黄酮类化合物

天然黄酮类化合物分离纯化及鉴定研究概况

摘 要 黄酮类化合物是一类在植物中分布广泛、具有多种生物活性的多酚类化合物。在人类的营养、健康和疾病防治有着广阔的应用前景。本文介绍了天然黄酮类化合物的结构特点、提取分离、纯化及鉴定研究方法，综述了部分国内外近年来分离纯化鉴定黄酮类化合物的文献报道，并对其研究和应用前景进行展望。

关键词 黄酮类化合物 分离纯化 鉴定 研究方法 研究概况

黄酮类化合物又称黄碱素或黄酮体，是一类存在于植物中的天然产物,在自然界中广泛分布,属于植物次级代谢产物,在植物的叶子和果实中少部分以游离形式存在,大部分与蔗糖合成苷类,以配基的形式存在。到目前为止，已经发现5000多种植物中含有黄酮类化合物，黄酮类化合物主要存在于芸香科、唇形科、豆科、伞形科、银杏科与菊科等植物中。许多研究已表明黄酮类化合物具有显著的生理药理活性，除具有抗菌、消炎、抗突变、降压、清热解毒、镇静、利尿等作用外，在抗氧化、抗癌、防癌、抑制脂肪酶等方面也有显著效果。它是大多数氧自由基的清除剂，对冠心病、心绞痛等疾病的治疗效果显著[1]。黄酮类化合物安全、无毒，即是药品又是食品，在医药、食品加工等方面已被广泛应用。此外,黄酮类化合物还具有保鲜和护肤美容等作用。因此，黄酮类化合物的功用引起了人们的广泛重视，对该类化合物的研究已成为国内外研究的热门课题。

1 黄酮类化合物的结构和种类

黄酮类化合物，又名生物类黄酮化合物，是色原酮或色原烷的衍生物。黄酮类化合物以前主要是指基本母核结构为2- 苯基色原酮类化合物，目前则泛指 2 个具有酚羟基的苯环（A 和 B ） 通过中央三碳链相互连结而成的一系列化合物。它们一般是由二个苯环(A -环与B -环)通过中央三碳链(C -链)相互连接而成,即具有C6-C3-C6基本骨架。黄酮类化合物的基本结构见图1。 O

O O O A C 23456

7

8B 1'

2'3'4'5'6'O 原酮C 6C 3C 612-苯基色原酮

根据三碳链氧化程度、B 环 （苯基） 联结位置（2 位或 3 位） 以及三碳链是否呈环状等特点，可将黄酮类化合物大致分为：黄酮类、黄酮醇类、二氢黄酮类、二氢黄酮醇类、异黄酮类、二氢异黄酮类、黄烷- 3-醇、查尔酮类 、黄图1 黄酮类化合物的基本结构

烷- 3，4-二醇类、二氢查尔酮类、花色素类、双苯吡酮类[1]。除了上述 12 种外，还有橙酮类、新黄烷类化合物，这两种化合物在结构上与以上12 种稍有差异,具体结构如表2所示。

天然黄酮类化合物多为表2中基本母体的衍生物,常见取代基有羟基、甲氧基、甲二氧基(O —CH —O )以及异戊烯基等。羟基和甲氧基出现最多的位置是C-5,7,3,4′,异戊烯基出现最多的位置是C-6,7。黄酮类化合物多以甙类形式存在, 类型名称

基本结构 类型名称 基本结构

黄酮

黄酮醇

二氢黄酮

二氢黄酮醇

花色素

黄烷-3,

4-二醇

双吡黄酮

O O O O OH O O O O OH O OH O OH OH O O 黄烷-3-醇 异黄酮 二氢异黄酮 查尔酮 二氢查尔酮 橙酮 高异黄酮 O OH O O O O O OH O OH O O HO O O

并且由于糖的种类、数量、联接位置及连接方式的不同,可以组成各种各样的黄酮甙类。组成黄酮甙类的糖类主要有D-葡萄糖、D-半乳糖、L-鼠李糖、L-阿拉伯糖、D-木糖、D-葡萄糖醛酸等,或由这些糖组成的双糖或三糖。糖的连接位置与甙元的结构类型有关,如单糖链氧甙的连接位置经常是C-3,7,3′,4′位;二糖链氧甙的连接位置常见的是C-3,7、C-3,4、或C-7,4′位。花色素甙糖多连在C-3或形成3,5-二葡萄糖甙。在碳甙中,糖多连接在C-6或C-8位上。

