谷胱甘肽过氧化物酶和谷胱甘肽转硫酶研究进展

谷胱甘肽过氧化物酶和谷胱甘肽转硫酶研究进展
谷胱甘肽过氧化物酶和谷胱甘肽转硫酶研究进展

动物医学进展,2008,29(10):53-56

Pr ogress in Veterinary Medicine

文献综述

谷胱甘肽过氧化物酶和谷胱甘肽转硫酶研究进展*

马森

(武夷学院化学系福建省高校绿色化工技术重点实验室,福建武夷354300)

摘要:谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)和谷胱甘肽转硫酶(GST)是一对抗氧化酶。GSH-Px为含硒半胱氨酸,至少有4种同工酶,催化还原H2O2和有机氢过氧化物。GST不含硒,有多种同工酶,不能分解H2O2,但具有清除过氧化物和解毒的双重功能。二者广泛存在于组织细胞、红细胞、血浆和乳中,与细胞损伤、缺氧、中毒、衰老、多种疾病的发生有关;GSH-Px活性也与机体硒水平密切相关。文章综述了GSH-Px 和GST的分类与结构、性质、作用、检测原理、动物临床方面的应用及研究进展。

关键词:谷胱甘肽过氧化物酶;谷胱甘肽转硫酶;研究进展

中图分类号:Q554.6文献标识码:A文章编号:1007-5038(2008)10-0053-04

谷胱甘肽过氧化物酶(g lutathione pero xidase, GSH-Px)于1957年由M ills从牛红细胞中发现,分子结构中含硒,故又名硒谷胱甘肽过氧化物酶(Se-GSH-Px),是体内清除H2O2和许多有机氢过氧化物的重要酶。1976年,Law rence等发现组织中还存在一种不含硒的GSH-Px,命名为谷胱甘肽转硫酶或不含硒的谷胱甘肽过氧化物酶(g lutathio ne-S-tr ansferase,GST或on-Se-GSH-Px),在体内具有清除过氧化物及解毒的双重功能。文章对GSH-Px和GST的分类与结构、性质、作用、检测原理、动物临床方面的应用及研究进展进行了阐述。

1分类与结构

从人和动物组织或细胞中提纯的GSH-Px,分子质量为76ku~95ku,为水溶性四聚体蛋白,4个亚基相同或极为类似,每个亚基有1个硒原子。目前发现GSH-Px至少有4种同工酶,其在机体中的分布、亚基结构、一级序列和酶学特点上有显著不同。第1种为细胞谷胱甘肽过氧化物酶(cGPx),主要分布在组织细胞的细胞区、线粒体和红细胞中,催化还原H2O2和有机氢过氧化物,对各类氢过氧化物都有较好的催化作用。第2种为磷脂过氧化氢谷胱甘肽过氧化物酶(PH GPX),主要分布在各种组织细胞外的细胞液内,部分分布在细胞膜上,主要还原磷脂过氧化氢、脂肪酸过氧化氢和甾体过氧化氢, PH GPX是必需的生物膜组成成分,可阻止生物膜非专一性的磷脂过氧化。第3种为血浆谷胱甘肽过氧化物酶(pGPx),主要分布在血液中,既能还原磷脂氢过氧化物又能还原H2O2。第4种为消化系统谷胱甘肽过氧化物酶(GIGPX),高表达于胃肠道黏膜上皮细胞。牛红细胞GSH-Px有178个氨基酸,第35位是1个硒半胱氨酸。在其亚基结构中有4处A-螺旋和4处B-折叠。整个酶分子中,4个亚基处在一个平面,具有催化活性的硒半胱氨酸位于酶分子表面凹穴的活性部位,易于接触有机氢过氧化物等底物。后者虽然不溶于水,但由于活性基团周围存在一些疏水性芳香环氨基酸残基,形成脂溶性底物可进入的疏水区域,可以与硒半胱氨酸反应,从而使GSH-Px显示很高的反应性。GST是分子质量40ku~50ku的二聚体蛋白质,随着亚基的不同组合而有多种同工酶,如哺乳动物的GST分为A, L,P,H,R等5类水溶性GST,另外还有一类是脂溶性的微粒体同工酶。随着对GST的深入研究,新GST种类不断被发现。已确定了上述5种主要的酶家族中至少一个成员的三维结构,这些结构都具有包括两个结构域的基本蛋白质折叠。大鼠肝胞浆GST是由Ya、Yb、Yc3种不同亚基组合成的YaYa、YcYc、YaYc、YbYb等同工酶,亚基的分子质量为22.5ku~25ku;大鼠肝微粒体GST的亚基分子质量却为14ku;不同来源的GST中氨基酸组成可能有差异,分子质量常不一致[1-5]。

*收稿日期:2008-05-04

基金项目:福建省教育厅/乳谷胱甘肽过氧化物酶研究0项目(JB03266)

作者简介:马森(1947-),男,青海西宁人,教授,主要从事动物生理生化研究。

2化学性质

GSH-Px可使H2O2转变为H2O,使许多有机氢过氧化物(ROOH)还原为ROH,在催化反应中需要还原型谷胱甘肽(GSH)作为供氢体,反应如下:

2GSH+H2O2GSH-Px

GSSH+2H2O,2GSH+

ROOH GSH-Px

GSSH+2ROH;几乎所有的有机

氢过氧化物都可以在GSH-Px的作用下还原为ROH。

GSH-Px虽然可以催化许多巯基化合物氧化,但催化效率相对很低,在所有的巯基化合物中以C-谷胱甘肽的催化效率最高。GSH-Px愈纯,其性质愈不稳定,纯酶置冰箱中贮存,活力会降低。GSH-Px的最适pH为8~9,在pH6及其以下,GSH-Px 无活性。氰化物与叠氮化物都不能抑制GSH-Px的活性。GSH-Px的吸收光谱在400nm~420nm范围内。

在GST的作用下,GSH可与许多亲电药物结合,如GSH与1-氯-2,4-二硝基苯结合成1-巯基-2, 4-二硝基苯:GSH+C6H3(NO2)2Cl

Non-S e-GS H-Px SG-C6H3(NO2)2Cl+H Cl;该酶还可以清除脂类氢

过氧化物,但不能催化H2O2分解,2GSH+ROOH

Non-Se-GSH-Px

ROH+H2O+GSSG,从微粒体提纯的GST为低活性酶,被活化剂N-乙基-顺丁烯二酰亚胺、靛乙酰胺等处理后活性可明显增强。

牛乳中也存在GST,测定牛乳中GSH-Px和GST的活性及热稳定性,发现温度升至75e加热15s,GSH-Px活力大致降到原有的20%;95e煮沸1m in后活性全部丧失。75e加热15s,GST的活性下降50%,95e煮沸1min后GST活性仍保存30%左右,GST有更高的耐热性[6]。

3谷胱甘肽过氧化物酶的作用机制

在GSH-Px的催化反应中,分子中的硒半胱氨酸起重要作用。在反应(1)中ROOH可用H2O2代替。无论ROOH还是H2O2,都可将GSH-Px中的

E-CysSe-+H++ROOH k1E-Cy sSeOH+ROH Y(1) E-CysSeOH+GSH k2

k-2

E-Cy sSe-SG+H2O(2)

E-Cys-Se-SG+GSH k3

k-3

E-Cys-Se-+GSSG+H+(3)

