提取次数以及提取功率作为影响紫草素微波提取工艺的因素，最终得出影响的次序为乙醇浓度、时间、次数以及功率，即70%乙醇提取液,微波提取25 min,提取功率250W,连续提取4次；还有严炎中等[3]也通过正交实验，设计以提取前浸泡时间、药材粉碎度、溶媒（有机溶剂如苯或植物油如麻油）用量及微波累计辐射时间为影响因素，得出在0.5cm小段紫草以4倍量麻油不经浸泡的情况下,微波法只需累计辐射6min即可达传统煎煮2h的提取效果,效率提高了20倍,且提取前的浸泡与否对其几无影响，以及药材的粉碎度选用粗粉的效果最好；丁怀宇等［4］采用碱提酸沉法、乙醇提取法、高压脉冲提取法来提取紫草素，最后以高压脉冲提取法为最优，以紫草色素总得率为评价指标并且通过正交实验法对高压脉冲提取法的提取条件进行优化,以频率、乙醇浓度、料液比为实验主要影响因素，得出紫草提取物的最佳提取工艺条件为:料液比为1︰6,乙醇浓度为70%,流量为250L/h,频率为6000Hz；以及徐萍等[5]还采用微波辅助醇提的方法，以确定了提取紫草总色素的工艺条件为: 料液比1∶10，微波功率640W，微波时间5min，乙醇体积浓度70% ，80℃的恒温水浴中回流提取60min。紫草素的提取率达到了2. 73%，与传统方法相比提高了51. 6%。

以上几种微波提取方法就是近几年来，研究者们所做的，都是根据各种药材中有效成分的性质差异,在实际操作中,根据微波提取的有关参数选取不同,而设计出不同的微波提取方法。若微波提取有关参数选取不当，就有可能导致提取效果与其他提取方法相比并不具有优势,甚至还要差。因此,通过正交试验来确定某种药材的最佳微波提取工艺显得尤为重要。2.2 超声波提取法

超声波提取也是一种新方法，收集了两类方法:一类是根据提取方式不同而设计的如采用超声波[6]法和乙醇浸取法提取紫草素，在520nm 测定溶液的吸光值，对两种提取法进行了对比，传统的乙醇浸取法不但需要36h提取率才能达到最大，并且提取率不高。而用超声提取法只需45min 就能达到最大提取率，并且提取率较乙醇浸取法相比还高出约7%。但此实验在时间的控制上必须非常小心，时间超过最佳时间，提取率反而会下降，这也许与超声波对紫草素的强烈的物理作用导致紫草素分子结构发生变化有关系。还有就是根据影响超声波的参数的不同而设计的如关奕［7］对新疆紫草进行了超声提取的研究，探讨了超声波功率、液固比、提取温度、原料粒度和超声作用时间对色素提取效果的影响，得到超声提取新疆紫草色素的优化工艺参数为: 80 目的新疆紫草根粉末，液固比为12mg/L，在50℃水浴中超声处理25min，超声波功率1 800 W，提取率可达到87% 。

以上就是两个超声波提取的类子，其实还有还可能有更多利用超声波来提取紫草素的方法。还有待我们去继续探究。

2.3 CO2超临界萃取法

CO2超临界萃取法是提取紫草素最新的方法。下面就简述其中两位研究者做的。马丽萍等［8］用超临界CO2萃取技术对滇紫草中提取紫草素进行了研究。她们采用等温变压二级分离，在萃取压力为20MPa，萃取温度为35℃时，紫草素提取率为82% ,其重金属及砷含量均符合WHO/FAO 规定指标。还有梁瑞红等［9］对新疆紫草进行了超临界萃取工艺研究并与有机溶剂萃取的结果进行比较，结果表明: 超临界萃取在32℃压力27MPa 下重量得率最高达 4. 2% ; 紫草素衍生物也达最高3. 59%。可以得出超临界萃比有机溶剂萃取能得到更多紫草萘醌组分并且超临界萃取的紫草色素含杂质更少。