在植物体中，黄酮类化合物因其所在组织不同，其存在状态也不尽相同[2]。在木质部中，多以苷元形式存在，而在花、叶、果实等器官中，多以糖苷形式存在。此外，也有一些特殊类型黄酮类物质，如生物碱型黄酮等。

2 黄酮类化合物的研究方法

2.1黄酮类化合物的提取方法

2.1.1有机溶剂提取法

这是目前国内外使用最广泛的方法。利用黄酮类化合物与混入的杂质极性不同，选用不同的溶剂可提取出黄酮类化合物。常用的有机溶剂有甲醇、乙醇、乙酸乙酯、乙醚、丙酮等。由于甲醇、丙酮等毒性较大，因此有机溶剂提取法中最常采用乙醇作为萃取剂[3]。本法主要用于提取脂溶性基团占优势的黄酮类化合物，对设备要求简单，产品得率高，但成本较高，杂质含量也较高。可用加热回流或冷浸法提取，然后，可得其粗提物。

2.1.2 超临界流体萃取法

超临界流体萃取分离过程是利用超临界流体的溶解能力与其密度的关系，即利用压力和温度对超临界流体溶解能力的影响而进行的。当气体处于超临界状态时，其性质介于液体和气体之间的单一相态，具有和液体相近的密度，粘度虽高于气体但明显低于液体，扩散系数为液体的10～100倍，因此对物料有较好的渗透性和较强的溶解能力，能够将物料中某些成分提取出来。该技术的主要特点是提取量高、产品不含有害物质、无污染[4]。但是由于超临界提取所需设备价格昂贵、生产成本高，且提取物中烷基酚含量较高，目前仍不能进行规模化生产。

2.1.3超声提取法

超声波法的原理是利用超声波产生的强烈振动、高的加速度、强烈的空化效应、搅拌作用等加速药物有效成分进入溶剂，从而提高提取率，缩短提取时间，并且免去高温对提取成分的影响。超声波对媒质主要产生独特的机械振动作用和空化作用。该法具有设备简单、操作方便、能耗低、提取时间短、产率高、溶解能力强、不破坏有效成分和无需加热等优点。

2.1.4 半仿生提取方法

半仿生提取法，是将整体药物研究法与分子药物研究法相结合，是从生物药

剂角度，模仿药物在肠胃转运过程所经历的环境，采用选定pH 的酸性水和碱性水依次连续提取，从而得到含黄酮成分高的混合物[5]。此方法生产周期短,可提取和保留更多的有效成分。

2.1.5双水相提取

双水相萃取法属于液—液萃取。由于此技术具有对生物产品稳定性好、易放大等优点，在生物大分子如蛋白质、核酸和细胞器等产品中得到广泛应用。双水相体系具有分相快，使用温度低，易操作等特点，且所用的PEG 及盐类对人体及环境无毒害，提取率高，为黄酮化合物富集分离的一种有效方法。

2.2黄酮类化合物的纯化分离方法

2.2.1柱色谱法

分离黄酮类化合物常用的吸附剂或载体有硅胶、聚酰胺、葡聚糖凝胶、大孔吸附树脂及纤维素粉等。此外,也有用氧化铝、氧化镁和硅藻土等作为吸附剂或载体的。

2.2.2制备薄层色谱法

利用薄层色谱法快速、简便、高灵敏度、高分辨效率等特点分离制备纯物质的方法称为制备薄层色谱法，常用硅胶做吸附剂。薄层制备色谱法属于固—液吸附色谱，兼备了柱色谱和纸色谱的优点，是快速分离和定性分析少量物质的一种很重要的分离方法。

2.2.3高效液相色谱法（HPLC 法）

高效液相色谱法又称“高压液相色谱”法,该法具有分离效率高、分析速度快、检测灵敏度高等特点,以液体为流动相，采用高压输液系统，将具有不同极性的单一溶剂或不同比例的混合溶剂、缓冲液等流动相泵入装有固定相的色谱柱，在柱内各成分被分离后，进入检测器进行连续检测，从而还实现对样品的分析。