硒醇离子氧化成硒次磺酸衍生物(E-CysSeOH),但后者是酶促反应的中间物(过度态复合物)。在反应(2)中GSH为供氢体,它与酶反应的中间物作用后产生E-Cy sSe-SG(酶-底物复合物)。然后通过反应(3)再与GSH反应,生成原来的GSH-Px与氧化型谷胱甘肽(GSSG)。这三步反应表明,GSH-Px的催化反应是一种循环过程,其中硒半胱氨酸发生的可逆性氧化还原反应起重要作用;在循环过程中GSH-Px可恢复原来状态,但GSH却变成GSSG。要使GSSG还原成GSH,必须在GSH还原酶作用下由NADPH提供H,反应式:GSSG+NADPH GSH还原酶

2GSH+NADP+[1-4]。

4生物学作用

4.1谷胱甘肽过氧化物酶的作用

4.1.1清除脂类氢过氧化物GSH-Px的主要作用是清除脂类氢过氧化物,并在过氧化氢酶含量很少或H2O2产量很低的组织中,可代替过氧化氢酶清除H2O2,其清除脂类氢过氧化物的速度决定于GSH-Px的浓度,而与GSH的浓度无关。

4.1.2清除H2O2脑与精子中几乎不含过氧化氢酶,而含较多的GSH-Px,代谢中产生的H2O2可以被GSH-Px清除。即使含过氧化氢酶较多的组织,仍需GSH-Px清除H2O2,因为在细胞中过氧化氢酶多存在于微体,而在胞浆和线粒体中却很少,组织中较多的GSH-Px可及时清除H2O2;如有的病人缺乏产生过氧化氢酶的基因,但GSH-Px可清除H2O2,故H2O2损伤组织不明显。

4.1.3减轻有机氢过氧化物对机体的损伤在病理生理情况下,活性氧如#OH可能诱发脂类过氧化,除了直接造成生物膜损伤外,还可以通过脂类氢过氧化物与蛋白质、核酸反应,使机体发生广泛性损伤。如果GSH-Px清除脂类氢过氧化物能力不受影响,机体的损伤就可减轻。除了脂类氢过氧化物外,还可能出现其他有机氢过氧化物,如核酸氢过氧化物、胸腺嘧啶氢过氧化物,这两者属于致突变剂, GSH-Px清除有机氢过氧化物的作用可降低致突发生率。脂类过氧化也是细胞老化的原因之一,预防脂类过氧化可延缓细胞老化,所以GSH-Px在预防衰老方面起到重要作用[7]。

4.1.4参与前列腺素合成的调节前列腺素在体内分布较广,其合成原料为花生四烯酸。但在环氧酶与脂氧合酶的作用下,花生四烯酸尚可氧化成某

54动物医学进展2008年第29卷第10期(总第183期)

些氢过氧化物(XOOH)。这些氢过氧化物显著干扰前列腺素的生物合成。在GSH-Px的作用下, XOOH可转变为无活性物质(XOH),故GSH-Px 对前列腺素的生物合成起到调节作用。

4.1.5其他作用硒和GSH系统在氧化防御反应中起着关键作用。此外,GSH在代谢、细胞信号传导和蛋白质相互作用中也具有辅助性功能,还可以调节机体防御反应。其他含硒蛋白也有抗氧化特性。硒蛋白和有机硒复合物可以催化过亚硝酸盐反应生成NO2,在预防过亚硝酸盐的生成中也起着重要作用,可以保护细胞免受过亚硝酸盐的损害[8]。4.2谷胱甘肽转硫酶的作用

GST广泛存在于哺乳动物各组织器官中,主要功能是催化某些内源性或外来有害物质的亲电子基团与还原型谷胱甘肽的巯基偶联,增加其疏水性使其易于穿越细胞膜,分解后排出体外,从而达到解毒的目的,保护DNA及一些蛋白质免受损伤。GST 在肝细胞中含量很多,肝细胞受到损伤时GST很快会释放到血液中,因此血液中GST升高可作为肝脏损伤的敏感指标。GST具有清除体内过氧化物及解毒的双重功能,但GST在GSH-Px活力降低的条件下,只有清除脂质过氧化物(LPO)的功能[1-3,5]。5检测方法

GSH-Px的活力以催化GSH的反应速度来表示。由于GSH和H2O2生成GSSH和H2O的反应在没有酶的条件下也能进行,因此计算酶活力时必须扣除非酶促反应引起的GSH减少的部分。GSH 测定通常采用二硫代二硝基苯甲酸法,其原理是GSH和二硫代二硝基苯甲酸作用生成5-硫代二硝基苯甲酸阴离子。该离子呈现较稳定的黄色,在412nm测定其吸光度,即可计算出GSH的量,以单位时间内GSH减少量来表示GSH-Px活力。GST 具有催化GSH与1氯-2,4-二硝基苯结合的能力,

GSH+C6H3(NO2)2Cl C6H3(NO2)2GS

(1-巯基-2,

4-二硝基苯)+H Cl,在一定时间内,活性高低与GSH的减少量呈线性关系。GSH的测定原理和GSH-Px相同。

6谷胱甘肽过氧化物酶的临床应用及研究进展冯彪等[7]报道,老龄鼠肝和心肌中GSH-Px的活力显著高于幼龄鼠。何绘敏[9]报道,大鼠缺氧时脑内GSH-Px显著下降,而脂类过氧化物的代表MDA显著升高,表明缺氧时脑内抗氧化能力减弱。耿义群等[10]报道GSH-Px降低可能与脑智力发育障碍,大脑缺血、缺氧损伤,神经变性及重金属中毒有关;脑内GSH-Px 可能防止脑细胞受到氧化损伤。陈振峰[11]报道,30名成人从平原进入拉萨(海拔3658m)5d后,红细胞GSH-Px由1675.2mmol/L?715.36mmol/L降低到794.3mmol/L?326.38mmol/L;GSH也从19.01mmol/L?7.72mmol/L降低到11.49?

4.14mmo l/L,而SOD显著升高,表明人急进高原后抗氧化系统发生一系列适应性反应。任中海[12]报道经常参加体育锻炼大学生全血GSH-Px显著高于非锻炼组;刘贺等[13]报道经过16周瑜珈锻炼,女大学生GSH-Px活性显著提高;经常锻炼可使机体抗氧化能力提高。武瑞[14]报道,酮病奶牛血清GSH-Px极显著降低,而MDA显著升高。据崔永华等[15]报道,给生长牛饲料中添加20g/kg的不同中草药方剂,2月~3月后,血清GSH-Px显著升高。

由于硒是GSH-Px的构成成分,机体硒含量和GSH-Px活力密切相关。张舸等[16]用低硒低碘饲料喂养SD大鼠,仔3代、仔4代4日龄和21日龄肝脏GSH-Px降至对照组水平的约1%,全血降至约20%。张世珍等[17]报道,硒缺乏动物血液、肝GSH-Px活力下降,M DA和自由基水平升高,表明硒缺乏导致自由基损伤,而补硒可降低M DA和自由基,升高GSH-Px。盛永杰[18]报道,奶牛补硒0.01L g/kg ~0.1L g/kg,使红细胞GSH-Px增加近10%。李英等[19]报道,给黄牛灌服10g/L亚硒酸钠12h~ 72h后全血中GSH-Px升高约64%~72%。侯江文[20]报道,用富硒玉米饲喂动物,奶山羊、猪在30、70d后全血GSH-Px分别升高近1倍和2.4倍;鸡全血GSH-Px在60d后升高近2.3倍。硒是GSH-Px构成成分也解释了硒的部分抗氧化功能,但多种GPX酶和基因的发现表明这种概念过于简化。在硒缺乏动物中,GPX1、GPX4、硒蛋白-P和Dò具有分级保护作用,在动物或其他组织中GPX1的主要作用可能作为/生物硒0缓冲剂[21]。