2. 4 其他方法

上述三种方法是采用较多的，但是以下的方法也是有效地。如罗雪梅等［10］采用大孔树脂吸附法提取分离紫草细胞培养液中的紫草素，与传统的萃取法相比，有机溶剂的用量减少60 倍左右，节省动力消耗，简化操作，大大降低成本；还有黄萍萍等［11］运用亚临界水萃取紫草中左旋/右旋紫草素，考察了萃取温度、萃取时间和固液比对紫草素提取率的影响，结果发现3 个因素在各自考察的实验范围内均有显著影响，并且还利用超声强化了萃取的效果，最后用大孔树脂[12]进行了分离纯化；还有采用传统方法的，如秦润梅[12]以乙醇(95%)为浸提溶剂,通过正交实验法来确定紫草素的提取条件，以浸提温度、浸提时间、浸提比为影响因素，得到提取紫草素适宜的温度为40℃、时间12h、浸提比1∶17；以及邹时英等[13]采用超声波－微波协同萃取新技术将直接超声振动与开放式微波两种作用方式相结合，并在单因素实验的基础上进行了正交实验，优选出了超声波功率内置为50W 时，超声波－微波协同萃取紫草色素及其衍生物的条件是: 乙醇浓度为90%，料液比为 1 ∶12，提取时间为7min，微波功率为70W。正交试验优化条件所得紫草素及其衍生物的得率为 5. 36%。紫草素及其衍生物经Cu2 +络合纯化后，水解为紫草素得率为29. 25%。此方法充分利用超声波以及微波的热效应、机械效应、空化效应等作用，使植物细胞易于破裂，细胞内有效成分自由流出，并加速被萃取物向萃取界面的扩散，使有效成分能在较低的温度下以较快的速度被萃取。除具有速度快、能耗小、溶剂用量小，萃取率高，污染小等优点外，还有利于极性和热不稳定性组分的萃取，避免长时间高温高压条件所引起的分解，从而不破坏所萃取物的结构，保证了萃取质量。

2.5 评价与建议

超临界CO2萃取虽然具有选择性高、操作时间短、有效成分得率高,但受处理量的限制,产量低,目前工业开发难度较大。冷浸和渗漉法用时长、溶剂用量大、溶剂回收率低;微波法由于萘醌化合物结构欠稳定,在60℃以上时降解很快,虽然许多研究采用了这2种方法,然而由于采用分光光度比色法测定掩盖了这种缺陷;超声法虽然是一种新型的提取技术,提取速度快,得率高,但就目前而言工业化设备能耗高,噪声大。

对以上不同方法简括一下：以上方法各具优点，根据不同的实验条件和实验影响因素以及提取紫草素的成分的侧重点不同区选择相应的方法，最后可以达到最佳的提取分离效果。

3 紫草素的定量检测方法

对紫草素衍生物的测定方法主要有比色法、重量法、紫外-可见分光光度法、薄层扫描法、薄层-分光光度法、单扫描极谱法、正相高效液相色谱法、毛细管电泳法以及电化学分

析法。以下简要概述其中几类方法。

3.1 HPLC 正相高效液相色谱法

曾有人认为采用 HPLC 测定紫草素的含量，简便、快速、准确、完全可以用于紫草药材的质量控制，这种说法的确不错。下面是蔡玫[14]等采用HPLC 法对紫草软胶囊中左旋紫草素进行含量测定的方法,他们经多种流动相系统筛选,最终确定本实验规定的色谱条件,使左旋紫草素与其他萘酚类成分色谱峰得以完全分离。并且选择在不同流动相组合、流速及柱温等条件下测定紫草软胶囊中左旋紫草素的含量，以DIKMAODS C 18(250mm ×4. 6mm, 5μm)色谱柱,以甲醇-水-甲酸(85: 15: 0. 5)为流动相或流动相为甲醇—0.025mol/L 磷酸(80∶20),流速1. 0 1min -?ml ,波长516nm,柱温25℃,进样量100μl 。最终检测得到紫草软胶囊中左旋紫草素在10. 2~35. 3μg ﹒ml -1浓度范围内线形关系良好(r=0. 9997);平均回收率为100. 6 %,RSD=1. 83% (n=5)。