2.2.4 大孔吸附树脂法

大孔吸附树脂是一种新型高效的分离纯化材料，是一类不含离子基团的网状结构高分子聚合物吸附剂，广泛用于物质的分离纯化，具有吸附快,吸附容量大,洗脱率高,树脂再生简单，吸附选择性好、解吸条件温和、使用周期长、易于构成闭路循环及节省费用等优点,适合于工业化生产[5]。

2.2.5梯度 pH 值萃取法

梯度 pH 值萃取法适合于对酸性强弱不同的游离黄酮类化合物的分离。根据黄酮类化合物酚羟基数目及位置的不同，其酸性也不同的性质，可以将混合物溶于有机溶剂 （如乙醚） 后，依次用质量分数为 5%的3C a O H N （萃取出7，4-二羟基黄酮），5%的3

2CO Na （萃取出7- 羟基黄酮或4- 羟基黄酮），0.2%NaOH

（萃取出一般酚羟基黄酮）及4%的NaOH水溶液（萃取出5-羟基黄酮分步萃取，从而达到分离的目的。

2.3黄酮类化合物的鉴定方法

2.3.1化学元素分析法

用化学方法是将复杂的分子降解为几个稳定的碎片，碎片一般能通过一些官能团的显色反应、理化常数的测定、元素的分析等方法可合成证明的简单化合物，然后按降解反应的原理推导出原化合物可能的结构。这种方法耗时，操作繁琐，需要大量的分析样品，对于特别复杂的化合物很难得出其准确的结构。因此，随着科学技术的发展，化学法测定黄酮类化合物的结构已基本上让位于各种光谱和波谱的综合分析。

2.3.2 波谱技术

波谱技术主要包括紫外—可见光谱（UV—VIS）、红外光谱（IR）、质谱（MS）、核磁共振氢谱（1HNMR）、核磁共振碳谱（13CNMR）、二维核磁共振谱（2D—NMR）等方法[7]。这些方法成功地解决了含糖数目较多的黄酮苷中苷键的构型，以及糖与糖之间的连接顺序和连接位置等一系列结构确定中的棘手问题。结合单晶X—射线衍射法可以获取化合物分子中各原子的坐标，得到了化合物中各原子空间的结合位置，为确定分子结构提供了直观可靠的立体图形。2.3.2.1红外光谱（IR）法

被测物质的分子在红外线照射下，只吸收与其分子振动、转动频率相一致的红外光谱。对红外光谱进行剖析，可对物质进行定性分析。化合物分子中存在着许多原子团，各原子团被激发后，都会产生特征振动，其振动频率也必然反映在红外吸收光谱上。据此可鉴定化合物中各种原子团，也可进行定量分析。

物质的红外光谱具有特征性，不同的物质其红外光谱不同，故可用来进行物质的定性、结构分析及定量分析等，应用比紫外吸收光谱广泛。

2.3.2.2紫外光谱（UV）检测法

紫外光谱(UV)检测法是一种利用某些物质的分子吸收波长 200～800 nm光谱区的辐射来进行分析测定的方法，研究化合物结构的主要作用是推测官能团结构中的共轭体系中取代基的位置和数目等主要是确定有机物中是否存在双键或共轭体系，其本质是电子在二轨道上的跃迁，对应的能量在紫外光谱上的位置。

2.3.2.3质谱 (MS) 法

质谱分析是一种测量离子荷质比(电荷—质量比)的分析方法，其基本原理是使试样中各组分在离子源中发生电离，生成不同荷质比的带正电荷的离子，经加速电场的作用，形成离子束，进入质量分析器。在质量分析器中，再利用电场和磁场使发生相反的速度色散，将它们分别聚焦而得到质谱图，从而确定其质量。

质谱法主要应用于鉴定复杂分子并确定元素的同位素质量及分布。

2.3.2.4 核磁共振谱（1HNMR ，13CNMR ）法

核磁共振波谱法是研究原子核在磁场中吸收射频辐射能量进而发生能级跃迁现象的一种波谱法。通常专指气原子的核磁共振波谱(质子核磁共振谱)的研究。同一核素的原子核在不同化学环境下能产生位置、强度、宽度等各异的谱线，为研究复杂的分子结构提供重要的信息。由核磁共振提供的信息，可以分析各种有机和无机物的分子结构。