Ellis L等[22]报道,人、牛、山羊和鼠乳汁中均可检出GSH-Px,说明此酶存在于乳腺。早产儿母乳GSH-Px和LCP均高于足月儿,GSH-Px的抗氧化作用可以保护乳脂肪球膜的结构,可能对乳腺内脂肪酸分泌和婴儿营养起辅助作用,对新生儿的发育起一定保护作用。李晓南[23]报道,妇女初乳中GSH-Px显著高于常乳。Debski B等[24]报道,妇女乳中硒浓度与GSH-Px之间呈线性相关(r= 0.76,P<0.001)。马森检测了9份牛乳中GSH-Px活性为125.39?22.83活性单位/mL,硒浓度为2.68?0.99L g/100m L),两者间线性相关r=

55

马森等:谷胱甘肽过氧化物酶和谷胱甘肽转硫酶研究进展

0.8392(P<0.0025)[25]。

7结语

GSH-Px催化还原动物体内H2O2和有机氢过氧化合物,参与调节前列腺素的合成。GST不能分解H2O2,但具有清除过氧化物和解毒的双重功能。二者广泛存在于组织细胞、红细胞、血浆、乳中,与细胞损伤、缺氧、中毒、衰老、多种疾病的发生有关;检测GSH-Px活性是衡量机体抗氧化力的重要指标,也与机体硒水平密切相关。

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Progress on G SH-Px and G ST

M A Sen

(Chemistry Dep ar tment of W uyi Univ er sity,Fuj ian Unive rsity K ey L aboratory f or G reen

Che mical En gineering T ec hnology,W uyi,Fuj ian,354300,China)

Abstract:The GSH-Px and GST is a pair of antio xy gented enzym es.GSH-Px,is a Cys co ntaining Se,and it has4isoenzym es at least.It catalyzes and reduces H2O2and or ig annic H-perox ide.GST does not contain Se,but it has m any iso enzym es and could not decom pose the H2O2.H ow ev er it has tw o functions:elimina-ting perox ide and deto xificatio n.GSH-Px and GST ex ist g reatly in histo cytes,er ythr ocy tes,plasma,milk, and closely relate w ith the damage o f cells,anox ia,poiso ning,ageing and many diseases.T he activ ity of GSH-Px is closely related w ith concentration of selenium.T his article summarized the research develop-m ent o n types and structure,character s,functions,detection pr inciple,clinical application in anim als of GSH-Px and GST.

Key words:glutathione perox idase;g lutathio ne-S-tr ansferase;progr ess

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谷胱甘肽 S-转移酶(glutathione S-transferase,GST)试剂盒说明书

货号: MS1204 规格:100管/96样 谷胱甘肽S-转移酶 (glutathione S-transferase,GST)试剂盒说明书 微量法 注意:正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。 测定意义: GST 是一种具有多种生理功能的蛋白质家族,主要存在于细胞质内。GST 是体内解毒酶系统的重要组成部分,主要催化各种化学物质及其代谢产物与 GSH 的巯基共价结合,使亲电化合物变为亲水物质,易于从胆汁或尿液中排泄,达到将体内各种潜在或具备毒性的物质降解并排出体外的目的。因此,GST 在保护细胞免受亲电子化合物的损伤中发挥着重要的生物学功能。此外,因为 GST 具有 GSH-Px 活性,亦称为 non-Se GSH-Px,具有修复氧化破坏的大分子如DNA、蛋白质等的功能。注意,GST 催化的反应减少 GSH 含量,但是不增加GSSG 含量。 测定原理: GST催化GSH与CDNB结合,其结合产物的光吸收峰波长为340nm;通过测定340nm 波长处吸光度上升速率,即可计算出GST活性。 自备仪器和用品: 低温离心机、水浴锅、可调节移液器、紫外分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96 孔板、和蒸馏水。 试剂组成和配置: 试剂一:液体×1 瓶,4℃保存。 试剂二:液体×1 瓶,4℃保存。 试剂三:粉剂×1 瓶,4℃保存。临用前加2 mL蒸馏水溶解。 粗酶液提取: 1. 组织:按照组织质量(g):试剂一体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约0.1g组织, 加入1mL试剂一)进行冰浴匀浆。8000g,4℃离心 10min,取上清置冰上待测。 2. 细菌、真菌:按照细胞数量(104个):试剂一体积(mL为500~1000:1的比例(建议500 万细胞加入1mL试剂一),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后8000g,4℃,离心10min,取上清置于冰上待测。 3. 血清等液体:直接测定。 测定: 1. 分光光度计/酶标仪预热30min,调节波长到340nm,用蒸馏水调零。 2. 试剂三放在 25℃(一般物种)或者37℃(哺乳动物)保温。 3. 空白管:取微量石英比色皿或96孔板,加入20μL试剂一,180μL试剂二和20μL试剂三, 迅速混匀后于340nm 测定吸光度变化,记录10s和310s吸光度为 A1 和 A2。 4. 测定管:取微量石英比色皿或96孔板,加入20μL上清液,180μL试剂二和20μL试剂三, 迅速混匀后于340nm 测定吸光度变化,记录10s和310s吸光度为A3和 A4。 注意:空白管只需测定一次。 第1页,共3页

谷胱甘肽转移酶抑制剂筛选方法一

谷胱甘肽转移酶(GST) 还原型谷胱甘肽占绝大多数。 谷胱甘肽转移酶 (GST) 是广泛分布于哺乳动物、植物、鸟类、昆虫、寄生虫及微生物体内的一组多功能同工酶。GST是由23-29KDa的不同亚基构成的同源二聚体,每一类GST同工酶中组成的亚基种类有多种,因此编码GST同工酶的基因是一个巨大的超基因家族。 GST主要功能是催化某些内源性或外来有害物质(过氧化物、α, β2不饱和醛酮、烷基或芳香基化合物)的亲电子基团与还原型谷胱甘肽的巯基偶联,增加其疏水性使其易于穿越细胞膜,分解后排出体外,从而达到解毒的目的,有抑制细胞癌变的功能。 通常认为,谷胱甘肽转移酶的作用是催化谷胱甘肽与外来的或内在的有害物质亲电结合排出体外而起到解毒的作用,但是对于治疗癌症药物的研究主要是针对能够抑制谷胱甘肽转移酶(GST)活性的酶抑制剂,而不是GST催化解毒作用。 研究表明,GST的酶活性水平与肿瘤的耐药性密切相关心。因此,GST可能是治疗耐药肿瘤的潜在药物作用靶点。 与GSTs相关疾病有:人类癌症包括胃癌,结肠癌,胰腺癌和肺癌动脉粥样硬化和冠心病。 近年来对GST抑制剂的研究越来越多,研究报道的GST抑制剂主要有:依他尼酸(EA)及其类似物、TLK199及其类似物、黄酮类化合物、双功能基化合物,还有其他一些抗虐药物如乙嘧啶和奎尼丁等等。 抗肿瘤药物与GSH作用模式图:

图中GST-∏是人体内一种Ⅱ相代谢酶,其对肿瘤的耐药作用主要由其解毒功能引起, 其作用机制:①催化谷胱苷肽(GSH)与亲电子药物如各种烷化剂结合,增加其水溶性,加速其排泄而使药效减低;②清除葸环类药物等产生的自由基,减轻药物自由基对细胞的损伤; ③通过直接与药物结合的形式降低药物活性等。 机理解释:图中是一个肿瘤细胞,当治疗肿瘤的药物顺铂进入细胞时,GST就会催化谷胱甘肽GSH与顺铂结合而将其排出体外,所以为了加强药效,就需要使GST的功能受到抑制,GST 抑制剂占据GST酶活性位点,使GST无法催化GSH与顺铂结合,这样就会降低抗肿瘤药物的耐药性。 筛选方法: 方法一:比色法 在该酶的抑制剂筛选中,采用比色法直接测定底物浓度,主要依据产物有紫外或可见光的特征吸收,通过测定反应体系的OD值变化,测定酶和抑制剂的活性。 实验原理:1-氯-2,4-二硝基苯(CDNB)与谷胱甘肽(GSH)在谷胱甘肽转移酶(GST)的作用下生成复合物CDNB-SG,该化合物在340nm 下呈现最大的光吸收值,根据加入样品前后酶活性的变化情况测定样品对GST的抑制活性。 实验材料: 试剂:还原型谷胱甘肽;1-氯-2,4-二硝基苯(CDNB);次氯酸钠溶液;待筛选样品。 仪器:SpectraMax M5 型连续光谱酶标测试仪;Costar 384孔微板。

谷胱甘肽 S-转移酶(glutathione S-transferase ,GST)活性测定试剂盒使用说明

谷胱甘肽S-转移酶(glutathione S-transferase,GST)活性测定试剂盒使用说明货号:SN101 规格:50管/48样 产品简介: 谷胱甘肽S-转硫酶(GST)是一种具有多种生理功能的蛋白质家族,主要存在于细胞质内。GST是体内解毒酶系统的重要组成部分,主要催化各种化学物质及其代谢产物与谷胱甘肽巯基的共价结合,使亲电化合物变为亲水物质,易于从胆汁或尿液中排泄,达到将体内各种潜在或具备毒性的物质降解并排出体外的目的。因此,GST在保护细胞免受亲电子化合物的损伤中发挥着重要的生物学功能。此外,因为GST具有GSH-Px活性,亦称为non-SeGSH-Px,具有修复氧化破坏的大分子如DNA、蛋白质等的功能。 GST催化GSH与CDNB结合,其结合产物的光吸收峰波长为340nm,通过测定340nm波长处吸光度上升速率,即可计算出GST活性。 试验中所需的仪器和试剂: 紫外-可见分光光度计、低温离心机、水浴锅、可调节移液器、1ml石英比色皿、双蒸水 产品内容: 试剂一:试剂一×1支,用前充分溶解于100ml双蒸水中,4℃保存3个月 试剂二:粉剂二×1支;稀释液二×1管,用前将稀释液二加入粉剂二中充分溶解后加双蒸水至 5.0ml,4℃保存3个月 试剂三:粉剂三×1支,4℃保存3个月,临用前加试剂一 5.0ml充分溶解,临用前配制。

操作步骤: 一、样品测定的准备: 称约0.1g组织,加入1ml试剂一,冰上充分研磨,10000rpm4℃离心10min,取上清(如上清不清澈,再离心3min)。 二、GST测定操作 1、混合试剂配制:将试剂二与试剂一按1:8混合 2、试剂三放在25℃预温 3、分光光度计调到340nm处,设定时间为5min,用双蒸水调零 4、取0.1ml样品与0.9ml混合液混合,于25℃预温5min,再加入试剂三0.1ml,迅速混匀,于340nm处测定5min内吸光值的变化,第0s的吸光值记为A1,第300s的吸光值记为A2 5、空白管测定为操作4中以0.1ml试剂一代替0.1ml样品液 酶活计算: 一、血液GST活性计算 1、GST活力单位定义:在25℃下,每ml血液每分钟催化1μmol/L CDNB与GSH结合的GST酶量为U。 2、计算公式: GST(U/ml)=ΔA340/min×〔106/(ε·d)〕×(V总/V样)=ΔA/min×106/(9.6×103×1)〕×1.1/0.1=ΔA340/min×1145.83

谷胱甘肽过氧化物酶和谷胱甘肽转硫酶研究进展

动物医学进展,2008,29(10):53-56 Pr ogress in Veterinary Medicine 文献综述 谷胱甘肽过氧化物酶和谷胱甘肽转硫酶研究进展* 马森 (武夷学院化学系福建省高校绿色化工技术重点实验室,福建武夷354300) 摘要:谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)和谷胱甘肽转硫酶(GST)是一对抗氧化酶。GSH-Px为含硒半胱氨酸,至少有4种同工酶,催化还原H2O2和有机氢过氧化物。GST不含硒,有多种同工酶,不能分解H2O2,但具有清除过氧化物和解毒的双重功能。二者广泛存在于组织细胞、红细胞、血浆和乳中,与细胞损伤、缺氧、中毒、衰老、多种疾病的发生有关;GSH-Px活性也与机体硒水平密切相关。文章综述了GSH-Px 和GST的分类与结构、性质、作用、检测原理、动物临床方面的应用及研究进展。 关键词:谷胱甘肽过氧化物酶;谷胱甘肽转硫酶;研究进展 中图分类号:Q554.6文献标识码:A文章编号:1007-5038(2008)10-0053-04 谷胱甘肽过氧化物酶(g lutathione pero xidase, GSH-Px)于1957年由M ills从牛红细胞中发现,分子结构中含硒,故又名硒谷胱甘肽过氧化物酶(Se-GSH-Px),是体内清除H2O2和许多有机氢过氧化物的重要酶。1976年,Law rence等发现组织中还存在一种不含硒的GSH-Px,命名为谷胱甘肽转硫酶或不含硒的谷胱甘肽过氧化物酶(g lutathio ne-S-tr ansferase,GST或on-Se-GSH-Px),在体内具有清除过氧化物及解毒的双重功能。文章对GSH-Px和GST的分类与结构、性质、作用、检测原理、动物临床方面的应用及研究进展进行了阐述。 1分类与结构 从人和动物组织或细胞中提纯的GSH-Px,分子质量为76ku~95ku,为水溶性四聚体蛋白,4个亚基相同或极为类似,每个亚基有1个硒原子。目前发现GSH-Px至少有4种同工酶,其在机体中的分布、亚基结构、一级序列和酶学特点上有显著不同。第1种为细胞谷胱甘肽过氧化物酶(cGPx),主要分布在组织细胞的细胞区、线粒体和红细胞中,催化还原H2O2和有机氢过氧化物,对各类氢过氧化物都有较好的催化作用。第2种为磷脂过氧化氢谷胱甘肽过氧化物酶(PH GPX),主要分布在各种组织细胞外的细胞液内,部分分布在细胞膜上,主要还原磷脂过氧化氢、脂肪酸过氧化氢和甾体过氧化氢, PH GPX是必需的生物膜组成成分,可阻止生物膜非专一性的磷脂过氧化。第3种为血浆谷胱甘肽过氧化物酶(pGPx),主要分布在血液中,既能还原磷脂氢过氧化物又能还原H2O2。第4种为消化系统谷胱甘肽过氧化物酶(GIGPX),高表达于胃肠道黏膜上皮细胞。牛红细胞GSH-Px有178个氨基酸,第35位是1个硒半胱氨酸。在其亚基结构中有4处A-螺旋和4处B-折叠。整个酶分子中,4个亚基处在一个平面,具有催化活性的硒半胱氨酸位于酶分子表面凹穴的活性部位,易于接触有机氢过氧化物等底物。后者虽然不溶于水,但由于活性基团周围存在一些疏水性芳香环氨基酸残基,形成脂溶性底物可进入的疏水区域,可以与硒半胱氨酸反应,从而使GSH-Px显示很高的反应性。GST是分子质量40ku~50ku的二聚体蛋白质,随着亚基的不同组合而有多种同工酶,如哺乳动物的GST分为A, L,P,H,R等5类水溶性GST,另外还有一类是脂溶性的微粒体同工酶。随着对GST的深入研究,新GST种类不断被发现。已确定了上述5种主要的酶家族中至少一个成员的三维结构,这些结构都具有包括两个结构域的基本蛋白质折叠。大鼠肝胞浆GST是由Ya、Yb、Yc3种不同亚基组合成的YaYa、YcYc、YaYc、YbYb等同工酶,亚基的分子质量为22.5ku~25ku;大鼠肝微粒体GST的亚基分子质量却为14ku;不同来源的GST中氨基酸组成可能有差异,分子质量常不一致[1-5]。 *收稿日期:2008-05-04 基金项目:福建省教育厅/乳谷胱甘肽过氧化物酶研究0项目(JB03266) 作者简介:马森(1947-),男,青海西宁人,教授,主要从事动物生理生化研究。