3.2 RP － HPLC

采用反相高效液相色谱法来对紫草素进行定量的方法也有研究者做过。如韩洁等［15］采用 RP － HPLC 法测定紫草素含量，实验分别用石汕醚、氯仿、丙酮、甲醇和95%乙醇对紫草药材超声提取30min,提取2次,合并提取液并过滤,滤液浓缩至干,残渣用甲醇溶解,并定量转移至10mL 量瓶中,精密吸取该溶液1.0ml,置10mL 量瓶中,以甲醇稀释至刻度。每种溶剂2个平行。结果表明甲醇提取率最高。他们采用流动相为含 0. 5% 冰醋酸及 0. 3% 三乙胺的乙腈溶液和含 0. 5%冰醋酸及 0. 3%三乙胺的水溶液，梯度洗脱，流速1. 0mL/min ，检测波长为516nm ，柱温 30℃，最后得出紫草素浓度在 1. 2 ～ 12. 2μg /mL ( r=0.999) 范围内峰面积呈良好的线性关系，回收率 ( n = 9) 为 100. 3%。还有施玉峰[16]等也采用反相高效液相色谱法，以AlltimaC 18反相柱 ( 250mm ×416mm ，5μm) ，流动相为乙腈 － 四氢呋喃 － 水溶液 ( 体积比为 37∶ 29∶ 34) ，流速110mL/min ，柱温35℃，检测波长516nm ，进样量 20μL ，来测定紫草素，此法分离快、柱效高、准确度高、重现性好。

3.3 薄层色谱法

根据化学发光原理，李海峰[17]等以鲁米诺 － 过氧化氢 － 钴离子为发光体系，利用过氧化氢定量氧化紫草素苯环上的羟基，从而消耗发光体系中的过氧化氢来降低发光强度，实现光值动态淬灭以此测定紫草素含量。

3.4 紫外分光光度法

上述几种方法可能不是太常用，可紫外分光光度法是常用的。介绍以下研究者采用此方法所得到结果和他们的心得。首先胡昆等[18] 采取CO2超临界萃取的方法从辽宁硬紫草中提取总紫草色素，用紫外分光光度法测定其含量。分别采用有机溶剂溶解碱液萃取法,直接碱

水解法,以及Cu 2+络合法制备紫草素。通过三种紫草素制备方法的比较,确定先经Cu 2+络合纯

化处理后再经水解法制备紫草素,收率较高,是实验室中简单、快速、高收率的由天然紫草分离制备紫草素的有效方法。其次是范芳芳[19]等采用紫外光分光光度法,以氯仿作溶媒,在516nm 处测定吸光度,计算紫草中总萘醌的含量。测得值结果表明:左旋紫草素对照品浓度在5~25mgPL,浓度与吸光度呈良好线性关系,回归方程A=25.282C+0.0061,r=0.9999;平均加样回收率为101.0%,RSD 为0.88%;紫草中总萘醌的含量为3.94%。本法灵敏、准确、简便,可用于新疆紫草中总萘醌的含量测定。再者是熊变娥[20]通过正交试验安排实验条件，采用分光光度法测定紫草提取液中左旋紫草素含量，优选工艺方法的最佳工艺条件,在工艺方法中，粒

度对左旋紫草素的提取率均有非常显著影响，溶剂乙醇的提取率较高，呈显著影响。

3.5 薄层扫描法

在测定烧伤膏中左旋紫草素的含量并进行了方法学研究刘芳等[21]采用薄层扫描法。测得平均回收率为97.14%,RSD为1.04%。且本法简便,快速,重现性好。

3.6 其他方法

以下方法分别是毛细管电泳法和化学发光方法。如李全文等[22]以融硅毛细管( 150μm ×70cm) 为分离柱，优化选择 1. 0mmol/L H3BO3+ 3. 0mmol / L 三乙胺缓冲液为电泳介质，分离电压18. 0kV，可实现分离检测。在优化条件下左旋紫草素线性范围为10. 0 ～250mg/L; 线性相关系数为0. 9962; 检出限为5. 0mg/L ( S/N =3) 。以及定量分析紫草素的新方法是贾宝秀[23]等建立分子印迹流动注射化学发光法。此方法是在酸性条件下，紫草素对高锰酸钾-甲醛体系发光反应具有明显的增敏作用，以甲基丙烯酸为功能单体、乙二醇二甲基丙烯酸酯为交联剂合成紫草素的分子印迹聚合物，并将其作为分子识别物质，利用紫草素-高锰酸钾-甲醛化学发光体系，结合流动注射化学发光分析技术，建立测定紫草素的分子印迹流动注射化学发光分析方法。体系的化学发光强度与紫草素质量浓度呈线性关系，其标准曲线为Y ＝43.2 X＋12.68，r＝0.999 3，线性范围为 1.20～80.0 μg/mL，检出限为0.36 μg/mL。利用分子印迹流动注射化学发光分析法测定紫草中的紫草素简便、快速、准确。