3近年来国内外黄酮类化合物分离纯化鉴定研究进展

由于天然植物中所含黄酮类化合物种类众多，成分复杂，含量较低，并具有多种多样的生物活性，因此从天然植物中分离纯化黄酮类化合物极具重要性和挑战性。随着色谱分离技术和光谱鉴定技术的发展，更为快速准确的实验方法和实验手段被应用于天然黄酮类化的的提取、分离、纯化、分析、鉴定，致力于该领域的国内外研究者们也不断取得新的研究成果，1950年发现的黄酮类化合物仅有104种，到目前为止已达到8000余种，研究发展非常迅速。以下从国内和国外两个分别阐述些近年来的一些最新研究成果。

3.1 国内研究进展

王克勤[8]等将芹菜叶经乙醇回流提取后，采用大孔树脂(XDA-1)、聚酰胺树脂和葡聚糖凝胶(Sephadex LH-20)色谱柱分离纯化得到黄酮化合物单体[8]。经NMR H 1-，NMR C 13-，HMBC ，MS ，UV 等方法鉴定，3 个芹菜黄酮单体化 合物分别为芹菜素（5,7,4′-Trihydroxyflavone ）、芹菜苷Apigenin-7-(2-O-apiosylgl- Ucoside)、柯伊利素7-O-葡萄糖-2-O-芹糖苷(Chrysoeiol7-O-glucose-2-O-apiosylgl- ucoside) 。在分离得到的3个黄酮单体中芹菜素为水解产物，分离得到的另2个黄酮苷均为双糖苷。

邹文韬[9]等利用微波辅助提取法从杭白菊中提取黄酮类化合物，经石油醚、水饱和正丁醇萃取后，用大孔吸附树脂柱层析、聚酰胺柱层析初步分离，再用半制备型高效液相色谱分离制备单体化合物。分离得到3个单体化合物经鉴定分别为木犀草素7-O-β-D-葡萄糖苷(Luteolin 7-O-β-D-glucoside)、芹菜素7-O-β-D-葡萄糖苷(Apigenin 7-O-β-D-glucoside)、香叶木素7-O-β-D-葡萄糖苷(Diosmetin 7-O-β-D-glucoside)。

杨洁等[10]以湖北大宗油菜蜂花粉为材料，对其中微量特征成分黄酮类化合物进行鉴定。采用超声波辅助技术提取，运用二次回归正交旋转组合实验优化提取工艺，通过响应面分析和岭嵴寻优分析，确定黄酮类化合物的最佳提取条件。采用 HPLC-DAD 以及 HPLC-MS 对酸解后的提取液进行分析，结果表明：超声波辅助技术提取油菜蜂花粉中黄酮类化合物的最佳条件为体积分数 76% 乙

醇、料液比 1:30、超声波时间33min ，超声波温度为51℃。蜂花粉中总黄酮含量的理论得率为2.12%，实际得率为1.89%，实测得率达到理论预测值的89.15%。HPLC-DAD 以及HPLC-MS 分析结果证实油菜蜂花粉中可能含有 9 种黄酮苷元。其中可以推定的黄酮类物质是槲皮素、山奈酚、异鼠李素和柚皮素。另外 5 种黄酮苷元(2种黄酮醇3种黄酮)的准确结构信息，还需要进一步分析和鉴定

杜琪珍等[11]利用高速逆流色谱、制备型液相色谱等技术对常春油麻藤花中的黄酮类化合物进行分离纯化和结构鉴定，并采用 DPPH 法测定其抗氧化活性。分离得到8个化合物单体分别鉴定为矢车菊3-O-6"-O-α-鼠李糖-β-D-葡萄糖苷 (cyanidin3-O-6"-O-α -rhamnopyranosyl-β-D-glucopyranoside,I)、矢车菊3-O-β-D-葡萄糖苷(cyanidin 3-O-β-D- glucopyranoside,II)、槲皮素-3-O-β-D- 葡萄糖苷(quercetin-3-O-β-D-glucopyranoside,III)、二氢槲皮素(dihydroquercetin,IV)、山奈酚(kaempferol,V)、异夏佛塔苷(6-C-β-L-arabinopyranosyl-8-C-β-D-glucopyrano- sylapigeni,VI)、山奈酚-3-O-α -L-鼠李糖基-(1-6)-β-D-半乳糖苷 (kaempferol-3-O-α -L-rhamnopyranosyl-(1-6)-β-D- galactopyranoside ，VII)和山奈酚-3-O-α -L-鼠李糖 基-(1-4)-β-D-葡萄糖苷(kaempferol-3-O-α-L-rhamnopyranosyl-(1-4)-β-D-glucopyra- noside),VIII)。其中黄酮 I ～V 为主要的抗氧化物质，其抗氧化活性存在剂量效应关系，黄酮 VI ～VIII 抗氧化活性较低。