谷胱甘肽还原酶检测试剂盒简介

谷胱甘肽还原酶检测试剂简介 谷胱甘肽还原酶的作用: 一、谷胱甘肽还原酶(GR)在人类细胞中具有极其重要的生理功能,广泛存在于人体肝、肾、心红细胞、单核巨噬细胞等组织细胞中。它可及时地清除人体代谢过程中产生的氧自由基(OFR),是维持细胞中还原型谷胱甘肽(GSH)含量的主要黄素酶。对保护肝细胞膜完整具有非常重要的作用意义。 在《临床肝病实验诊断学》和《临床检验诊断解析》中明确标示,血清谷胱甘肽还原酶活性测定可用于协助诊断肝脏疾病,血清谷胱甘肽还原酶活性上升可以辅助诊断肝炎、肝硬化、梗阻性黄疸及相当数量引发的肝肿瘤。原发性肝细胞癌和广泛转移性肝肿瘤时,血清谷胱甘肽还原酶活性明显升高,急性病毒性肝炎或中毒性肝炎中度升高,而肝硬化是血清GR轻度升高。 二:检测谷胱甘肽还原酶的临床意义 1、急性肝炎早期阶段,血清谷胱甘肽还原酶敏感性最高,可用于肝损的早期检测; 2、急性肝炎患者GR比转氨酶更早增加达到峰值,早早期肝脏损伤判断的首选指标; 3、GR有助于判断亚临床DILI,提高临床DILI的诊断率 4、不同于ALT和AST在肝细胞膜破裂和线粒体破裂时才能检测出来,GR填补肝细胞受损早期自我修复阶段至破裂进程中诊断的空白,将更有利于早期肝炎的诊断和治疗

三、临床解读: 谷胱甘肽和谷丙、谷草在化验单上的具体解读,谷胱甘肽的血清血浆正常值是33-73U/L,共有四种情况。 1、谷胱甘肽指标升高,谷丙和谷草指标正常,提示有肝损伤的风险,建议加强对肝脏的检测频率,有利于发现早期肝损伤。 2、谷胱与谷丙,谷草同时升高,提示进入肝损伤爆发期,建议临床治疗措施干预。 3、谷胱甘肽升高,谷丙、谷草下降,提示正在进行肝损伤修复,可以结合三者评估临床治疗情况。 4、当三者都出现下降,情况有两种极端提示:(1)是修复完成,临床好转。(2)是重型肝炎出现严重情况,出现胆酶分离现象。 另外一种是红细胞的检测,正常值4.7-13.2U/gHb 红细胞主要针对“蚕豆病”和遗传性伯氨喹溶血病人,谷胱甘肽还原酶降低,红细胞的细胞膜容易被氧化和分解,导致溶血性贫血和溶血性黄疸。

谷胱甘肽过氧化物酶

本科生毕业论文(设计)
题 姓 学 专 班 学
目: 名: 院: 业: 级: 号:
谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)对灵芝生长发育中 的活性氧物质(ROS)的改变及理化性的质影响 于南 生命科学学院 生物科学 生物科学 101 班 13210101 师亮 职称: 讲师
指导教师:
2013 年 5 月 20 日 南京农业大学教务处制
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摘要 .......................................................................................................... 错误!未定义书签。 关键词 ...................................................................................................... 错误!未定义书签。 Abstract ................................................................................................... 错误!未定义书签。 Key words ................................................................................................ 错误!未定义书签。 引言 .......................................................................................................... 错误!未定义书签。 1 材料与方法 ........................................................................................ 错误!未定义书签。 1.1 材料 ....................................................................................... 错误!未定义书签。 1.1.1 菌种 .......................................................................... 错误!未定义书签。 1.1.2 CYM 培养基 ............................................................ 错误!未定义书签。 1.1.3 PDA 固体培养基 ..................................................... 错误!未定义书签。 1.1.4 试剂 .......................................................................... 错误!未定义书签。 1.1.5 主要仪器设备 .......................................................... 错误!未定义书签。 1.2 实验方法 ............................................................................... 错误!未定义书签。 1.2.1 ROS 的测定 ............................................................. 错误!未定义书签。 1.2.2 NBT 测定 ................................................................. 错误!未定义书签。 1.2.3 DAB 染色 ................................................................. 错误!未定义书签。 1.2.4 菌株对氧化物耐受性的检测 .................................. 错误!未定义书签。 1.2.5 胞内 Ca2+的荧光检测 .............................................. 错误!未定义书签。 1.2.6 三萜的测定 .............................................................. 错误!未定义书签。 1.2.7 菌丝分叉检测 .......................................................... 错误!未定义书签。 2 结果与分析 ........................................................................................ 错误!未定义书签。 2.1 GPX 沉默转化子胞内 ROS 含量上升 ......................... 错误!未定义书签。 2.2 NBT 染色显示 GPX 沉默转化子胞内超氧根离子含量上升错误!未定义书签。 2.3 DAB 染色显示 GPX 沉默转化子胞内 H2O2 含量下降...... 错误!未定义书签。 2.4 GPX 沉默转化子的菌株对氧化性物质的耐受力下降 ...... 错误!未定义书签。 2.5 GPX 沉默转化子胞内 Ca2+的含量下降 .............................. 错误!未定义书签。 2.6 GPX 沉默转化子菌株的三萜含量下降: .......................... 错误!未定义书签。 2.7 GPX 沉默转化子菌丝的分叉数减少 .................................. 错误!未定义书签。 3 讨论 .................................................................................................... 错误!未定义书签。 致谢 .......................................................................................................... 错误!未定义书签。 参考文献 .................................................................................................. 错误!未定义书签。
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GST(谷胱甘肽转硫酶)测定