紫草素的定量方法很多，上述方法有常见常用的，也有的是最近研究的出的如分子印迹流动注射化学发光法。这些方法都具有精确，简便，快速等优点。在定量检测是要熟记仪器的操作规则以及试剂的配制和用量，这样实验结果才有效。

3.7 评价与建议

测定紫草中紫草素时因紫草素成分复杂且有效成分含量较低，上述分析方法都需要耗时的预分离步骤，而且薄层扫描法操作程序过多，影响因素不易消除。高效液相色谱法分析时间长、试剂成本高、样品处理较繁琐; 毛细管电泳对样品处理要求高。因此电化学分析方法是一种高灵敏度、廉价和快速的分析方法，它不仅是一个很好的检测药物含量的方法，也是一个能揭示药物反应机理和找出药物活性部位的手段，为设计开发更理想的新药提供依据。4紫草素的定性方法概述

对于紫草素定性方法是利用理化性质及波谱学方法鉴定结构。如刘洁宇[24]采用石油醚加热回流提取,硅胶柱层析和制备硅胶薄层分离,重结晶得到单体化合物，再分离鉴定5个化合物,分别是去氧紫草素、β，β一二甲基丙烯酰紫草素、乙酰紫草素、2,3一二甲基戊烯酰紫草素和紫草素。或是采用以下方法：①取本品粉末0.5g，置试管中，将试管底部加热，生成红色气体，并于试管壁凝结成红褐色油滴。②取本品粉末0.5g，加乙醇5ml浸渍1小时，过滤，滤液浓缩至1ml，作为供试品溶液；以左旋紫草素作对照品；分别点于含羧甲基纤维素钠为粘合剂的硅胶G薄层板上，以甲苯－醋酸乙酯－甲酸（5∶1∶0.1）为展开剂，展开，取出，晾干。供试品色谱中，在与对照品色谱相应的位置上，显相同的紫红色斑点；再喷以10％氢氧化钾甲醇溶液，斑点变为蓝色。

5 小结：

紫草素的提取分离方法有：微波法、超声波法、亚临界水、超临界流体等，这些方法都是比较快速且提取率高，若技术成熟，可以进行规模性的生产。紫草素定性定量分析有高效液相色谱法，薄层色谱法，紫外分光光度法等方法，还有其他的方法，利用这些方法可以快

速测定紫草或是其他植物中的紫草素的含量，以及鉴别紫草素的真伪。

6 紫草素的应用前景

据市场调查显示,我国许多大型制药集团将陆续开发以紫草为主要原料的新药、特药和中成药;化工、塑料、食品、化妆品等许多行业将大量用紫草开发新产品;国际市场对我国紫革的许多用途颇感兴趣,日本、韩国、东南亚、俄罗斯、东欧等一些国家,将增加对紧草的订单。港澳台市场也连年从内地大量进货,内地已无大货可供,时常脱销断档。紫草用途的拓宽,市场份额的增多,对紫草的衡求将成倍增长。但由于野生资源几近枯竭,产量严重短缺,缺口将逐年加大,供铸矛盾尖锐,这些问题短期内难以缓解,将拉升价格在目前的价位上逐年攀升。据悉,一些资金雄厚的老药商或“炒家”正密切关注紫草的走势,并去新获、东北三省主产区探盘问价,他们将在适当时期吸大货囤积,届时,价格再涨已是意料之中的事了。

7 存在的问题及解决方法

紫草作为常用的传统中药，国内外对于其有效成分紫草素的研究逐渐深入。紫草素除在药理作用方面有其独到的疗效外，也是名贵的染料，还可作为天然食用色素或添加到化妆品中使用。要缓解当前临床用量大、植物资源匮乏的局面，从紫草的资源方面看，单单寻找替代品已经无法解决根本问题。必须通过利用生物、化学途径得到更多的紫草素，并形成产业化生产，才能从真正意义上解决资源不足的问题。

紫草素在工业上的广泛应用给野生紫草、滇紫草、新疆紫草等药用植物资源带来了巨大的压力，导致其资源严重匮乏。通过细胞培养生产紫草素是目前缓解野生资源压力的重要手段，紫草细胞培养过程中应用基因工程等分子生物学的手段调控紫草素的产量既稳定又高效。目前，紫草素及其衍生物合成的代谢途径已基本清楚，生物合成过程中的许多关键酶和相应的关键基因也逐步被分离、鉴定，紫草素前半部分合成过程已经研究得比较清晰，但是从GHB到紫草素合成的了解几乎是一片空白，GHO在细胞内经过一系列修饰方能形成紫草素及其衍生物。紫草素及其衍生物的生物全合成途径的探索道路仍然任重而道远。