邹耀洪,顾小燕用反相高效液相色谱法，以SpharisorbODS 柱为固定相，甲醇-四氢吠喃一水一甲酸为流动相，并应用二极管阵列检测技术，分析了天精中的黄酮类化合物[12]。经UV 、IR 、HNMR 1、CNMR 13、MS 等波谱分析，5种黄酮类化合物分别鉴定为5，7，3'-三羟基-6，4'，5'-三甲氧基黄酮(1)，金合欢素(2)，金合欢素-7-O-α-L-鼠李糖基(l→6)-β-D-葡萄糖武(3)，木樨草素(4)，槲皮素-3-0-α-L-鼠李糖基(l→6)-β-D-葡萄糖武(5)，其中(l)为新化合物。

李万华等[13]研究中药材皂角刺中黄酮类化合物化学成分。采用溶剂萃取、反复柱层析方法,分离纯化皂角刺中黄酮类化合物,通过NMR,MS 等波谱技术确定其化学结构,并进行细胞模型的体外活性筛选。从皂角刺中分离得两种黄酮类化合物,结构鉴定为(+)trans-2R, 3R-3′,4′, 5, 7-tetrahydroxyflavanonol(1)和8-C-glucopyranosyl-3, 4′, 7-trihydroxyflavone(2),化合物2显示出明显的组织蛋白酶B 抑制活性(CAT-B 模型)。该两种化合物均为首次从皂角刺中分离得到的单体黄酮类化合物,且发现化合物2具有组织蛋白酶B 抑制活性。

任顺成等[14]从玉米须中提取、分离黄酮类成分。通过溶剂法提取醇溶性成分,柱层析法得到6种黄酮类化合物。其中,化合物Ⅴ和化合物Ⅵ经鉴定分别为7, 4′-二羟基-5-甲氧基黄酮-2″-O-α-L-鼠李糖基-6-C-岩藻糖苷和6, 4′-二羟基-3′, 5′-二甲氧基黄酮-7-O-葡萄糖苷。

张沐新等[15]将玉米( Zea mays L) 苞叶粉碎后，用乙醇提取法得乙醇粗提物。将粗提物用水溶解后，上AB-8大孔树脂柱，依次用蒸馏水、体积分数不同的乙醇梯度洗脱，再将洗脱物用硅胶柱色谱分离，得组分Ⅰ，Ⅱ，Ⅲ和Ⅳ。组分Ⅰ，Ⅱ和Ⅲ经反复重结晶分别得到化合物 1，2和 3 ; 组分Ⅳ 经葡聚糖凝胶柱色谱分离，并用甲醇洗脱得化合物4。它们分别为苜蓿素( 1) 、苜蓿素-5-O-β-D-吡喃葡萄糖苷( 2) 、苜蓿素-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷( 3) 和苜蓿素-7-O-［β-D-呋喃芹糖基-( 1→2) ］β-D-吡喃葡萄糖苷( 4) 。其中，化合物4 为新化合物，化合物 1 ～ 3 为首次从该植物中分离得到。

吕应年等[16]将半边旗干燥的全草经粉碎后,以80%乙醇回流萃取得浸膏,浸膏再用石油醚、氯仿和乙酸乙酯依次抽提,将乙酸乙酯抽提物减压蒸干得到半边旗黄酮样品。样品经薄板层析、化学显色反应及紫外光谱分析,初步鉴定了其中的黄酮物质成分;样品经液相色谱-质谱联用分析,进一步确证了半边旗黄酮中含有芹菜素、木犀草素和木犀草素葡萄糖苷。样品用2322I O S Na ，滴定试验考察发现其具有良好的抗氧化活性。

3.2 国外研究进展

Saeed Ahmad [17]等从骆驼刺中分离出了一个新的黄酮类化合物，异鼠李糖-3-O-[α-1-吡喃鼠李糖基-（1→ 3）]-β-d-吡喃葡萄糖苷（isorhamnetin-3-O-[-α-l-rhamnopyranosyl-(1 → 3)]-β-d-glucopyranoside ）（1），及两个已知的黄酮类化合物3'-O-甲基（3'-O-methylorobol ）（2）和槲皮素3-O-β-D-吡喃葡萄糖苷（quercetin 3-O-β-d-glucopyranoside ）（3）。采用一维和二维磁共振光谱，质谱法，并参考文献的数据进行比较，测得其结构。