GST(谷胱甘肽转硫酶)测定 原理:GST(谷胱甘肽转硫酶)测定具有催化还原性谷胱甘肽GSH与2,4 二硝基苯CDNB 结合的能力,其结合产物的光吸收峰值波长为340nm,通过测定340nm处吸光度上升速率,即可计算出GST的活力单位。反应式为: C6H3(NO2)2Cl+GSH→C6H3(NO2)2SG+H++Cl- 实验仪器:分光光度计 实验试剂: 1)0.1mol/l 磷酸盐缓冲液PH 6.5(配制见p331) 2) 10m mol/l 还原型谷胱甘肽(GSH):用前临时配制,15.35mg GSH 溶于少量磷酸盐缓冲液,定容于5.0ml 3) 1.25 mmol/l CDNB(1-氯-2,4-二硝基苯):称取25.35mg,溶于5.0ml无水乙醇,加磷酸盐缓冲液定容至100ml,室温下可用一周 实验步骤: 取样品,精确称量后(约取0.05g),加1.5mlPBS冰上研磨,离心,收集上清 酶活测定反应体系(参照孟师兄) 试剂总反应(ml)非酶反应(ml) GSH(10m mol/l) 0.05 0.05 CDNB(1.25 mmol/l) 0.4 0.4 PBS(0.1mol/l) 0.45 0.55 样品液0.1 ------ 混匀后测定0,1,2,3,4,5min处340nm的吸光值 (初步估计要做6个样,每个样做3个平行。药品消耗大概: GSH 1.8ml, CDNB 24.4ml PBS 18ml) GST蛋白浓度测定 (1)标准曲线绘制 试管:0 1 2 3 4 5 6 1mg/ml标准蛋白溶液:0 0.01 0.02 0.03 0.04 0.05 0.06 双蒸水; 0.1 0.09 0.08 0.07 0.06 0.05 0.04 向各管分别加入3ml的考马斯亮蓝,测OD595(595nm为GST染色后的特征吸收峰) 结果计算: 1) 计算酶反应的A340值:为总反应测定所得的(A340)总与非酶反应的(A340)非之差,即(A340)酶=(A340)总—(A340)非 2)根据不同时间测定的(A340)酶,计算酶促反应每分钟的平均变化值△(A340)/min 3) 样品中酶的比活力按下式计算:

谷胱甘肽还原酶(glutathione reductase, GR)活性测定试剂盒说明书

货号:QS1111 规格:50管/48样 谷胱甘肽还原酶(glutathione reductase, GR)活性测定试剂盒说明书 紫外分光光度法 注意:正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。 测定意义: GR是广泛存在于真核和原核生物中的一种黄素蛋白氧化还原酶,是谷胱甘肽氧化还原循环的关键酶之一(通常昆虫中GR被TrxR取代)。GR催化NADPH还原GSSG生成GSH,有助于维持体内GSH/GSSG比值。GR在氧化胁迫反应中对活性氧清除起关键作用,此外GR还参与抗坏血酸-谷胱甘肽循环途径。 测定原理: GR能催化NADPH还原GSSG再生GSH,同时NADPH脱氢生成NADP+;NADPH在340 nm有特征吸收峰,相反NADP+在该波长无吸收峰;通过测定340 nm吸光度下降速率来测定NADPH脱氢速率,从而计算GR活性。 自备实验用品及仪器: 紫外分光光度计、低温离心机、水浴锅、移液器、1mL石英比色皿和蒸馏水 试剂组成和配置: 试剂一:液体×1瓶,4℃保存。 试剂二:粉剂×1瓶,4℃保存。临用前加入5.0 mL蒸馏水,混匀。 试剂三:液体×1支,4℃保存。 粗酶液提取: 1.组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加 入1mL试剂一)进行冰浴匀浆。8000g,4℃离心15min,取上清,置冰上待测。 2.细菌、真菌:按照细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500 万细胞加入1mL试剂一),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后8000g,4℃,离心15min,取上清置于冰上待测。 3.血清等液体:直接测定。 操作步骤: 1. 分光光度计预热30 min,调节波长到340 nm,蒸馏水调零。 2. 试剂一置于25℃(普通物质)或者37℃(哺乳动物)中预热30min。 3. 空白管:取1mL石英比色皿,加入850μL试剂一,100μL试剂二,50μL试剂三,充分混匀,于340nm 处测定10 s和190 s吸光度,记为A空1和A空2,△A空白管= A空1﹣A空2。 4. 测定管:取1mL石英比色皿,加入750μL试剂一,100μL试剂二,100μL上清液,50μL 试剂三,充分混匀,于340nm测定10 s和190 s吸光度,记为A测1和A测2,△A测定管= A 测1﹣A测2。 注意:空白管只需要测定一次。 计算公式: 第1页,共2页

谷胱甘肽过氧化物酶活性检测试剂盒说明书 可见分光光度法

谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px/GPX)活性检测试剂盒说明书可见分光光度法 注意:正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。货号:BC1190规格:50T/24S 产品简介: 谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px/GPX)是机体内广泛存在的一种重要的过氧化物分解酶。GPX 能够催化还原型谷胱甘肽(GSH)生成氧化型谷胱甘肽(GSSG),使有毒的过氧化氢还原成无毒的羟基化合物。 GPX 催化H 2O 2氧化GSH,产生GSSG,GSH 能与DTNB 生成在412nm 处有特征吸收峰的化合物,412nm 下吸光度的下降即可反应GPX 的活性。试验中所需的仪器和试剂: 可见分光光度计、天平、台式离心机、1mL 玻璃比色皿、可调式移液枪、研钵/匀浆器、EP 管。产品内容: 提取液:液体40mL×1瓶,4℃保存; 试剂一:粉剂×1瓶,4℃保存;临用前加入5.5mL 蒸馏水溶解;试剂二:粉剂×1瓶,4℃保存;临用前加入6.6mL 蒸馏水溶解备用; 试剂三:液体20μL×1支,临用前按1μL 试剂三:499μL 蒸馏水的比例稀释试剂三,4℃保存。现用现配; 试剂四:液体60mL×1瓶,4℃保存;瓶底若有结晶可50℃水浴溶解,此溶液为饱和溶液,若底部最终还有结晶,吸取上清使用即可; 试剂五:液体15mL×1瓶,4℃保存; 试剂六:粉剂×1瓶,4℃保存;临用前加入15mL 蒸馏水溶解备用; 标准品:粉剂×1支,10mg 还原型谷胱甘肽,4℃保存。临用前加入1.62mL 蒸馏水溶解为20μmol/mL 的标准溶液备用。操作步骤:

一、粗酶液的提取: 1、组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取0.05g组织,加入1mL提取液)进行冰浴匀浆。10000rpm,4℃离心10min,取上清置冰上待测(如上清不清澈,再离心3min)。 2、细菌、真菌:按照细胞数量104个:提取液体积(mL)500~1000:1的比例,建议500万细胞加入1mL提取液),冰浴超声波破碎细胞(率300w,超声3s,间隔7s,总时间3min)然后10000rpm,4℃,离心10min,取上清置冰上待测(如上清不清澈,再离心3min)。 3、血清(浆)等液体:直接测定。 二、测定步骤: 1、分光光度计预热30min以上,调节波长至412nm,蒸馏水调零。 2、将20μmol/mL标准液用提取液稀释为0.25μmol/mL的标准溶液。再吸取100μL标准溶液与400μL试 剂四混匀待用,此标准液混合物的浓度为0.05μmol/mL。标准液混合物现用现配。 3、将150μL样本与150μL试剂一混合后室温放置5min。 4、操作表:(在1.5mL离心管中依次加入下列试剂) 测定管对照管样品混合物(μL)100- 试剂二(μL)100100 37℃下预热5min 试剂三(μL)100100 37℃下反应5min 试剂四(mL)11 样品混合物(μL)-100 4000rpm常温离心5min,取上清。 试剂名称(μL)测定管对照管标准管空白管上清液500500--标准液混合物--500-试剂四---500 试剂五200200200200 试剂六200200200200 蒸馏水100100100100