［参考文献］

［1］兰卫，高晓黎，兰文军，等．紫草素微波提取工艺的研究［J］．中成药，2007，29 (6) : 899 －900．

［2］李洪玲，乔秀文，曾宪佳，等．新疆紫草中紫草素的微波提取工艺［J］．时珍国医国药，2007，18(1) : 148．

［3］严炎中，徐雯宇，曹建国，等．正交试验优选紫草素的微波提取工艺［J］．医药导报，2005，24

(4) :327 － 328．

[4] 丁怀宇,徐萍紫草素提取及抗氧化性能研究 [J]. 食品工业科技工艺技术 2009,1,252 — 254. ［5］徐萍，张凤清，周洪亮，等．微波辅助醇提法提取紫草总色素的工艺研究［J］．长春工业大学学报，2009，30 (5) : 484 － 487．

［6］乔秀文，李洪玲，但建明，等．紫草素的超声提取［J］．包头医学院学报，2004，20 (1) : 18 －19．

［7］关奕，葛峰，王晓东，等．新疆紫草的超声波强化提取［J］．过程工程学报，2005，5 (6) : 680 －683．

［8］马丽萍，邢翠萍，汪春生，等．超临界 CO2从滇紫草中提取紫草素的研究［J］．精细石油化工，2000，2: 4．

［9］粱瑞红，谢明勇，施玉峰．紫草色素超临界萃取与有机溶剂萃取之比较［J］．食品科学，2004，

25(3) : 130 －132．

［10］罗雪梅，袁丽红，欧阳平凯．吸附法分离紫草细胞培养液中紫草素的研究［J］．化学反应工程与工艺，1995，11 (2) : 193 － 197．

［11］黄萍萍，丘泰球，杨日福，等．亚临界水萃取紫草中左旋/右旋紫草素的工艺优化［J］．化学与生物工程，2009，26 (7) : 42 －47．

［12］黄萍萍，杨日福，黄星歆，等．亚临界水萃取及大孔树脂分离纯化制备紫草素［J］．食品科学，2010，31 ( 8) : 1 － 5．

[13] 秦润梅紫草素的提取 [J]. 内蒙古石油化工,2011,19: 34—35.

[14]邹时英,王蓉,李艳清,袁财敏,付大友. 超声波－微波协同萃取紫草总色素及紫草素的制备 [J]

试验研究中国食品添加剂，2011,143 — 148．

［15］韩洁． RP － HPLC 法同时测定紫草中紫草素 \ 异丁酰紫草素和β，β－二甲基丙烯酰紫草素的含量［J］．药物分析杂志，2008: 28 ( 1) : 1849 －1851.

［16］施玉峰，谢明勇，梁瑞红，等．反相高效液相色谱法测定紫草素衍生物［J］．色谱，2005，23 (2) :209．［17］李海峰，江宝琪，庞志功．薄层色谱－化学发光联用技术测定紫草素含量［J］．分析化学，1998，( 26) : 1282．

[18] 胡昆,张爱英,张永煜,李绍顺紫草素的分离制备方法研究 [J].天然产物研究与开发,2004, 16

(3):239 — 240.

[19] 范芳芳,刘泽蒲,陈文,扈银霞紫外分光光度法测定新疆紫草中总萘醌的含量[J].石河子大学学报

(自然科学版),2004,22(5):21-22.

[20]熊变娥,贵州紫草提取左旋紫草素的研究 [J]. 井冈山医专学报,2009,16 (6):11 — 12.

[21]刘芳,王小平,伍伟祯薄层扫描法测定烧伤膏中左旋紫草素的含量[J]. 基层中药杂

志,2001,15(2):21-22

［22］李全文，周勰，潘爱华毛细管电泳法测定紫草中的紫草素［J］．分析化学研究简报，2006，34( 7) : 991 －994．

[23]贾宝秀,李玉琴,刘彩红,李珂分子印迹流动注射化学发光法测定紫草中紫草素 [J]. 中草

药,2011,42 (12):2545 — 2548.

[24]刘洁宇,徐新刚,刘松艳,王聪,张宏桂长白山产紫草化学成分研究 [J]. 北京中医药大学学报

2009,32 (11):773 — 775.