Abulimiti Yili 等[18]经Sephadex LH-20柱初步清理，采用高速逆流色谱法从粗蜡菊样本中成功分离出三个黄酮类化合物。结构分别鉴定为柚皮素-7-O-β-d-葡萄糖苷（Naringenin-7-O-β-d-glycoside ）（2.3毫克），异槲皮苷（isoquercitrin ）（3.5毫克），紫云英苷（astragalin)(6.7毫克），纯度为96.05%，93.63%，95.23%。 Y . Hugh Guan, Ian A. Sutherland 等[19]采用高速逆流色谱系统，以氯仿-甲醇-水（9.5:10:5）两相体系从木蝴蝶叶中分离出多种黄酮类化合物，并鉴定为有黄苓素（baicalein ），黄苓素-7-O-葡萄糖甙(baicalein-7-O-glucoside ),黄苓素-7-O-葡萄糖苷（baicalein-7-O-diglucoside ），白杨素-7-O-葡萄糖醛酸苷（chrysin-7-O-glucuronide ），黄苓素-7-O-葡萄糖醛酸（baicalein-7-O-glucuronide ），其中黄苓素-7-O-葡萄糖醛酸苷和黄苓素-7-O-葡萄糖醛酸是首次从该植物中提取出的。本研究还提取出了一个新的白杨-葡萄糖苷提取物。结果表明，高速逆流色谱分离是一个强大的工具，可以促进植物成分的确定和量化。

Haji Akber Aisa 等[20]采用AB-8大孔吸附树脂，高速逆流色谱法（HSCCC ）

成功从金银花棉蚜中分离出四种黄酮类化合物。高速逆流色谱法用氯仿-甲醇-异丙醇-水（5:5:1:3,V/V）组成的两相溶剂系统，固定相的水溶液中加入0.4%的磷酸。四种黄酮类化合物分别鉴定为槲皮素（yielded quercetin）（5.6毫克），槲皮素-3'-O-D-葡萄糖苷（quercetin-3'-O-D-glucoside）（7.2毫克），槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷（quercetin-3-O-β-D-glucoside）（16毫克），槲皮素-7-O-β-D-葡萄糖苷（quercetin-7-O-β-D-glucoside）（8.3毫克）。

4 前景展望

近年来，高新技术的应用如热反应技术、生物技术、微胶囊包埋技术、干燥技术、膜分离技术、超临界萃取技术、超微粉碎技术、电磁技术以及多种技术的组合，为黄酮类化合物的提取、分离、纯化、分析、鉴定等提供了更为快速准确的实验方法和新的手段思路。随着分离提取技术的发展，发现了大量新黄酮类化合物，也掀起了研究热潮，开发了数种含有该物质成分的产品。在医药方面，根据其在心血管系统、内分泌系统、抗肿瘤方面的药理作用，很多以黄酮类成分为主的制剂已经上市。黄酮类化合物来自于天然植物，在食品中也有广阔的应用前景。黄酮类化合物是一类优良的抗氧化剂资源，在食品中，除了应用于功能性食品添加剂，如天然甜味剂、天然抗氧化剂、天然色素等；还应用于功能食品，如生物类黄酮口香糖、银杏叶袋泡茶等防衰、抗癌和提高免疫力食品近年来，除了从药材中提取分离黄酮类化合物不断被报道外，一些农作物如柑橘、大豆、山楂等的黄酮类化合物的分离鉴定也日益受到关注。虽然从各种植物中分离和提取了大量的新黄酮类化合物，掀起了黄酮类化合物的研究热潮，但对其吸收、代谢机制、活性机理，具有生理功能的活性基团、稳定性等方面仍缺乏全面的认识。因此，应加强此方面的工作，以较先进的检测分析手段对其功能成分进行定性及定量分析，确定这些功能成分的提取工艺，并通过相应的动物及人体试验，验证这些功能成分的保健作用，并揭示其量效关系，为黄酮类化合物的进一步开发利用

奠定坚实的基础。

总之，黄酮类化合物作为一类生物活性很强的化合物，具有众多优点，其在医药、食品等领域中具有广阔的应用前景。

参考文献：

[1] 董彩军,李锋.黄酮类化合物的研究进展[J].农产品加工·学刊,2010,2(2): 65-69.