谷胱甘肽S-转移酶(GST)活性检测试剂盒说明书 紫外分光光度法

谷胱甘肽S-转移酶(GST)活性检测试剂盒说明书紫外分光光度法 注意:正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定 货号:BC0350 规格:50T/48S 产品内容: 试剂一:液体50mL×1瓶,4℃保存。 试剂二:液体45mL×1瓶,4℃保存。 试剂三:粉剂×1瓶,4℃保存。临用前加5mL蒸馏水溶解。 产品说明: 谷胱甘肽S-转移酶(glutathione S-transferase,GST)是一种具有多种生理功能的蛋白质家族,主要存在于细胞质内。GST是体内解毒酶系统的重要组成部分,主要催化各种化学物质及其代谢产物与GSH的巯基共价结合,使亲电化合物变为亲水物质,易于从胆汁或尿液中排泄,达到将体内各种潜在或具备毒性的物质降解并排出体外的目的。因此,GST在保护细胞免受亲电子化合物的损伤中发挥着重要的生物学功能。此外,因为GST具有GSH-Px活性,亦称为non-Se GSH-Px,具有修复氧化破坏的大分子如DNA、蛋白质等的功能。注意,GST催化的反应减少GSH含量,但是不增加GSSG含量。 GST催化GSH与CDNB结合,其结合产物的光吸收峰波长为340nm;通过测定340nm波长处吸光度上升速率,即可计算出GST活性。 自备仪器和用品: 紫外-可见分光光度计、低温离心机、水浴锅、可调节移液器、1mL石英比色皿和蒸馏水。 操作步骤: 一、粗酶液提取: 1.组织:按照组织质量(g):试剂一体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL试剂 一)进行冰浴匀浆。8000g,4℃离心10min,取上清置冰上待测。 第1页,共3页

2.细菌、真菌:按照细胞数量(104个):试剂一体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入 1mL试剂一),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后8000g,4℃,离心10min,取上清置于冰上待测。 3.血清等液体:直接测定。 二、测定: 1.分光光度计预热30min以上,调节波长到340nm,用蒸馏水调零。 2.试剂二、试剂三放在25℃(一般物种)或者37℃(哺乳动物)保温。 3.空白管:取1mL石英比色皿,加入100μL试剂一,900μL试剂二和100μL试剂三,迅速混匀后于340nm 测定10s吸光度记A1,37℃水浴5min后,快速取出测定吸光度记A2。 4.测定管:取1mL石英比色皿,加入100μL上清液,900μL试剂二和100μL试剂三,迅速混匀后于340nm 测定10s吸光度记A3,37℃水浴5min后,快速取出测定吸光度记A4。 三、GST活性计算: (1)按蛋白浓度计算 活性单位定义:在25℃或者37℃中,每毫克蛋白每分钟催化1μmol CDNB与GSH结合为一个酶活性单位。 GST(U/mg prot)=[(A4-A3)-(A2-A1)]÷(ε×d)×106×V反总÷(Cpr×V样)÷T =0.23×[(A4-A3)-(A2-A1)]÷Cpr (2)按样本鲜重计算 活性单位定义:在25℃或者37℃中,每克样品每分钟催化1μmol CDNB与GSH结合为一个酶活性单位。 GST(U/g鲜重)=[(A4-A3)-(A2-A1)]÷(ε×d)×106×V反总÷(V样÷V样总×W)÷T =0.23×[(A4-A3)-(A2-A1)]÷W (3)按细胞数量计算 活性单位定义:在25℃或者37℃中,每104个细胞每分钟催化1μmol CDNB与GSH结合为一个酶活单位。 第2页,共3页

谷胱甘肽转硫酶的制备及动力学研究

X X X大学 生物化学实验技术 生命科学学院 专业:X X X X X X X X X 姓名:X X X 2013/X/X 【摘要】酶学研究是生物化学研究中的重要领域。谷胱甘肽转硫酶(Glutathion S-transferases,GSTs)是一类广泛存在于动物和人体各种组织中的参与解毒作用的同工酶家族,其中在哺乳动物肝脏中含量最高,约占肝可溶性蛋白的10 %。本实验利用亲和层析法纯化谷胱甘肽转硫酶,以1-氯-2,4-二硝基苯(CDNB)为底物,研究酶促反应动力学的特性,加深对酶促反应的特点的理解。利用分光光度法测定了GST 的酶活力为0.089 IU,用考马斯亮蓝G-250染色法测定GST 的比活力为11.125 μmol/min?mg,用直线作图法得出了GST 的米氏常为0.26 mmol/L,最大速率0.029μmol/L?min。

谷胱甘肽转硫酶的制备及动力学研究

谷胱甘肽转硫酶的制备及 动力学研究 【摘要】酶学研究是生物化学研究中的重要领域。谷胱甘肽转硫酶(Glutathion S-transferases,GSTs)是一类广泛存在于动物和人体各种组织中的参与解毒作用的同工酶家族,其中在哺乳动物肝脏中含量最高,约占肝可溶性蛋白的10 %。本实验利用亲和层析法纯化谷胱甘肽转硫酶,以1-氯-2,4-二硝基苯( CDNB)为底物,研究酶促反应动力学的特性,加深对酶促反应的特点的理解。用分光光度法测定了 GST 的酶活力为0.089 IU,用考马斯亮蓝G-250染色法测定GST的比活力为11.125 μmol/min·mg,用直线作图法得出了 GST 的米氏常数为0.26mmol/L,最大速率0.029μmol/L·min。 【关键词】谷胱甘肽转硫酶;亲和层析;CDNB;酶活力;考马斯亮蓝G-250染色法;比活力;米氏常数。 【引言】酶是生物体内的重要生物大分子,酶学也是当今生物化学研究的一个重要组成部分。对于酶的研究一般按照以下的策略:分离纯化;测定关键常数,即酶活力、米氏常数等;精细研究活性基团和关键结构域等。本实验以猪肝为实验材料,分离纯化GST 并测定其酶活力和米氏常数。 1.1亲和层析法原理 酶与酶的底物之间可以可逆地结合和分离,将酶的底物结合在亲和层吸柱上,使还有待分离物质的粗提物在有利于酶结合底物的条件下通过层析柱,可以使欲分离的组分吸附在柱上[1]。然后更换缓冲溶液使酶竞争性地从层析柱上洗脱,达到纯化的目的。亲和层析法分离生物大分子示意图如下:

谷胱甘肽S-转移酶(GST)活性检测试剂盒说明书 微量法

谷胱甘肽S-转移酶(GST)活性检测试剂盒说明书微量法 注意:正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定。 货号:BC0355 规格:100T/96S 产品内容: 试剂一:液体100mL×1瓶,4℃保存。 试剂二:液体22mL×1瓶,4℃保存。 试剂三:粉剂×1瓶,4℃保存。临用前加2mL蒸馏水溶解。 产品说明: GST是一种具有多种生理功能的蛋白质家族,主要存在于细胞质内。GST是体内解毒酶系统的重要组成部分,主要催化各种化学物质及其代谢产物与GSH的巯基共价结合,使亲电化合物变为亲水物质,易于从胆汁或尿液中排泄,达到将体内各种潜在或具备毒性的物质降解并排出体外的目的。因此,GST在保护细胞免受亲电子化合物的损伤中发挥着重要的生物学功能。此外,因为GST具有GSH-Px活性,亦称为non-Se GSH-Px,具有修复氧化破坏的大分子如DNA、蛋白质等的功能。注意,GST催化的反应减少GSH含量,但是不增加GSSG含量。 GST催化GSH与CDNB结合,其结合产物的光吸收峰波长为340nm;通过测定340nm波长处吸光度上升速率,即可计算出GST活性。 自备仪器和用品: 低温离心机、水浴锅、可调节移液器、紫外-可见分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96孔UV板和蒸馏水。 操作步骤: 一、粗酶液提取: 1.组织:按照组织质量(g):试剂一体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL试剂 一)进行冰浴匀浆。8000g,4℃离心10min,取上清置冰上待测。