[2] 宋秋华,张磊,梁飞,姚小丽.黄酮类化合物提取和纯化工艺研究进展[J].山西化工,2007,27

(4):24-27.

[3] 王长远,吴洪奎,于长青,马万龙.黄酮类化合物研究进展[J].黑龙江八一农垦大学学报,19

(2):75-78.

[4] 张胜,赵玲玲.黄酮类化合物的提取纯化研究进展[J].温州大学学报,2007,28(5) :25-29.

[5] 赖毅勤,周宏兵.近年来黄酮类化合物提取和分离方法研究进展[J].食品与药品,2007,9(4):

54-58.

[6] 李凤林,李青旺,高大威,冯彩宁,郜俊杰.天然黄酮类化合物分离纯化研究进展[J].开发与

研究,2008,25(5):20-24.

[7] 张赟彬,李彩侠,吴亚卿.黄酮类化合物的研究进展[J].食品与机械,2005,21(5):69-73.

[8] 王克勤,罗军武,刘仲华,陈亮,陈静萍.芹菜叶中黄酮类化合物的提取分离与鉴定[J].食品

与机械,2009,25(6):66-70.

[9] 邹文韬,张因皎,俞菊红,房晓敏,周志明,许传莲.杭白菊中黄酮类化合物的分离与鉴定[J].

浙江理工大学学报,2012,27(1):140-144.

[10] 杨洁,陈纯,邢建军,刘睿.油菜蜂花粉中黄酮类化合物的提取与鉴定[J].食品科学,2010,31

(22):273-278.

[11] 杜琪珍,赵永春,李博.常春油麻藤花黄酮类化合物结构鉴定及抗氧化活性分析[J].食品

科学,2011,32(23):111-115.

[12] 邹耀洪,顾小燕.天精中黄酮类化合物的结构鉴定[J].常熟高专学报,2000,14(2):49-54.

[13] 李万华,李琴,王小刚,赵文明.皂角刺中黄酮类化学成分的分离鉴定[J].西北大学报,2005,

35(6):763-770.

[14] 任顺成,丁霄霖.玉米须黄酮类成分的提取分离与结构鉴定(Ⅱ)[J].河南工业大学学

报,2007,28(4):34-40.

[15] 张沐新,刘银燕,孙薇,杨晓虹,王广树.玉米苞叶中新黄酮类化合物的分离和鉴定[J].高等

学校化学学报,2011,32(11):2554-2557.

[16] 吕应年,蒋桂香,吴科锋,邓亦峰,梁念慈.半边旗中黄酮成分的分离鉴定与抗氧化活性研究

[J].化学世界,2007,205(4):24 -220.

[17] Naheed Riaz,Muhammad Saleem,Abdul Jabbar,Mohammad Ashraf,etal.Antioxidant flavonoi-

ds from Alhagimaurorum[J]. Journal of Asian Natural Products Research, 2010,12(2):138- 143.

[18] Abulimiti Yili,Gulnar Sabir,Haji Akber Aisa,etal.Separation and Purification of Three Flavon-

Oids from Helichrysum arenarium (L.) Monech by HSCCC[J].Chromatographia,2009,69(9): 963-967.

[19] Y. Hugh Guan, Ian A. Sutherland,etal.Separation of Flavonoids from the Leaves of Oroxylum

indicum by HSCCC [J]. Chromatographia,2008,68(11):885-892.

[20] Haji Akber Aisa,Yoichiro Ito,etal.Preparative Isolation and Purification of Four Flavonoids

from Flos Gossypii by High-Speed Countercurrent Chromatography[J].Journal of Liquid Chromatography & Related Technologies,2008,31(10):1523-1531.

The natural flavonoids Purification and

identification of profile

Chemistry and Environment Science College，Inner Mongolia Normal

Abstract: Flavonoids are a class of widely distributed in plants, with a variety of biologically active polyphenolic compounds. Has broad application prospects in human nutrition, health and disease prevention. This article describes the structural characteristics of natural flavonoids, extraction and separation, purification and identification methods, some of the domestic and foreign Separation, Purification and Identification of flavonoids in recent years reported in the literature, and its research and application prospects.

Keywords:flavonoid; Separation and purification; Identification Research Methods; Research Profile