2.细菌、真菌:按照细胞数量(104个):试剂一体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入 1mL试剂一),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后8000g,4℃,离心10min,取上清置于冰上待测。 3.血清等液体:直接测定。 二、测定: 1.分光光度计/酶标仪预热30min以上,调节波长到340nm,用蒸馏水调零。 2.试剂二放在25℃(一般物种)或者37℃(哺乳动物)保温。 3.空白管:取微量石英比色皿,加入20μL试剂一,180μL试剂二和20μL试剂三,迅速混匀后于340nm 测定10s吸光度记A1,37℃水浴5min后,快速取出测定吸光度记A2。 4.测定管:取微量石英比色皿,加入20μL上清液,180μL试剂二和20μL试剂三,迅速混匀后于340nm 测定10s吸光度记A3,37℃水浴5min后,快速取出测定吸光度记A4。 三、GST活性计算: a.使用微量石英比色皿测定的计算公式如下 (1)按蛋白浓度计算 活性单位定义:在25℃或者37℃中,每毫克蛋白每分钟催化1μmol CDNB与GSH结合为一个酶活性单位。GST(U/mg prot)=[(A4-A3)-(A2-A1)]÷(ε×d)×106×V反总÷(Cpr×V样)÷T =0.23×[(A4-A3)-(A2-A1)]÷Cpr (2)按样本鲜重计算 活性单位定义:在25℃或者37℃中,每克样品每分钟催化1μmol CDNB与GSH结合为一个酶活性单位。GST(U/g鲜重)=[(A4-A3)-(A2-A1)]÷(ε×d)×106×V反总÷(V样÷V样总×W)÷T =0.23×[(A4-A3)-(A2-A1)]÷W (3)按细胞数量计算 活性单位定义:在25℃或者37℃中,每104个细胞每分钟催化1μmol CDNB与GSH结合为一个酶活单位。GST(U/104cell)=[(A4-A3)-(A2-A1)]÷(ε×d)×106×V反总÷(500×V样÷V样总)÷T =0.23×[(A4-A3)-(A2-A1)]÷500

谷胱甘肽 S-转移酶(glutathione S-transferase,GST)试剂盒说明书

货号:QS1204 规格:50管/48样 谷胱甘肽S-转移酶(glutathione S-transferase,GST)试剂盒说明书 紫外分光光度法 注意:正式测定之前选择2-3 个预期差异大的样本做预测定。 测定意义: GST是一种具有多种生理功能的蛋白质家族,主要存在于细胞质内。GST是体内解毒酶系统的重要组成部分,主要催化各种化学物质及其代谢产物与GSH的巯基共价结合,使亲电化合物变为亲水物质,易于从胆汁或尿液中排泄,达到将体内各种潜在或具备毒性的物质降解并排出体外的目的。因此,GST在保护细胞免受亲电子化合物的损伤中发挥着重要的生物学功能。此外,因为GST具有GSH-Px活性,亦称为non-Se GSH-Px,具有修复氧化破坏的大分子如DNA、蛋白质等的功能。注意,GST催化的反应减少GSH含量,但是不增加GSSG含量。 测定原理: GST催化GSH与CDNB结合,其结合产物的光吸收峰波长为340nm;通过测定340nm波长处吸光度上升速率,即可计算出GST活性。 自备实验用品及仪器: 紫外分光光度计、低温离心机、水浴锅、可调节移液器、1mL石英比色皿和蒸馏水。 试剂组成和配置: 试剂一:液体50mL×1瓶,4℃保存。 试剂二:液体45mL×1瓶,4℃保存。 试剂三:粉剂×1瓶,4℃保存。临用前加5 mL蒸馏水溶解。 粗酶液提取: 1.组织:按照组织质量(g):试剂一体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加 入1mL试剂一)进行冰浴匀浆。8000g,4℃离心10min,取上清置冰上待测。 2.细菌、真菌:按照细胞数量(104个):试剂一体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500 万细胞加入1mL试剂一),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后8000g,4℃,离心10min,取上清置于冰上待测。 3. 血清等液体:直接测定。 测定操作: 1. 分光光度计预热30 min,调节波长到340 nm,用蒸馏水调零。 2. 试剂三放在25℃(一般物种)或者37℃(哺乳动物)保温。 3. 测定管:取1mL石英比色皿,加入100μL上清液,900μL试剂二和100μL试剂三,迅速混匀后于340nm测定吸光度变化,记录10 s和310 s吸光度为A1和A2。 GST活性计算公式: (1). 按蛋白浓度计算 活性单位定义:在25℃或者37℃中,每毫克蛋白每分钟催化1nmol/L CDNB与GSH结合为1个酶活单位。 GST(nmol/min/mg prot)=(A2-A1))÷ε÷d×109×V反总÷(Cpr×V样)÷T 第1页,共2页

谷胱甘肽过氧化物酶

谷胱甘肽过氧化物酶 开放分类:医学植物生理学 ?目录 ?图片 ?讨论 ?知识魔块 分享完善词条 谷胱甘肽过氧化物酶 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)是机体内广泛存在的一种重要的过氧化物分解酶。GSH-Px的活性中心是硒半胱氨酸,其活力大小可以反映机体硒水平。硒是GSH-Px酶系的组成成分,它能催化GSH变为GSSG,使有毒的过氧化物还原成无毒的羟基化合物,从而保护细胞膜的结构及功能不受过氧化物的干扰及损害。NADPH的减少量则和谷胱甘肽过氧化物酶的活力线性相关。GSH-Px主要包括4种:分别为胞浆GSH-Px、血浆GSH-Px、磷脂氢过氧化物GSH-Px及胃肠道专属性GSH-Px。 编辑摘要 谷胱甘肽过氧化物酶- 简介

谷胱甘肽过氧化物酶 GSSG,使有毒的过氧化物还原成无毒的羟基化合物,同时促进H2 O2的分解,从而保护细胞膜的结构及功能不受过氧化物的干扰及损害。GSH-Px的活性中心是硒半胱氨酸,其活力大小可以反映机体硒水平。 谷胱甘肽过氧化物酶可以催化GSH产生GSSG,而谷胱甘肽还原酶可以利用NADPH催化GSSG产生GSH,通过检测NADPH的减少量就可以计算出谷胱甘肽过氧化物酶的活力水平。在上述反应中谷胱甘肽过氧化物酶是整个反应体系的限速步骤,因此NADPH的减少量和谷胱甘肽过氧化物酶的活力线性相关。 谷胱甘肽过氧化物酶- GSH-Px酶系 主要包括4种不同的GSH-Px,分别为胞浆GSH-Px、血浆GSH-Px、 胞浆GSH-Px

由4个相同的分子量大小为22kDa的亚基构成四聚体,每个亚基含有1个分子硒半胱氨酸,广泛存在于机体内各个组织,以肝脏红细胞为最多。它的生理功能主要是催化GSH参与过氧化反应,清除在细胞呼吸代谢过程中产生的过氧化物和羟自由基,从而减轻细胞膜多不饱和脂肪酸的过氧化作用。 血浆GSH-Px 构成与胞浆GSH-Px相同,主要分布于血浆中,其功能目前还不是很清楚,但已经证实与清除细胞外的过氧化氢和参与GSH的运输有关。 磷脂过氧化氢GSH-Px 是分子量为20kDa的单体,含有1个分子硒半胱氨酸。最初从猪的心脏和肝脏中分离得到,主要存在于睾丸中,其它组织中也有少量分布。其生物学功能是可抑制膜磷脂过氧化。 胃肠道专属性GSH-Px 是由4个分子量为22kDa的亚基构成的四聚体,只存在于啮齿类动物的胃肠道中,其功能是保护动物免受摄入脂质过氧化物的损害。谷胱甘肽过氧化物酶- 正常值 (1)酶速率法(37℃):2.96~83U/g?Hb

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